Name: 免疫ペプチドミクス:マウスとヒトMHCクラスI-およびII関連ペプチドの分離による質量分析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-10-15T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 32 s
Description: 学ぶマウスとヒトのMHCクラスI・II関連ペプチド分離法。抗体結合ビーズを用いた質量分析前処理プロトコルで、免疫ペプチドミクス研究を支援します。がんや自己免疫疾患の免疫応答解析に応用可能です。

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ピエール・ティボー、エリック・ボニール、ジョエル・ラノワ、キャロライン・コテ(モントリオール大学免疫学・がん研究所)、アンソニー・パーセル(モナッシュ大学)の洞察に満ちたコメントに感謝します。この研究は、ケベック・フォンド・レシェルシュ・デュ・ケベック-サンテ(FRQS)、コール財団、CHUサントジャスティン、チャールズ・ブルノー財団、カナダイノベーション財団、国立科学工学研究評議会(NSERC)(#RGPIN-2020-05232)、カナダ保健研究所 174924(CIHR)からの資金援助によって支えられました。

ここで提供されるプロトコルは確立されたプロトコル13,14,15,16,17,18,19,20から適応された。MHCクラスIおよびIIペプチドの免疫親和性精製(IP)の全体的な手順を図1に示す。使用する細胞株と抗体の詳細については、資料表を参照してください。
1. 抗体と結合するビーズ(1日目):抗体をセファロースCNBr活性化ビーズに結合
注: 新しい実験ごとに新しいソリューションを準備します。試薬とソリューションのレシピのリストについては、 材料表 および 補足表1 を参照してください。すべてのステップは室温(RT)で行われる。新しい抗体を使用する場合は、キーアリコートを収集し(OPTIONALの指示を参照)、クーマシーブルー染色SDS-PAGE(図2)を行うことにより、結合効率を確認してください。
<ol><li>セファロースCNBrビーズの活性化<ol>
<li>セファローズCNBr活性ビーズの重量を80mg、15 mL円錐管に移します。</li>
		<li>乾燥ビーズの再懸濁を容易にするために、まず、1 mM HClの5 mLとピペットを5回上下に加える。次に、1 mM HCl の追加 8.5 mL で円錐管を充填します。</li>
		<li>ローテーターデバイスを使用してRTで30分間、20 rpm(1分あたりの回転数)で回転させます。200 x g で 200 g で 2 分間の遠心分離機 RT で 2 分間、吸引によって上清を除去します。</li>
		<li>500 μL のカップリングバッファーをビーズペレットに加え、新しい 2.0 mL 遠心管に移し、ステップ 1.2.2 を維持します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>CNBr活性化ビーズへの抗体の結合<ol>
<li>MHCクラスIまたはIIペプチドの単離のために選択した抗体を新しい2.0 mLマイクロ遠心分離管に2mgの抗体を加えて調製します(メーカーが指定した濃度に従います)。カップリングバッファー溶液で体積を 1 mL に完了し、2 mg/mL の最終濃度を得ます。</li>
		<li>ステップ1.1.4から200 x g の2分間RTで2分間のビーズを遠心分離し、吸引によって上清を取り除きます。</li>
		<li>活性化ビーズを含む2.0 mLマイクロ遠心分離管に抗体溶液を加えます。</li>
		<li>(オプション)18 μL (INPUT) のアリコートを取り、6 μL の 4x SDS-PAGE バッファを追加し、すぐに凍結します。</li>
		<li>回転装置を使用して、ステップ1.2.3から20rpmで120分間マイクロ遠心管を120分間回転させます。200 x g で 200 g でビーズを遠心分離し、上清を取り除きます。</li>
		<li>(オプション)上清(非結合抗体)の18 μLのアリコートを取り、6 μLの4x SDS-PAGEバッファーを加え、すぐに凍結します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>抗体結合ビーズの遮断および洗浄<ol>
<li>ステップ1.2.5から抗体結合ビーズを含むマイクロ遠心分離チューブに0.2 Mグリシンの1 mLを加えます。ローテーターデバイスを使用して、RTで60分間20rpmで回転させます。</li>
		<li>200 x g でビーズを 2 分間遠心し、上清を取り除きます。PBS(リン酸緩衝生理食塩分)を1 mL加えます。</li>
		<li>200 x g でビーズを 2 分間遠心し、上清を取り除きます。</li>
		<li>(オプション)上清(非結合抗体、最後の洗浄)の18 μLのアリコートを取り、6 μLの4倍のSDS-PAGEバッファを加え、すぐに凍結します。</li>
		<li>ステップ 1.3.3 のビーズに PBS の 1 mL を追加します。</li>
		<li>(オプション)18 μL のビーズ混合物(ビーズと抗体を結合)のアリコートを取り、4x SDS-PAGE バッファーの 6 μL を加え、すぐに凍結します。</li>
		<li>ステップ2.5で同じ日に使用するまで4°Cに保ちます。 注:ビーズは免疫キャプチャの前日に準備することができますが、より長いストレージはテストされていません。</li>
	</ol>
</li>
</ol>2. 抗体結合ビーズによる細胞のリシスと免疫の取り込み(1日目)
