Name: 生物発光を用いたマウスにおける乳がん増殖および転移性コロニー形成のモニタリング (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-11-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 52 s
Description: 学ぶマウスにおける乳がんの非侵襲的モニタリング法。ルシフェラーゼと蛍光タンパク質を用いて腫瘍増殖と転移をリアルタイムで追跡し、抗がん薬の前臨床研究に応用可能です。

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Y.D.S.研究室のメンバーの皆様に感謝いたします。エルサレムのハダサ医療センターのWohl Institute for Translational Medicineが、小動物イメージング施設を提供してくれたことに感謝します。この研究は、イスラエルがん 研究基金のリサーチキャリア開発賞 の支援を受けた。

全てのマウス実験は、ヘブライ大学施設動物管理・使用委員会承認プロトコールMD-21-16429-5の下で実施した。さらに、ヘブライ大学は、実験動物ケアの評価と認定のための協会(AAALAC)によって認定されています。
1. 細胞株のメンテナンス
注:ヒト乳癌細胞株(MCF-7、MDA-MB-468、およびMDA-MB-231)をこのプロトコールで使用した。
<ol><li>全ての乳癌細胞株をダルベッコ改変イーグル培地(DMEM)中で培養し、加湿二酸化炭素(5%CO2)インキュベーター中で37°Cで10%ウシ胎児血清(FBS)および1%ペニシリン-ストレプトマイシンを添加した。 メモ: セル密度を定期的に確認してください。分割して、将来の使用のために拡張し、70%のコンフルエンシーに達したときに拡張します。</li>
</ol>2. ウイルスの準備
<ol><li>HEK293T細胞を1mLのトリプシンで剥離するまで処理する。</li>
	<li>トリプシン活性を中和するために10mLのDMEM(10%FBS)を加え、細胞懸濁液を新しい15mL遠沈管に移す。</li>
	<li>150 × g で5分間遠心分離し、細胞を沈降させた。遠心分離後に上清を捨て、1mLの新鮮なDMEM培地を加える。</li>
	<li>細胞濃度を決定し、6ウェルプレートに1.2×106 細胞/ウェルのシードを投与する。</li>
	<li>翌日、トランスフェクション試薬、無血清DMEM、エンベローププラスミド(VSV-G)、レンチウイルスパッケージングプラスミド(ΔVPR)、およびpLX304ルシフェラーゼ-V5ブラストプラスミドまたはFUW GFPプラスミドを含む、必要なすべての試薬を予温します。</li>
	<li>1.5 mL のオートクレーブ処理された遠沈管で、50 μL の無血清 DMEM を 0.3 μg の VSV-G プラスミド、1 μg の ΔVPR、および 1.2 μg の pLX304 ルシフェラーゼ-V5 ブラストプラスミドまたは FUW GFP プラスミドと混合します。</li>
	<li>これらのプラスミドを培地と十分に混合した後、5 μLのトランスフェクション試薬を加え、穏やかに混合し、混合物を室温で15分間インキュベートする。</li>
	<li>インキュベーション後、混合物をHEK293T細胞に滴下する。</li>
	<li>24時間後、増殖培地を2mLの(30%FBS)DMEMと交換する。翌日(トランスフェクション後48時間)に、ウイルス(「pLX304ルシフェラーゼ-V5またはFUW GFPウイルス」)を含む培地を採取する。 注: 30% FBS を使用すると、ウイルスの生成効率が向上します。</li>
	<li>HEK293T細胞残渣を避けるために、ウイルス含有培地を0.45μmのシリンジフィルターまたは遠心分離機に150× g で5分間通過させ、上清を回収する。 注: 長期間保存するには、ウイルスの作動アリコートを -80 °C に保ちます。</li>
</ol>GFPおよびルシフェラーゼを安定に発現する細胞(「GFP+Luc+細胞」)の 樹立
<ol><li>細胞を感染させる前日に、6ウェルプレートに1ウェルあたり8×105 個の細胞をシードした。</li>
	<li>一晩インキュベーションした後、増殖培地を8μg/mLのポリブレンを含む新鮮な培地と交換する。200 μLのFUW GFPウイルスを細胞に滴下する。</li>
	<li>オプション:ウイルス効率を高めるには、プレートを560 × g で30分間(37°C)遠心分離します(スピン感染)。</li>
	<li>細胞を48時間インキュベートし、蛍光顕微鏡によりGFP発現を検証した。</li>
	<li>蛍光活性化細胞選別(FACS)(GFP+)によりGFP発現細胞を選別する(図1A)。</li>
	<li>GFP選別した細胞に、ステップ3.2で説明したようにpLX304ルシフェラーゼ-V5ブラストウイルスを感染させます。</li>