注:MHC分子のレベルは、ある細胞タイプによって異なり、細胞当たりのMHC/HLA分子の定量化が推奨される21(図4A)。IP ごとに、最低 1 x 108 個のセルを使用することをお勧めします。この細胞数は、JY、EL4、およびA20細胞から6〜10mgのタンパク質に相当し、0.5%のチャップスバッファーで可溶化した。IP用の細胞ペレットを調製するために、細胞を採取し、遠心し、5mLのPBSで2回洗浄する必要があります。次いで、細胞ペレットは、IPの時間まで-80°Cで1.5 mLマイクロ遠心チューブまたは15 mL円錐管に保存することができる。IP は、新鮮な収穫または凍結した細胞ペレットに対して実行できることに注意してください。
<ol><li>MHCクラスIまたはIIペプチドを単離するために、1 x 108 細胞の凍結ペレットを、手のひらでチューブの底部を温めることにより解凍する。500 μLのPBSをペレットに加え、ピペットを上下に加え、懸濁液が均質になるまで加えます。 注:細胞の種類によって、細胞ペレットの容積は大きく異なる場合があります。500 μLのPBSが細胞ペレットを溶解するのに十分でない場合は、細胞が上下にピペッティングしながら容易に分解されるまで、より多くのPBSを使用してください。</li>
	<li>PBSで再懸濁されたペレットの総体積を測定し、新しいチューブ2 mLマイクロ遠心チューブに移します。必要に応じて、より多くのチューブに分割します。</li>
	<li>細胞溶菌緩衝液の体積(プロテアーゼ阻害剤を含有するPBS中の1%チャップスバッファー、1ペレット/10mLの緩衝液)を加え、前工程で測定したPBS中で再懸濁した細胞ペレットの体積と同等である。リシスバッファーの最終的な濃度は、チャップスの 0.5% です。</li>
	<li>回転装置を使用して、4°Cで60分間10 rpmで回転させます。フルブレーキで4°Cで20分間18,000 x g で細胞リセートを遠心分離し、新しい2.0 mLマイクロ遠心チューブに上清(MHCペプチド複合体を含む)を移管します。</li>
	<li>200 x g で 200 x g の遠心分離により、ステップ 1.3.7 から抗体結合ビーズを 2 分間回収し、上清を除去します。</li>
	<li>ステップ2.4の細胞ライセート上清を抗体結合ビーズに移し、回転装置を使用して4°Cで14〜18時間(一晩)回転(10rpm)でインキュベートします。</li>
</ol>3. MHCペプチドの溶出(2日目)
注:ポリプロピレンカラムは、カラムにビーズを保持しながら、MHCペプチド複合体の溶出を可能にします。1%TFA(トリフルオロ酢酸)と酸性溶出前後のビーズに結合したMHCペプチド複合体の割合を評価するために、プロトコル中に重要なステップで取られたアリコートを用いてウェスタンブロットを実行することができる(省略可能な指標を参照)。 図3 に示すウェスタンブロッティングは、1%TFAでの酸性溶出後のMHCペプチド複合体の濃縮を明らかにする。この分数にシグナルが存在しない場合、溶出ステップが成功しなかったということを示します。なお、ビーズに対する非結合MHCペプチド複合体の割合は、ステップ3.1.6に記載されたアリコートを用いたウェスタンブロッティングにより並行して評価することもできる。
<ol><li>抗体結合ビーズからのMHCペプチド複合体の溶出<ol>
<li>ポリプロピレンカラムの底蓋を取り外し、カラムをポリプロピレンカラムラックの上に置き、その下に空の容器を取り付けて流れを通します。 注: 1 つのサンプルにつき 1 列が必要です。</li>
		<li>ポリプロピレンカラムを10 mLの緩衝Aでリンスし、重力で排水します。液溶出の流速が遅すぎる場合は、ポリプロピレンカラムの下端をさらに切る。</li>
		<li>ステップ2.5からビーズ-ライセート混合物(〜2mL)を測定し、回収し、ポリプロピレンカラムに移します。</li>
		<li>(オプション)ウェスタンブロッティングと凍結のための20 μL(または総体積から1/100)のアリコートを取ります。この画分は、ビーズと共にインキュベートされた全MHCペプチド複合体に相当する。</li>
		<li>液体混合物を重力で溶かしましょう。</li>
		<li>(オプション)フロースルーを収集して測定し、ウェスタンブロッティングと凍結のために20 μL(または全容量のうち1/100)のアリコートを取ります。この分数は、残留非結合MHCペプチド複合体を表す。</li>
		<li>ビーズ-ライセート混合物を可能な限り回収するには、ステップ3.1.3から1mLのバッファーAでチューブをすすぎ、ポリプロピレンカラムに移します。</li>
		<li>10 mLのバッファーAを加えて、ポリプロピレンカラムに保持されているビーズを洗浄します。洗浄バッファーを重力で溶かしましょう。</li>
		<li>洗浄工程をバッファーBの10mL、バッファAの10mL、そして10mLの緩衝液Cで繰り返します。</li>
		<li>ラックからポリプロピレンカラムを取り外し、新しい2.0 mLマイクロ遠心チューブの上部に置きます。柱とチューブを手で一緒に持ちます。</li>
		<li>ポリプロピレンカラムに1%TFAの300 μLを加え、上下に5回ピペットしてビーズを混ぜます。 注:ビーズはポリプロピレンカラムに保持され、MHC結合ペプチドは2.0 mLマイクロ遠心分離管で溶出します。</li>
		<li>新しい2.0 mLマイクロ遠心チューブで溶出液を移します。ステップ3.1.11を繰り返し、2つの溶出液をプールします(MHCペプチド複合体を含む溶出液は合計600 μLに対応する必要があり、ステップ3.2.4で使用されます)。</li>
		<li>(オプション)ウェスタンブロッティングと凍結のための6 μL(または総体積の1/100)のアリコートを収集します。この分数は、ビーズから溶出したMHCペプチド複合体に相当する。</li>
	</ol></li>
	<li>MHCペプチドの脱塩と溶出 注:MHCペプチドの脱塩と溶出ステップは、C18カラムを2.0 mLマイクロ遠心分離チューブに取り付けることによって行うことができます。より良い適合のために、C18カラムと2.0 mLマイクロ遠心チューブの間に製造業者が提供するアニールを取り付けます。このプロトコルでは、C18カラムが5~200 μL(6~60 μg)の容量で使用されます。すべてのステップはRTで行われます。<ol>
<li>C18カラムの上に200μLのメタノールを加え、1546 x g で遠心分離機を3分間加えます。フロースルーを破棄します。</li>
		<li>C18カラムの上に80%ACN(アセトニトリル)/0.1%TFAの200 μLを加え、1546 x g で遠心分離機を3分間加えます。フロースルーを破棄します。</li>
		<li>C18カラムの上に0.1%TFAの200 μLを加え、遠心分離機を1546 x g で3分間加えます。フロースルーを破棄します。</li>
		<li>ステップ3.1.12からC18カラムの上にMHCペプチド複合体の200 μLをロードします。遠心分離機は1546 x g で3分間、流れを捨てます。</li>
		<li>ボリューム全体がロードされるまで、ステップ 3.2.4 を 2 回繰り返します。なお、MHCペプチドはC18カラムに保持されている。</li>
		<li>0.1%TFAの200 μLをC18カラムに加え、遠心分離機を1546 x g で3分間追加します。フロースルーを破棄します。</li>
		<li>C18カラムを新しい2.0 mLマイクロ遠心分離チューブに移します。28%ACN/0.1%TFAの150 μLを加えることによってC18カラムからMHCペプチドをエルテ。</li>
		<li>遠心分離機 1546 x g で 3 分間</li>
		<li>フロースルーを新しい1.5 mLマイクロ遠心分離チューブに移します。フロースルーを破棄しないように注意してください。それは、単離されたMHCクラスIまたはIIペプチドを含む。</li>
		<li>合計体積450μLの場合は、ステップ3.2.7~3.2.9を2回繰り返します。</li>
		<li>LC-MSMSでサンプルを分析するまで、450 μLの溶出液(精製MHCクラスIまたはIIペプチド)を-20 °Cで凍結します。</li>
		<li>LC-MS/MS分析の前に、ステップ3.2.11から精製されたMHCクラスIまたはIIペプチドは、2時間45°Cの真空濃縮器、真空レベル:100 mTorrおよび真空ランプを使用して乾燥に蒸発する: 5. 注:凍結したサンプルの蒸発は非常に効率的です。乾燥したペプチドは、分析まで再凍結することができる。</li>
	</ol></li>
</ol>4. LC-MS/MSによるMHCクラスIおよびIIペプチドの同定
注:高性能オービトラップと高分解能の四重極時間質量分析計6を使用して、MHCクラスIおよびII免疫ペプチドームを分析します。以下の情報は、既存の様々なタンデム質量分析計装置が異なる運用基準に従って動作することを考慮して、唯一の指標として与えられる。手順の簡単な概要を以下に説明します。
<ol><li>乾燥したサンプル(ステップ3.2.12から)を4%のギ酸(FA)の50 μLで可溶化します。</li>
	<li>各サンプルに16 μLの3回の注入をロードし、自家製の逆相カラム(150-μm i.d.×250 mm長、木星3 μm C18 300 Å)で、5%-30%ACN-0.1%FAの勾配と600 nL/min流量をナノフローUHPLCに接続したMSに接続したMSにロードします。</li>
	<li>最大3秒の最大の120000の解像度で各完全なMSスペクトルを取得し、射出時間の自動モードとスペクトルを持つ4 x 105 のAGCを取得し、最大3秒の最も豊富な乗算前駆体イオンにタンデムMS(MS-MS)を使用してスペクトルを生成します。 注: タンデム-MS実験は、衝突エネルギー 30%、分解率 30,000、AGC 1.5 x 105、射出時間 300 ms で高エネルギー衝突解離(HCD)を使用して行われます。</li>
	<li>マウスおよびヒトデータベース(UniProtKB/Swiss-Prot(2019_09))を使用して、プロテオミクスLC-MS/MS解析ソフトウェア(PEAKS Xなど)を使用して、3つの注射/サンプルからのデータファイルを処理します。</li>
	<li>酵素パラメータには「不特定酵素消化」を、前駆体イオンとフラグメントイオンの質量許容度としては10ppmと0.01 Daをそれぞれ選択します。 注:可変的な変更は、脱アミド(NQ)および酸化(M)です。その他の検索パラメータはすべてデフォルト値です。最終的なペプチドリストは、プロテオミクスLC-MS/MS解析ソフトウェアを使用して、80%のALCと1%の偽発見率(FDR)を使用してフィルタリングされます。</li>
</ol>5. 免疫ペプチドミクスデータの可視化
注:MSによって生成された免疫ペプチドミクスデータの品質は、最近説明したように、複数の方法で評価することができます22,23。データを視覚化し、その全体的な品質、組成、および MHC 特異性を評価するために、MhcVizPipe (MVP) ソフトウェア ツールを使用できます。
<ol><li>すべての手順と関連ドキュメントに従って、Caron Lab GitHub Web サイト 24 で利用可能な MVP ソフトウェアをインストールして実行します。 注: MVP は、サンプルの品質、構成、および MHC 特異性を迅速かつ統合したビューを提供します。MVP は、確立された免疫ペプチドミクス アルゴリズム (NetMHCpan25、NetMHCIIpan26、および GibbsCluster27) の使用を並列化し、HTML (ハイパーテキスト マークアップ言語) 形式で整理されたわかりやすいレポートを生成します。レポートは完全にポータブルで、最新のWebブラウザを使用して任意のコンピュータで表示できます。HTML レポートの例については、補足データ 1-4 を参照してください。</li>
</ol>