	<li>感染後30時間後にブラストサイジン(10 μg/mL)で細胞を処理し、pLX304ルシフェラーゼ-V5芽細胞発現細胞(GFP+、Luc+ 細胞)を濃縮する。その後、2日ごとに、ブラストサイジンを含む新鮮な培地と交換する。さらに、対照として、ナイーブ細胞を同じブラストサイジン含有培地で処理する。 注:感染細胞と対照細胞の間には、ブラストサイジン処理の数日後に明確な違いが観察されるべきである。この効果は細胞株依存性であり、通常〜8〜10日かかる。生存率が低い場合、ウイルス産生収率が低いことを示します。その場合は、効率が低いと将来の実験に影響を与える可能性があるため、ウイルスの新しいバッチを生成します。</li>
</ol>4. インビトロ ルシフェラーゼ活性の検証
<ol><li>MCF-7、MDA-MB-468、およびMDA-MB-231 GFP+ Luc+細胞を15cmプレート中で80%コンフルエントになるまで増殖させる。ステップ2.1〜2.2に記載されているように、トリプシン処理によって細胞を回収する。</li>
	<li>各ウェル内の細胞数の増加(0.1、0.5、1、2、3、4×104)を黒い96ウェルプレートに播種する。 注:黒の96ウェルプレートは、白色または透明なプレートが自動発光シグナルを生成するため、ルシフェラーゼレベルの測定に適しています。対照として、1つのウェルにリン酸緩衝生理食塩水(PBS)のみを使用して、PBSからの自己発光がないことを確認します。</li>
	<li>すべてのウェルを100μLのDMEMで満たし、16〜24時間インキュベートする。</li>
	<li>30 mg/mL のストックから PBS 中のルシフェリン溶液を 1.5 mg/mL の濃度で調製します。ルシフェリン溶液のストックをアリコートし、-20°Cで保存する。</li>
	<li>細胞をPBSで1回穏やかに洗浄し、各ウェルに100μLのルシフェリン溶液を加え、2分間待つ。最後に、生物発光を用いて全ての乳癌細胞におけるルシフェラーゼ活性を測定する。 注:動物実験の前に インビトロGFP およびルシフェラーゼ発現を調べることは極めて重要である。さらに、ブランクウェルを使用して背景を減算します。</li>
</ol>5. マウスにGFP + Luc+ 細胞を注射する
<ol><li>5 ×106 (MCF-7 および MDA-MB-468) または 2 ×106 (MDA-MB-231) GFP+ Luc+ 細胞をそれぞれ 200 μL または 100 μL PBS に移入します。</li>
	<li>注射前に、滅菌された生物学的フードを5%消毒液で洗浄する( 材料表を参照)。次いで、4%イソフルランを含む濾過された(0.2μm)空気でマウスを1L/minの気流速度で2−3分間麻酔する。 注:適切な麻酔を確認することが不可欠です。マウスのつま先をつまんで、応答を探します。</li>
	<li>麻酔をかけたマウスの頭の上に円錐形を仰臥位に置きます。麻酔下での乾燥を防ぐために、獣医軟膏をその目に塗布する。</li>
	<li>乳腺の上のマウスの腹部を綿棒でエタノールで拭き取り、4番目の 乳腺を鉗子で持ち上げます。</li>
	<li>脂肪パッドの下に針27 G x 3/4(0.4 x 19 mm)を挿入し、100 μLの細胞懸濁液をゆっくりと注入する。 注:丸い膨らみが皮膚の下に表示されます。さらに、不適切な注射は、同じ実験群における腫瘍の増殖速度または非存在の偏差をもたらし得る。</li>
	<li>注射手順の後、マウスをフードから取り出し、新しいケージに移します。マウスが意識に戻るまでマウスを監視します。 メモ:使用済みの針とシリンジがすべてシャープスボックスに捨てられていることを確認します。</li>
</ol>6. GFP+ Luc+ マウスにおけるルシフェラーゼレベルの測定
<ol><li>生物発光が検出される前に、左手で首をつかんで意識のあるマウスを拘束してください。次に、手を左に傾けて、下半身を仰臥位にした状態でマウスを上向きにします。</li>
	<li>100 μLのルシフェリン(30 mg/mL)を左下腹部象限のマウス腹部表面に注射し、針サイズ27 G x 3/4(0.4 x 19 mm)の1.0 mLシリンジを使用します。 注:針の先端は、内臓を貫通する可能性があるため、腹壁から3〜5mm以上挿入しないでください。さらに、麻酔をかけられたマウスの体内でのルシフェリン分布が意識マウスよりも遅いため、麻酔なしで注射を行うことが推奨される。したがって、意識のあるマウスにおけるルシフェラーゼレベルをモニタリングすることは、より迅速な手順である。</li>
	<li>腫瘍動態を測定する前に、麻酔なしでマウスを7分間保持し、続いて麻酔チャンバー内で3分間保持する。 注:インキュベーション時間は、異なる実験、細胞株、および種ごとに異なります。したがって、実験を開始する前にインキュベーション時間を較正することが推奨される。</li>
	<li>ステップ5.2-5.3で説明されているようにマウスを麻酔する。</li>