著者らは、競合する財政的利益はないと宣言している。

2つのマウス細胞株(EL4およびA20)、1つのヒト細胞株(JY)、および5つの市販抗体[M1(抗H2Db/Kb)、Y3(抗H2Kb)、M5(抗H2-) IAd/IEd、W6/32(抗HLA-ABC)、L243(抗HLA-DR)は、このプロトコルのコンテキストでテストおよび検証され、高品質の免疫ペプチドミクスデータを提供しました。他の抗HLA抗体は利用可能である(例えば、抗HLA-A2 BB7.2)が、ここでテストされなかった。なお、W6/32抗体は、この分野で最も確立された抗体として広く使用されています。これは、ヒトのすべてのHLA-ABC分子によって提示されたペプチドの単離を可能にし、以前は専門家の研究室によって、新鮮または凍結組織8,39、末梢血単核細胞および骨髄単核細胞40、生検41、異種移植片41,42、検死43およびプラズマサンプルなどの様々な生物学的源から働くことを報告した。
プロトコル全体で使用される新しいソリューションの準備は非常に重要です。特に、ガラス瓶に新鮮な酸性溶液を使用することは、MSによって分析されたサンプルのその後の汚染を避けるために重要です。さらに、プロトコルが初めて、または新しい抗体で行われる場合、抗体が実際に青色のクマシーゲルを使用してCNBrセファローズビーズに結合されていることを評価することが重要です。MHCペプチド複合体の免疫的な捕捉に続く抗体結合ビーズの洗浄ステップは、非MHCペプチドの汚染を避けるためにも重要である。最後に、1%TFAを有するMHCペプチド複合体の溶出およびACN28%/0.1%FAを有するC18カラムからのペプチドの溶出に続く溶出物を廃棄しないように特別な注意が必要である。
文献で利用可能な既存のプロトコルは、分離手順の最後にペプチドをさらに精製するための追加のステップ、例えば、10〜30 kDa filter13,47を用いた異なる方法によるペプチド分別または限外ろ過を記述する。現在のプロトコルは、これらの追加のステップの詳細を提供していないし、高品質の免疫ペプチドミクスデータを提供するのに十分です.しかし、このようなステップは、ペプチド単離手順をさらに最適化するために、非専門家が修正およびトラブルシューティングを行うことを検討することができます。
ビーズの種類とビーズからMHC錯体を溶出するために使用される酸性溶出バッファーの種類も、トラブルシューティングのために13,14,15,16,17,18,19に変更することができます。この点に関して、セファロースCNBr活性化ビーズは、様々なタイプの抗体との結合の点で柔軟性を示す点に加えて比較的安価であるため、一般的に良い出発点である。現在のプロトコルにおいて、セファロースCNBr活性化ビーズは、5つの市販抗体(すなわち、M1、Y3、W6/32、L243、およびM5)を用いて比較的良好に作用することが示された。セファローズCNBr活性化ビーズに加えて、プロテインAまたはGまたはA / Gセファロース4ファストフロービーズも取り扱いやすく、比較的高価ですが、同様の結果を生成することができます。もう一つの考慮すべき要因は、プロテインAまたはGに対する抗体の親和性である。さらに、セファロースの磁性ビーズも非常に使いやすいが、比較的高価である。非専門家によって選択されたビーズの種類とは無関係に、図2に示すように、プロトコルの重要なステップでアリコートを収集し、青色のクマシー染色SDS-PAGEゲルを実行してビーズに対する抗体の結合効率を追跡することが奨励される。
MHCペプチド単離の成功に影響を与えるもう一つの重要な因子は、ビーズからMHCペプチド複合体を単離するために使用される酸性溶出緩衝液の種類を指す。異なる緩衝液は、0.1%、1%または10%のTFA、0.2%FAおよび10%の酢酸を含む報告されている。1%TFAは、試験したすべての抗体に対して働く溶出緩衝液であった。このステップは、 図3に示すように、MHCペプチドを捕捉するために使用されるMHC分子に対するウェスタンブロット法によっても追跡することができる。
アセトニトリル(ACN)および/またはトリフルオロ酢酸(TFA)を含むすべてのバッファーは攻撃的であり、プラスチックと接触した場合、可塑剤などの小さな分子および高分子物質でサンプルの汚染につながる可能性があります。このような問題を回避するために、有機溶剤および/またはTFAを含むすべてのソリューションを毎日新鮮に調製し、使用するまでガラス瓶に保管されます。ステップの大部分はプロテインLoBindプラスチック管で行われる。これらの管は、特にプロテオミクスのために設計されており、最高品質、殺生物剤、可塑剤、およびラテックスを含まないバージンポリプロピレン製です。また、スリップ剤を使用することなく、最適化された高度に研磨された金型で製造されています。これらの予防措置は、高品質の免疫ペプチドミクスデータの生成を可能にするために考慮することが重要です。
抗体は、MHC結合ペプチドの単離に対する重要な制限である。W6/32抗体は、ヒトにおけるHLA-ABCクラスI分子の全てによって提示されるペプチドの単離を可能にし、この分野で最も広く使用され、確立された抗体である。W6/32抗体の適用時に、特徴のないヒト細胞株または生体検体の高解像度HLAタイピングは必要ではないが、データ解釈を容易にするために特定のアプリケーションに推奨される。HLA/MHC タイピング情報は、複数のセルラインおよびマウス model49 のパブリック リソースでも見つけることができます。W6/32抗体以外にも、このプロトコルのコンテキストでテストおよび検証された4つの他の抗体(M1、M5、Y3、およびL243)はすべて市販されています。一方、以前の免疫ペプチドミクス研究で報告された他の多くの抗体は、コミュニティではほとんど採用されておらず、商業的に入手可能でないか、または比較的高価であるハイブリドーマ細胞株の培養を通じて入手可能である。
MHC結合ペプチドの単離に関するもう一つの重要な制限は、必要な出発物質の量である。必要量は、細胞表面上のMHC分子の発現量に反比例し、フローサイトメトリーによって定量することができる(図4A)。MHC分子の高発現レベルを示す細胞(例えば、樹状細胞および造血細胞全般)は、一般に、高品質の免疫ペプチド化データを得る。専門家のラボは5000万個のCells50を使用していますが、非専門家には1億〜10億個の細胞が推奨されています。組織生検(<13mg)41、異種移植片42、43、剖検44、および血漿45,46サンプルの使用も報告されたが、非専門の実験室では依然として困難である。また、推定されるMHC関連ペプチドの総数は、確立された細胞株(ここでは、使用される細胞株および抗体に応じて〜2000〜10000ペプチドの間)について十分に文書化されているが、この技術によって効率的に引き出される天然提示ペプチドの絶対量は議論されたままである。実際、これまでの研究では、単離手順の効率はペプチド依存性であり、0.5%〜2%51と低く可能であると推定された。免疫ペプチドミクスの他の制限は、あまり特徴のないMHC対立原にペプチドに正しくアノタネートするNetMHCpanスイートツールの方法と不備の再現性である。この点に関して、比較的新しいデータ非依存的な取得MSメソッド7、32、52、ならびに新しいペプチドクラスタリングおよびMHCペプチド結合予測アルゴリズム31,34,53,54のさらなる開発と応用 免疫ペプチドミクスにおけるペプチドアノテーションの再現性と精度の向上が期待されます。免疫ペプチドミクスは、MHC関連ペプチドのMS取得および計算分析に関する他の制限に直面しており、他の場所でカバーされています 1,6,55.
W6/32抗体を用いたヒト試料からのHLA-ABC関連ペプチドの単離は、多くの研究グループによって十分に確立され広く適用されており、マウスMHCクラスI-およびII関連ペプチドの単離は比較的確立されていない。したがって、マウスMHCリガンドの分離のための堅牢なプロトコルが必要です。ここでは、C57BL/6およびBALB/c起源の2つのマウス細胞株からのMHCクラスIペプチドおよびMHCクラスIIペプチドの分離に最適化されたプロトコルを提供します。具体的には、M1抗体を用いたクラスI H2Kb-およびH2Db関連ペプチド、ならびにM5抗体を用いたクラスII H2-IAdおよびH2-IEd関連ペプチドの単離を可能にする。したがって、現在のプロトコルの普及と応用は、様々なマウスモデルにおける基礎的および翻訳的免疫ペプチドミクス研究を促進すべきである。
このプロトコルは、免疫ペプチドミクスワークフローを確立および標準化し、新しいプロトコルのベンチマークにも使用できます。例えば、血液/血漿から新鮮または凍結組織、FFPE(ホルマリン固定パラフィン-埋め込み)に至るまで、様々な生物学的マトリックスで免疫ペプチドミクススクリーニングを行うために適応し、さらに最適化することができます。さらに、このプロトコルは、免疫ペプチドミクスにおけるサンプル調製手順の実験室内および検査間再現性を促進し、したがって、基礎および臨床研究における広い応用を見つけることが期待される。