	<li>インキュベーション中にソフトウェア(材料表)を開き、イメージングシステムを初期化し、「 初期化」 ボタンをクリックします。 注:カメラが冷却されて-90°Cに達するまでに約10分かかることに注意してください。 さらに、バックグラウンドコントロールとして、ナイーブマウス(すなわち 、ルシフェラーゼ遺伝子を発現しない細胞を注射したGFP+ マウス)におけるルシフェラーゼレベルを測定する。</li>
	<li>次の設定を使用して自動露出の設定を維持します:露出時間自動、60秒。ビニングミディアム、F /ストップ1;励起フィルタがブロックされました。発光フィルターが開きます。 初期化 が終了したら、 イメージングウィザード|を選択します。生物発光 をクリックし、[次へ]をクリック |フィルター|を開く 画像 の 被写体でマウスを選択します。</li>
	<li>フィールド ビューで、ステージ C (10 cm) と [被写体の高さ: 1.50 cm] を選択します。</li>
	<li>「 イメージ・セットアップ」ステージ を C にクリックし、「 取得」 ボタンをクリックする前に、マウスがステージ上に適切な仰臥位に置かれていることを確認してください。</li>
	<li>ドアを閉じ、[ 取得] ボタンをクリックして、画面に画像が表示されるのを待ちます。 メモ: 自動露出 オプションを使用すると、強い信号は信号に応じて5〜20秒かかります。弱い信号は約60秒かかります。</li>
	<li>他のマウスについてもこの手順を繰り返します。</li>
	<li>肺転移を検出するには、原発巣の強い信号を厚い黒い段ボール紙で覆い、肺の腹側だけをカメラに向かって露出させます。上記と同じパラメータを使用して画像をキャプチャします。</li>
</ol>7. 生物発光と蛍光を用いた 生体外 画像の取得
<ol><li>デシケーター内の二酸化炭素(CO2)吸入を用いてマウスを安楽死させ、オートクレーブ処理されたハサミおよび鉗子を用いてマウスを解剖する。</li>
	<li>0.9%生理食塩水を使用してマウスを灌流し、臓器を採取し、1x PBSですすぎ、臓器から血痕を除去する。</li>
	<li>すすぎた器官をペトリ皿に移し、生物発光機の段階に置く。手順 6.2 ~ 6.6 で説明したのと同じ生物発光設定を適用します。 注:ルシフェラーゼシグナルの減少により、このステップは時間制限があります。これにより、マウスを安楽死させた後、直ちに生物発光により臓器を可視化する。</li>
	<li>GFP 画像の場合は、生物発光の代わりに蛍光 GFP フィルターを使用して、手順 6.3 で説明したのと同じ設定を適用します。</li>
	<li>実体顕微鏡を用いて肺画像を撮影し、GFP+ コロニーの存在を調べた。</li>
</ol>8. 生物発光データ解析
<ol><li>ソフトウェアをダブルクリックし、[ファイル]メニューから[開く]を選択します。</li>
	<li>すべてのファイルを開き、最小化します。すべての単位が 放射輝度(光子)であることを確認します。さらに、「 すべてに適用 」をクリックして、すべての画像に同じパラメーターを保持します。</li>
	<li>表示メニューからツールパレットを選択すると、新しいウィンドウが開きます。</li>
	<li>「 ツールパレット」 ウィンドウから「 ROI ツール 」タブを選択し、「 タイプ」で 「平均 Bkg ROI」を選択します。</li>
	<li>ROI ツールから [円] を選択し、マウスの胸部領域に小さな円を描画します。</li>
	<li>円をダブルクリックし、[バックグラウンド ROI] タブから [将来の ROI に BKG として使用する] オプションを選択し、[完了] をクリックします。</li>
</ol>9. 全フラックスの測定
<ol><li>「ツールパレット」ウィンドウで、「ROI ツール」タブを選択し、「タイプ」で「ROI の測定」を選択します。</li>
	<li> ROIツールから[円]を選択し、マウスの原発腫瘍に大きな円を描きます。</li>
	<li>[ROI のコピー] を右クリックし、[ROI を各マウスのすべての個別のファイルに貼り付け] を右クリックします。</li>
	<li>[ROI ツール] タブの [ROI の測定] をクリックすると、[ROI 測定] という名前の新しいウィンドウが開きます。このタブでは、測定値タイプを放射輝度(光子)として、画像属性をすべて入力された値として保持します。</li>
	<li>ファイルを 測定ファイル (*.txt) または Csv (*.csv) 形式でエクスポートします。</li>
	<li>エクスポートしたデータをスプレッドシートで開き、 合計フラックス (p/s) と週の値を取得します。 メモ: この手順は、さまざまなグループを測定するために使用できます。例えば、ビヒクルで処置されたマウス 対 薬物で処置されたマウスが挙げられる。</li>
	<li>XY プロットを生成し、X 軸に沿って 時間 を表示し、Y 軸に沿って 合計フラックス (p/s) を表示します。各週について、各サンプルグループの [総磁束(p/s) ]パラメータを取得し、ノンパラメトリックスチューデントの t検定を使用して有意差を決定します。</li>
</ol>