過去10年間で、MHC関連ペプチドのレパートリーの調査への関心は学術部門を超え、バイオテクノロジーおよび製薬業界に達しました。実際、がんでは、腫瘍特異的な腫瘍特異的な新抗原の発見は、個別化腫瘍学につながる臨床免疫療法を開発するための産業分野における主要な研究の焦点を表しています1,2,3。基本的に、MHC関連ペプチドは、全身に提示され、細胞内の段階を反映し、自己免疫、移植、感染症、炎症、癌、およびアレルギーなどの様々な疾患状態において重要である1,4。したがって、ヒトにおけるMHC関連ペプチド、またはヒト白血球抗原(HLA)リガンドは、医学的に大きな関心事であり、総称して免疫ペプチドーム5と呼ばれる。
MSは、腫瘍特異的な新抗原8,9,10,11の発見を含む免疫ペプチドーム6,7を特徴付ける強力な分析アプローチである。免疫ペプチドミクス実験を行う典型的なワークフローには、MHC関連ペプチドの単離のためのサンプル調製、2)MSによるデータ取得、および3)様々な計算ソフトウエアツールを用いたデータ分析の3つの主要なステップが含まれる。この可視化されたプロトコルで説明されている高品質のサンプルの生成は、MSベースの免疫ペプチドミクスにおけるあらゆるプロジェクトの成功のために重要です。以下に説明するプロトコルは、高品質の免疫ペプチドミクスデータを生成するのに適した確立された細胞株からMHCクラスI-およびII関連ペプチドを単離することに焦点を当てています。これらの細胞株からの代表的な結果は、現在のプロトコルに示されている。

<table><tbody><tr><td>A20細胞株</td><td>ATCC</td><td>TIB-208</td><td>マウス B リンパ芽細胞</td></tr><tr><td>アセトニトリル、LC/MS グレード</td><td>FisherScientific</td><td>A955-4</td><td></td></tr><tr><td>抗ヒト HLA A、B、C (W6/32) - MHC クラス I</td><td>BioXcell</td><td>BE0079</td><td></td></tr><tr><td>抗ヒト/サル HLA-DR (L243) - MHC クラス II</td><td>BioXcell</td><td>BE0308</td><td></td></tr><tr><td>抗マウス H2 (M1/42.3.9.8) - MHC クラス I</td><td>BioXcell</td><td>BE0077</td><td></td></tr><tr><td>抗マウス H2-IAd/IEd (M5/114) - MHC クラス II</td><td>BioXcell</td><td>BE00108</td><td></td></tr><tr><td>抗マウス H2Kb (Y3) - MHC クラス I</td><td>BioXcell</td><td>BE0172</td><td></td></tr><tr><td>BupH リン酸緩衝生理食塩水パック (PBS)</td><td>ThermoFisher</td><td>28372</td><td>袋の内容物を最終容量の 500 mL 脱イオン水に溶解 (FisherScientific, W64)</td></tr><tr><td>CHAPS (3-[(3-cholamidopropyl)dimethylammonio]-1-プロパンスルホン酸)</td><td>EMDミリポア</td><td>220201-10MG</td><td></td></tr><tr><td>CNBr活性化セファロース</td><td>Cytivia</td><td># 17-0430-01</td><td></td></tr><tr><td>EL4 細胞株</td><td>ATCC</td><td>TIB-39</td><td>マウス T リンパ芽球</td></tr><tr><td>epTIPS LoRetention Tips, 1000 & micro;L/Eppendorf</td><td>FisherScientific</td><td>02-717-352</td><td>低保持材料でより良い結果</td></tr>が得られる <tr><td>epTIPS LoRetention Tips, 200 & micro;L/Eppendorf</td><td>FisherScientific</td><td>02-717-351</td><td>低保持材料でより良い結果</td></tr><tr><td>ギ酸、LC/MSグレード</td><td>FisherScientific</td><td>A117-50</td><td></td></tr><tr><td>グリシン</td><td>FisherScientific</td><td>RDCG0250500</td><td></td></tr><tr><td>塩酸溶液</td><td>FisherScientific</td><td>60-007-11</td><td></td></tr><tr><td>JY細胞株</td><td>Sigma Aldrich</td><td>94022533-1VL</td><td>EBV不死化B細胞リンパ芽球株</td></tr><tr><td>メタノール、LC/MSグレード</td><td>FisherScientific</td><td>A456-4</td><td></td></tr><tr><td>ポリ調製クロマトグラフィーカラム(ポリプロピレンカラム)</td><td>Bio-Rad</td><td>731-1550</td><td>プロトコルではポリプロピレンカラムと呼ばれる</td></tr><tr><td>プロテアーゼ阻害剤</td><td>ThermoFisher</td><td>A32963</td> 細胞溶解緩衝液Qifikit Dako K007811-8の<td>10mLあたり1ペレット</td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>ナトリウム重炭酸ナトリウム</td><td>Amresco</td><td>#0865-1kg</td><td></td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td><td>フィッシャー科学</td><td>MSX04201</td><td></td></tr><tr><td>固相抽出ディスク、ウルトラマイクロスピンカラムC18</td><td>ネストグループ</td><td>SEMSS18V</td><td>容量6&ndash;60 &micro;g、最大容量200&マイクロ;L</td></tr><tr><td>トリフルオロ酢酸 (TFA), LC-MS グレード</td><td>FisherScientific</td><td>PI85183</td><td></td></tr><tr><td>Tris</td><td>FisherScientific</td><td>T395-500</td><td></td></tr><tr><td>Tris-HCl</td><td>FisherScientific#</td><td>10812846001</td><td></td></tr><tr><td>Tube LoBind 1.5 mL/Eppendorf</td><td>FisherScientific</td><td>E925000090</td><td>低保持材料</td></tr><tr><td>Tube LoBind 2 mL/Eppendorf</td> <td>でより良い結果が得られますFisherScientific</td><td>13-698-795</td><td>低保持材料でより良い結果</td></tr><tr><td>水、LC/MSグレード</td><td>FisherScientific</td><td>W64</td><td></td></tr></tbody></table>

免疫ペプチドミクス:マウスとヒトmhcクラスi-およびii関連ペプチドの分離による質量分析

Immunopeptidomics: Isolation of Mouse and Human MHC Class I- and II-Associated Peptides for Mass Spectrometry Analysis

免疫ペプチドミクスは、ワクチンや免疫療法の開発を促進し、導く新しい分野です。具体的には、質量分析(MS)技術プラットフォームを用いて、主要組織適合性複合体(MHC)クラスIおよびクラスII分子によって提示されるペプチドの組成を調べたい。MSベースの免疫ペプチドミクスワークフローのすべてのステップの中で、サンプル調製は治療関連性の高品質なデータをキャプチャするために非常に重要です。ここでは、免疫親和性精製によってMHCクラスIおよびII関連ペプチドを、マウス(EL4およびA20)から、ヒト(JY)細胞株より具体的に分離する手順が記載されている。種々の試薬および特異的抗体は、抗体のビーズ結合効率およびビーズからのMHCペプチド複合体の溶出効率を検証するステップを含む、これらの細胞株からMHC関連ペプチドを単離するために十分に記述されている。このプロトコルは、免疫ペプチドミクスワークフローを確立および標準化し、新しいプロトコルのベンチマークにも使用できます。さらに、このプロトコルは、免疫ペプチドミクスにおけるサンプル調製手順の実験室内および実験室間再現性を促進することに加えて、非専門家にとって素晴らしい出発点となる。

ここでは、高品質な免疫ペプチド化データを提供するマウスおよびヒト細胞株からのMHCクラスIおよびクラスIIペプチド複合体の精製プロトコルを提示する。プロトコルは、市販の抗体を使用したサンプル調製に焦点を当てています。

免疫ペプチドミクス:マウスとヒトMHCクラスI-およびII関連ペプチドの分離による質量分析

Immunopeptidomics is an emerging field that fuels and guides the development of vaccines and immunotherapies. More specifically, it refers to the science ...