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</ol>

すべての著者は、利益相反がないことを開示しています。

動物ベースの実験は、癌研究7、8、9のために必須であり、そして実際に多くのプロトコルが開発されている3、6、10、11、12、13、14。しかし、これらの研究のほとんどは、実験の終了時にのみ生物学的効果を決定したため、腫瘍増殖動態または転移コロニー形成への影響は未定のままである。ここでは、GFPおよびルシフェラーゼを発現する細胞を乳腺脂肪パッドに接種することによる非侵襲的二重生物発光アプローチ...

乳がんは世界中で頻繁に発生するがんであり、米国では毎年約25万件の新規症例が診断されています1。その高い発生率にもかかわらず、抗がん剤の新しいセットは乳がん患者の転帰を有意に改善しました2。しかし、多くの患者が疾患の再発を経験し、患者の罹患率および死亡率の主な原因である重要な臓器2への転移性転移を経験するため、これらの治療は依然として不十分である。したがって、乳がん研究における主な課題の1つは、遠位転移の形成を調節する分子メカニズムを同定し、その発生を抑制する新しい手段を開発することである。
がん転移は、細胞が原発巣から剥離し、血液循環を介して隣接する組織に侵入する動的プロセスである。したがって、細胞が同様の転移性カスケードを受ける動物モデルは、このプロセス3、4を支配する機構の同定を容易にすることができる。さらに、これらの in vivo モデルは、乳癌治療剤5、6の開発に不可欠である。しかしながら、これらの同所性モデルは、効果が終了時にのみ決定されるため、実際の腫瘍増殖動態を示すことはできない。そこで、腫瘍の発生と転移性コロニー形成をリアルタイムで検出するルシフェラーゼベースのツールを確立しました。さらに、これらの細胞はGFPを発現し、転移性コロニーを検出する。このアプローチは比較的単純であり、侵襲的な処置を伴わない3。したがって、ルシフェラーゼと蛍光検出を組み合わせることは、乳がん治療薬および疾患管理の前臨床試験を進めるための有用な戦略である。

<table><tbody><tr><td>1.7 mL エッペンドルフチューブ</td><td>Lifegene</td><td>LMCT1.7B-500</td><td></td></tr><tr><td>10 &Lチップ</td><td>Lifegene</td><td>LRT10</td><td></td></tr><tr><td>1000 & マイクロ;Lチップ</td><td>Lifegene</td><td>LRT1000</td><td></td></tr><tr><td>15 mLチューブLifegene</td><td></td><td>LTB15-500</td><td></td></tr><tr><td>200 &micro;Lチップ</td><td>Lifegene</td><td>LRT200</td><td></td></tr><tr><td>6ウェル 細胞培養プレート</td><td>COSTAR</td><td>3516</td><td></td></tr><tr><td>96ウェルプレート BLACK フラットボトム</td><td>バー Naor</td><td>BN30496</td><td></td></tr><tr><td>自動セルカウンター</td><td>サーモフィッシャー</td><td>A50298</td><td></td></tr><tr><td>BD FACSAria III ソーター</td><td>BD</td><td></td><td></td></tr><tr><td>BD Microlance 3 針 27 G (3/4'')</td><td>BD</td><td>302200</td><td></td></tr><tr><td>BD Plastipak シリンジ 1 mL x 120</td><td>BD</td><td>303172</td><td></td></tr><tr><td>Corning 100 mm x 20 mm スタイル ディッシュ</td><td>コーニング</td><td>430167</td><td></td></tr><tr><td>コーニング 150 mm x 20 mm スタイル ディッシュ</td><td>コーニング</td><td>430599</td><td></td></tr><tr><td>Countess 細胞計数チャンバースライド</td><td>サーモフィッシャー</td><td>C10228</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコ改変イーグル培地 (DMEM)、高グルコース、グルタミン</td><td>なし生物産業</td><td>01-055-1A</td><td></td></tr><tr><td>Eclipse 80i 顕微鏡</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>eppendorf 遠心分離機 5810 R</td><td>Sigma Aldrich</td><td>EP5820740000</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清 (FBS)</td><td>生物産業</td><td>04-127-1A</td><td></td></tr><tr><td>FUW GFP</td><td></td><td></td><td>ヨッシ・ブガニム博士の研究室(エルサレム・ヘブライ大学)から贈られました</td></tr><tr><td>HEK293T</td><td></td><td></td><td>Gifted from Dr. Lior Nissim's lab (Hebrew University of Jerusalem)</td></tr><tr><td>Isoflurane, USP Terrell</td><td>Piramal</td><td>NDC 66794-01-25</td><td></td></tr><tr><td>IVIS Spectrum In Vivo Imaging System</td><td>Perkin Elmer</td><td>124262</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine Solution</td><td>Biological industries</td><td>03-020-1A</td><td></td></tr><tr><td>Living Image Software</td><td>PerkinElmer</td><td></td><td>生物発光測定</td></tr><tr><td>MCF-7</td><td>ATCC</td><td>ATCC HTB-22</td><td></td></tr><tr><td>MDA-MB-231</td><td>ATCC</td><td>ATCC HTB-26</td><td></td></tr><tr><td>MDA-MB-468</td><td>ATCC</td><td>ATCC HTB-132</td><td></td></tr><tr><td>パスツールピペット</td><td>NORMAX</td><td>2430-475</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Hylabs</td><td>BP655/500D</td><td></td></tr><tr><td>pCMV-dR8.2-dvpr</td><td>Addgene</td><td>#8455</td><td>提供:David M. Sabatini's lab (Whitehead institute, Boston, USA)</td></tr><tr><td>pCMV-VSV-G</td><td>Addgene</td><td>#8454</td><td>Provided by David M. Sabatini's lab (Whitehead institute, Boston, USA)</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin Solution</td><td>Biological Industries</td><td>03-031-1B</td><td></td></tr><tr><td>ペトリ皿 90 mm (90x15)</td><td>MINI PLAST</td><td>820-090-01-017</td><td></td></tr><tr><td>ピペット 10ml</td><td>Lifegene</td><td>LG-GSP010010S</td><td></td></tr><tr><td>ピペット 25ml</td><td>Lifegene</td><td>LG-GSP010050S</td><td></td></tr><tr><td>ピペット 5ml</td><td>Lifegene</td><td>LG-GSP010005S</td><td></td></tr><tr><td>pLX304 Luciferase-V5 blast plasmid</td><td>Addgene</td><td>#98580</td><td></td></tr><tr><td>Polybrene</td><td>Sigma Aldrich</td><td>#107689</td><td></td></tr><tr><td>Prism 9</td><td>GraphPad</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Reagent Reservoirs</td><td>Bar Naor</td><td>BN20621STR200TC</td><td></td></tr><tr><td>SMZ18 実体顕微鏡</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sodium Chloride</td><td>Bio-Lab</td><td></td><td></td>190359400</tr><tr><td>シリンジフィルター</td><td>Lifegene</td><td>LG-FPV403030S</td><td></td></tr><tr><td>トリパンブルー 0.5% 溶液</td><td>生物産業</td><td>03-102-1B</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン EDTA 溶液 B (0.25%)、EDTA (0.05%)</td> <td>生物産業</td><td>03-052-1a</td><td></td></tr><tr><td>真空駆動フィルター</td><td>SOFRA LIFE SCIENCE</td><td>SPE-22-500</td><td></td></tr><tr><td>Virusolve</td><td></td><td>消毒剤</td><td></td></tr><tr><td>VivoGlo Luciferin, In Vivo Grade</td><td>Promega</td><td>P1043</td><td></td></tr><tr><td>X-tremeGENE HP DNA Transfection Reagent</td><td>Sigma Aldrich</td><td>#6366236001</td><td></td></tr></tbody></table>