このプロトコルは、実行が簡単で、任意の研究室の手の届くところにあるため重要です。このプロトコルは、HLAまたはMHCタイプIまたはタイプIIペプチドをヒトまたはマウスのサンプルから単離することを可能にする。この方法は、がん、ウイルス学、自己免疫疾患など、免疫系に関わるすべての研究分野に関連する科学的な質問に対処することができます。このプロトコルは、研究室で働く誰でもアクセスできるように構築されました。手順に従ってください。セファロースシアノーゲン臭化ビーズを、サンプルあたり80ミリグラムの重量を量り、15ミリリットルの円錐形チューブに移す。5ミリリットルの塩酸1ミリモルを加えます。ピペットは、乾燥ビーズの再懸濁を容易にするために5回上下し、その後、1ミリモル塩酸の追加8.5ミリリットルで円錐管を充填します。回転装置を使用して、ビーズを室温で30分間、20 RPMで回転させます。200xGでビーズを室温で2分間遠心し、吸引によって上清を取り除く。500マイクロリットルのカップリングバッファーをビーズパレットに加え、ビーズ懸濁液を新しい2ミリリットル遠心管に移し、脇に置きます。これらのビーズに抗体を結合するには、選択した抗体の2ミリグラムを新しい2ミリリットルマイクロ遠心分離チューブに加え、カップリングバッファー溶液で体積を1ミリリットルにして、1ミリリットル当たり2ミリグラムの最終濃度を得る。前に調製したビーズ溶液を移し、抗体溶液に添加します。次いで、20RPMでマイクロ遠心管を回転させて120分間回転させ、ビーズを遠心分離し、先に述べたように上清を取り除く。次に、抗体結合ビーズを含むマイクロ遠心分離管に0.2モルグリシンの1ミリリットルを加え、ローテーター装置を使用して室温で20RPMで60分間回転させることで、ビーズのブロッキングと洗浄を開始します。上清を遠心して取り除いた後、1ミリリットルPBSでビーズを洗い、遠心分離によって上清を取り除き、使用するまで4度のPBSの1ミリリットルでビーズを保存します。MHCクラスIまたはIIペプチドを単離するために、手のひらでチューブの底部を温めることによって1億個の細胞の凍結パレットを解凍する。500マイクロリットルのPBSをパレットに加え、懸濁液が均質になるまでピペットを上下に加えます。サスペンションを新しい2ミリリットルマイクロ遠心分離チューブに移し、等量の細胞ライシスバッファーを追加します。回転装置を使用して摂氏4度で10RPMで60分間回転させます。フルブレーキで摂氏4度で20分間18,000x Gで細胞ライセートを遠心し、新しい2ミリリットルのマイクロ遠心チューブで上清を移します。遠心分離と上清除去によって抗体結合ビーズを回収する。次いで、細胞のライセート上澄み剤を抗体結合ビーズに移し、ローテーター装置を用いて摂氏4度で14〜18時間10RPMでインキュベートする。2日目にポリプロピレンカラムの底蓋を取り外し、その柱をポリプロピレンカラムラックの上に置き、フロースルーを収集するために空の容器を下に取り付けます。ポリプロピレンカラムを10ミリリットルのバッファーAですすいで、重力で排出します。液溶出の流速が遅すぎる場合は、ポリプロピレンカラムの下端をさらに切る。ビーズ/ライゼット混合物を測定し、収集し、ポリプロピレンカラムに移します。液体混合物を重力で溶かしましょう。必要に応じて、ウェスタンブロッティング用のアリコート20マイクロリットルを収集して凍結します。次に、ポリプロピレンカラムに保持されているビーズを10ミリリットルのバッファーAを追加し、重力で溶出させて洗浄します。ラックからポリプロピレンカラムを取り出し、新しい2ミリリットルのマイクロ遠心チューブの上に置き、柱とチューブを手で持ちます。ポリプロピレンカラムに1%TFAの300マイクロリットルを加え、上下に5回パイピングしてビーズを混ぜます。次いで、新しい2ミリリットルのマイクロ遠心チューブで溶出を移す。MHCペプチドを脱塩および溶出するには、C-18カラムの上に200マイクロリットルのメタノールを加え、遠心分離機を1,546x Gで3分間加えてフロースルーを廃棄します。C-18カラムの上に0.1%TFAに80%アセトニトリルの200マイクロリットルを加え、再び遠心分離機を加えてフロースルーを廃棄します。その後、0.1%TFAの200マイクロリットルを加え、遠心分離によって流量を廃棄する。最後に、C-18カラムの上にMHCペプチド複合体の200マイクロリットルをロードし、遠心分離によって流れを捨て、完全な体積がロードされるまで繰り返します。次に、0.1%TFAの200マイクロリットルを加え、遠心分離機をフロースルーを廃棄し、C-18カラムを新しい2ミリリットルマイクロ遠心分離チューブに移し、0.1%TFAに28%アセトニトリルの150マイクロリットルを加えてMHCペプチドを溶出させます。遠心分離後、フロースルーを新しい1.5ミリリットルマイクロ遠心分離チューブに回収します。溶出プロセスを合計450マイクロリットルの合計体積に対して2回繰り返し、LC-MS-MSで分析されるまでマイナス20°Cで凍結します。これらの精製ペプチドを使用して、質量分析計でMHCクラスIおよびIIペプチドを同定します。ビーズの結合効率は、結合前の抗体と比較して、ビーズがCNBrビーズに共有結合する場合の軽鎖および重鎖のシグナル染色強度の有意な減少によって示された。酸性溶出後のMHCペプチド複合体の単離は、抗HAL-ABC重鎖抗体を用いたMHCペプチド複合体の強力な検出シグナルによって確認された。現在のプロトコルを用いた結果のイントラおよび個体間再現性も推定された。3つの異なる生物学的複製物で検出されたペプチドの数の平均変動係数は小さく、1.9%から11%に変化したが、ペプチドの同一性はかなり変化し、39%から63%の範囲の3つの生物学的複製物にわたって再現性を持って検出されたペプチドの割合は、同定されたペプチドのMHC結合強度の予測を示した。マウスMHCクラスIおよびクラスIIペプチドについて、述語の強いまたは弱い結合剤はそれぞれ89%および87%であった。ヒトHLAクラスIおよびクラスIIペプチドの場合、述語の強いまたは弱い結合剤はそれぞれ97%および70%であった。LHCクラスIおよびクラスIIペプチドに対するマウスおよびヒトのペプチド結合モチーフも生成された。このプロトコルの最適化に先立ち、マウスMHCクラスIおよびIIペプチドの単離は非常に困難であった。この最適化されたプロトコルは、例えば、多くの多様な疾患関連研究の検証に日常的に使用されるインビボマウスモデルからのマウスMHCクラスIおよびIIペプチドの単離を容易にする。

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Research

JoVE Journal

Biochemistry

生物化学

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ペプチドエピトープ特異的T細胞のMHCテトラマーベースの濃縮

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医薬品(DP)から宿主細胞タンパク質(HCP)を濃縮し、プロテオーム濃縮ビーズを使用してペプチドを検出するためのプロトコルが示されています。この分析法は、自社製のモノクローナル抗体(mAb)原薬(DS)を使用して実証されており、これは、性能の観点からさまざまな分析法を評価および比較するための十分に特性評価された標準物質です。...

エンリッチメントビーズと限定消化を組み合わせた宿主細胞タンパク質分析(英語)

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学ぶマウスとヒトのMHCクラスI・II関連ペプチド分離法。抗体結合ビーズを用いた質量分析前処理プロトコルで、免疫ペプチドミクス研究を支援します。がんや自己免疫疾患の免疫応答解析に応用可能です。

免疫ペプチドミクス:マウスとヒトMHCクラスI-およびII関連ペプチドの分離による質量分析

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