生物発光を用いたマウスにおける乳がん増殖および転移性コロニー形成のモニタリング

Monitoring Breast Cancer Growth and Metastatic Colony Formation in Mice using Bioluminescence

乳癌は、頻繁な不均一な悪性腫瘍であり、主に遠隔臓器転移による女性の死亡原因の第2位である。癌細胞が乳腺脂肪パッドに注入される広く使用されている同所性マウスモデルを含む、いくつかの動物モデルが作製されている。しかし、これらのモデルは、腫瘍増殖動態および転移性コロニー形成のモニタリングには役立たない。マウスのがん細胞をリアルタイムでモニタリングする最先端のツールは、腫瘍生物学の理解を大きく前進させるでしょう。 
ここでは、ルシフェラーゼおよび緑色蛍光タンパク質(GFP)を安定に発現する乳癌細胞株が樹立された。具体的には、この技術は、 インビトロで ルシフェラーゼ活性を測定することによって開始され、続いて非肥満糖尿病重症複合免疫不全(NOD-SCID)マウスの乳腺脂肪パッドへの癌細胞の移植によって開始される2つの逐次ステップを含む。注射後、腫瘍増殖および転移性コロニー形成の両方が、非侵襲的生物発光画像化システムによってリアルタイムでモニターされる。次いで、肺におけるGFP発現転移の定量を蛍光顕微鏡により調べ、観察された生物発光結果を検証する。ルシフェラーゼと蛍光ベースの検出ツールを組み合わせたこの洗練されたシステムは、乳がんの治療や疾患管理に使用できる大きな可能性を秘めた 、生体内で のがん転移を評価します。

GFPおよびルシフェラーゼベクターを発現する乳癌細胞株(MDA-MB-231、MCF-7、およびMDA-MB-468)を作製した。具体的には、これは逐次感染によって達成された。まず、乳癌細胞株を、蛍光GFPを発現するレンチウイルスベクターに感染させた。GFP陽性細胞(GFP+)を感染後2日目に選別し(図1A、B)、pLX304ルシフェラーゼ-V5ベクターに感染させた。次いで、ブラストサイジンを用いて、示された(GFP+、Luc+)細胞を生成するルシフェラーゼを選択する。 インビトロ ルシフェラーゼ活性を検証するために、我々は、ルシフェラーゼ活性レベルの細胞数依存的な増加を実証した(図1C)。さらに、ルシフェラーゼ活性と細胞数との間に線形相関が認められた(図1D)。
マウスにおけるルシフェラ...

ここでは、種々の乳癌細胞株におけるルシフェラーゼおよび緑色蛍光タンパク質発現を伴う非侵襲的モニタリング法について説明する。このプロトコルは、マウスにおける腫瘍形成および転移性コロニー形成をリアルタイムでモニターする技術を提供する。

Breast cancer is a frequent heterogeneous malignancy and the second leading cause of mortality in women, mainly due to distant organ metastasis. Several ...

この洗練された非侵襲的なツールを使用すると、乳がんの治療と疾患管理に大きな可能性を秘めたマウスの腫瘍増殖動態と転移性コロニー形成をリアルタイムで監視できます。ルシフェラーゼと蛍光検出を組み合わせることは、乳がんの進行と疾患管理の前臨床試験を進めるのに役立つ戦略です。これは抗がん剤研究に適用することができます。このプロトコルは乳がんに限定されず、肺や膵臓などの他のがん腫にも適用できます。MCF-7、MDA-MB-468、およびMDA-MB-231 GFPおよびルシフェラーゼ陽性細胞を16センチメートルプレート中で別々に80%コンフルエントになるまで増殖させることから始めます。トリプシン処理により細胞を回収した後、各ウェルで増加した数の細胞を黒い96ウェルプレートに播種する。その後、すべてのウェルを100マイクロリットルのDMEMで満たし、摂氏37度、5%CO2インキュベーターで16〜24時間インキュベートします。PBS中のルシフェリン溶液を1ミリリットル当たり1.5ミリグラムの濃度で調製し、その溶液を摂氏マイナス20度で保存する。インキュベーション後、細胞をPBSで1回穏やかに洗浄してから、100マイクロリットルのルシフェリン溶液を各ウェルに加える。2分間待ってから、生物発光を用いて全ての乳癌細胞におけるルシフェラーゼ活性を測定した。マウスを注射する前に、500万個のMCF-7およびMDA-MB-468細胞を200マイクロリットルのPBSに、200万個のMDA-MB-231 GFPおよびルシフェラーゼ陽性細胞を100マイクロリットルのPBSに移した。麻酔をかけられたマウスを注射用に準備するには、円錐形を仰臥位で頭の上に置きます。次に、乳腺の上のマウスの腹部を綿棒を用いてエタノールで拭き取り、第4の乳腺を鉗子で持ち上げてから、脂肪パッドの下に27ゲージの針を挿入し、調製した細胞懸濁液100マイクロリットルをゆっくりと注入する。注射後、マウスをフードから取り出し、意識に戻るまで観察中の新しいケージに移します。生物発光検出の前に、左手で首を持ち、手を左に傾けて意識のあるマウスを拘束し、下半身を仰臥位に置いたマウスの顔を上向きにします。1ミリリットルのシリンジを用いて、100マイクロリットルの30ミリグラム/ミリリットルのルシフェリンをマウスの左下腹部象限に腹腔内に注入する。麻酔なしでマウスを7分間保持し、続いて腫瘍動態を測定する前に麻酔チャンバー内で3分間保持する。マウスがインキュベーションされている間に、ソフトウェアを開き、[初期化]ボタンをクリックしてイメージングシステムを初期化します。セットアップを自動露出に保ち、自動で露光時間を60秒にし、f / stop oneの開口部で媒体をビニングし、励起フィルタをブロックし、発光フィルタを開きます。初期化が終了したら

monitoring-breast-cancer-growth-metastatic-colony-formation-mice

Research

JoVE Journal

Cancer Research

がん研究

骨転移の実験的マウスモデルは、ルシフェラーゼを発現する乳腺腫瘍細胞の心臓内の送達後に設立されました。開発腫瘍と溶骨性病変の結果は、生物発光とマイクロCT画像を縦方向にモニターした。...

生物発光とマイクロCTイメージングで腫瘍転移と溶骨性病変の監視

低酸素誘導因子-1αの活性の生物発光イメージングは​​、乳がんの脳転移のマウスモデルにおける頭蓋内腫瘍の低酸素症の開発を監視するために適用されます。...

マウスモデルにおける乳がんの脳転移の腫瘍の低酸素動態の in vivo生物発光イメージングに

源：マリーナ・アランテス・ラディッキ1、ビクター・カルロス・メロ1、ヴィクトリア・パス・マチャド1、マルシア・クリスティーナ・オリベイラ・ダ・ロシャ1、ジャクリーン・ヴァス・デ・オリベイラ1、ルアナ・クリスティーナ・カマルゴ1,2、ルイス・アレクサンドル・ミュールマン1、リカルド・ベンテス・アゼベド1、ソニア・ナイル・バオ1、ジョアン・パウロ・フィゲイロ・ロンゴ11ブラジリア大学生物科学研究所 2ブラジリア大学心理学研究所基礎心理プロセス学科このビデオでは、ルシフェラーゼ発現乳房腺癌細胞を雌マウスに注射し、生物発光シグナルをモニタリングして原発性および転移性腫瘍の増殖を経時的に評価することにより、in...

雌マウスモデルにおける乳房腫瘍進行の生物発光イメージング

生物発光イメージングは​​、腫瘍および転移をローカライズするためのよく知られたツールですが、これらの画像の定量化は、多くの場合、複雑な計算や特定の楽器を必要とします。我々には、計算を必要としない、正確な取得条件に基づいて、使いやすいluminoscore方法を説明し、マウスモデルで監視される腫瘍負荷および治療応答を可能にします。...

マウスリンパ腫モデルで腫瘍の進行と治療効果を監視するための生物発光に基づく腫瘍の定量法

同所性乳癌原発腫瘍モデルおよび原発腫瘍の外科的除去が記載されている自然転移を生成するために、マウスの寿命を延長します。腫瘍の増殖および進行をモニターし、ルシフェラーゼ蛍光イメージングにより定量化されます。...

自発的乳がん転移の同所性マウスモデル

マウス実験乳房癌モデルと人間の胸の癌の進行を模倣する腫瘍負荷を定量化する発光技術と根治的乳房切除モデルを紹介しています。...

マウス実験転移性乳癌癌モデルを生成、およびマウス乳癌根治術を実行

このプロトコルは、二重生物発光イメージングによって腫瘍の進行および血管新生をリアルタイムで監視する腫瘍担持マウスモデルの確立について説明する。...

腫瘍進行と血管新生の二重生物発光イメージング

本研究は、緑色蛍光タンパク質および生物発光シグナルの検出と定量的分子検出技術の統合によって腫瘍負荷を正確に評価するための高度なプロトコルをプリセットする。...

交感性乳癌モデルを用いたトリプルネガティブ乳癌の研究

記述されたアプローチは、実験的な尾静脈転移アッセイと生体内生動物イメージングを組み合わせることで、肺の転移数と大きさの定量に加えて、乳癌転移の形成と増殖をリアルタイムでモニタリングすることを可能にする。...

尾静脈転移アッセイとリアルタイムインビボイメージングの併用による乳癌転移性コロニー形成と肺の負担の定量化

この原稿は、同所注射された乳房腫瘍からの自然肺転移の確立および縦断的成長モニタリングの方法論を説明しており、転移カスケードのすべての段階での介入に適しています。...

インビボ 同所注射された乳房腫瘍細胞の自然肺転移を測定するためのイメージング

ここでは、動物モデルにおける転移性乳がんへのRNAオリゴマーを運ぶ磁性酸化鉄ナノ粒子の in vivo...

マウス乳がん転移におけるナノ薬物蓄積のモニタリング

学ぶマウスにおける乳がんの非侵襲的モニタリング法。ルシフェラーゼと蛍光タンパク質を用いて腫瘍増殖と転移をリアルタイムで追跡し、抗がん薬の前臨床研究に応用可能です。

生物発光を用いたマウスにおける乳がん増殖および転移性コロニー形成のモニタリング

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