Name: 脂肪細胞関連疾患を研究するためのヒトiPS細胞を純粋な脂肪細胞集団に確実に分化させる(英語) (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-09T14:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 31 s
Description: 学ぶ、レチノール酸を用いてiPS細胞から間葉系幹細胞を誘導し、ナイルレッド染色による細胞分選で純粋な脂肪細胞集団を効率的に作製する方法。脂肪細胞関連疾患の研究に応用可能です。

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この作業は、カタール国立研究基金(QNRF)からの助成金によって資金提供されました(助成金番号NPRP10-1221-160041)。マリアム・アガディは、カタール国立研究基金(QNRF)からのGSRA奨学金の支援を受けました。

この研究は、適切な機関研究倫理委員会によって承認され、1964年のヘルシンキ宣言およびその後の改正または同等の倫理基準に定められた倫理基準に従って実施されています。このプロトコルは、HMC(番号16260/16)およびQBRI(番号2016-003)の治験審査委員会(IRB)によって承認されました。この作業は、H1やH9などのhESCにも最適化されています。血液サンプルは、完全なインフォームドコンセントで健康な個人から取得されました。iPS細胞は、健常人の末梢血単核球(PBMC)から作製されます。
1. iPS細胞の培養と維持
<ol><li>ノックアウトDMEMでコーティングマトリックスを1:80の割合で再構成して基底膜マトリックスコーティングプレートを調製し、4°Cで保存します。</li>
	<li>500 mLの幹細胞基礎培地に50 mLの10x幹細胞サプリメント培地と5 mLの100xペニシリン-ストレプトマイシン(P / S)を加えてiPS細胞培養培地を調製し、短期の場合は4°C、長期使用の場合は-20°Cで保存します。</li>
	<li>プレートをコーティングマトリックス(6ウェルプレートの場合は1 mL、12ウェルプレートの場合は500 μL、24ウェルプレートの場合は250 μL)で裏打ちし、プレートを37°Cで1〜2時間インキュベートします。</li>
	<li>iPS細胞培養培地のアリコートを取り出し、室温で予熱してから使用してください。</li>
	<li>iPSC(ESCまたはiPSC)のバイアルを37°Cの水浴で解凍し、2〜3 mLの培養培地を含む15 mLのコニカルチューブに移します。</li>
	<li>チューブを120 x g で室温(RT-23°C)で4分間遠心分離します。</li>
	<li>上清を除去し、10 μM ROCK阻害剤(Y-27632)を添加した新鮮な培地2 mLを加えます。細胞をマトリックスコーティングされた6ウェルプレートの1ウェルにプレートし、プレートを37°Cで配置します。</li>
	<li>24時間後、培地を取り出し、新鮮な培地と交換します。</li>
	<li>細胞が80%〜90%のコンフルエントに達するまで、毎日培地を交換してください。</li>
	<li>コンフルエントに達したら、以下に概説する手順に従って細胞を継代する。<ol><li>培地を取り出し、ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)で細胞を洗浄します。</li>
		<li>iPS細胞解離試薬( 材料表参照)-6ウェルプレートのウェルに500 μL、24ウェルプレートのウェルに250 μLを加え、37°Cで1分間インキュベートします。</li>
		<li>解離試薬を除去し、細胞を37°Cで1分間インキュベートします。</li>
		<li>培養培地(6ウェルプレートのウェルには1 mL、24ウェルプレートのウェルには250 μL)を使用して細胞を回収し、15 mLコニカルチューブに入れ、120 x g で4分間遠心分離します。</li>
		<li>細胞を培養培地(6ウェルプレートのウェルには2 mL)、10 μM ROCK阻害剤を添加した24ウェルプレートのウェルには500 μLを再懸濁し、40%コンフルエントで新しいマトリックスコーティングプレートにプレートします。</li>
	</ol></li>
</ol>2. iPS細胞から間葉系幹細胞への分化
<ol><li>低グルコースDMEM+ピルビン酸に15%ウシ胎児血清(FBS)および1%P/Sを添加してMSC分化培地を調製し、4°Cで保存します。</li>
	<li>コンフルエント性が80%に達したら、以下に概説する手順に従って、iPS細胞を使用して胚様体(EB)形成を行います。<ol><li>細胞をDPBSで洗浄し、解離培地/EDTA-500 μL(6ウェルプレートのウェル)と250 μL(24ウェルプレートのウェル)でインキュベートします。</li>
		<li>37°Cで1分間インキュベートし、解離試薬を吸引し、細胞を37°Cでさらに1分間保持します。MSC分化を開始するには、~10-12 x 106 細胞が必要です。</li>
		<li>培地を使用して15 mLのコニカルチューブに細胞を回収します。細胞が単一になるのを防ぎ、EB形成を可能にするために、収集中は非常に穏やかであることを確認してください。細胞を120 x g で4分間遠心分離します。</li>
		<li>10 μM ROCK阻害剤を含む3 mLのMSC分化培地に細胞を再懸濁します。</li>
		<li>0.5 mL/ウェルを24ウェル超低アタッチメントプレートで混合して分配します。 注:超低アタッチメントプレートを使用すると、表面への付着ではなく、EBへの細胞凝集が促進されます。</li>
		<li>プレートを37°Cのインキュベーターに入れます。</li>
	</ol></li>
	<li>24時間後、以下に概説する手順に従って、高レチノイン酸(RA)治療で達成されたEBを誘導します。<ol><li>10 μM RA を 3 mL の MSC 分化培地に添加します。EBを15 mLチューブに集め、15分間落ち着かせます。</li>
		<li>EBから上清を除去し、10 μM RAを添加したMSC分化培地を追加します。</li>
		<li>穏やかに再懸濁し、同じ24ウェル超低アタッチメントプレートに0.5 mL/ウェルを分配します。</li>
		<li>プレートを37°Cのインキュベーターに入れます。 次の48時間はEBを邪魔しないでください。</li>
		<li>48時間後、EBを15 mLチューブに集め、15分間落ち着かせます。</li>
		<li>EBから上清を除去し、0.1 μM RAを添加したMSC分化培地を追加します。</li>
		<li>穏やかに再懸濁し、同じ24ウェル超低アタッチメントプレートに0.5 mL/ウェルを分配します。</li>
		<li>プレートを37°Cのインキュベーターに入れます。 次の48時間はEBを邪魔しないでください。</li>
	</ol></li>
	<li>以下に概説する手順に従って、セルに追加されたRAを削除します。<ol><li>最後のRA治療の48時間後、EBを収集し、15分間落ち着かせます。</li>
		<li>上清を除去し、サイトカインを含まないDMEM低グルコース培地を添加する。</li>
		<li>穏やかに再懸濁し、0.5 mL/ウェルを24ウェル超低アタッチメントプレートに分配します。プレートを37°Cのインキュベーターに入れます。</li>
	</ol></li>
	<li>iPS細胞由来EBを以下に概説する手順に従ってプレートします。<ol><li>前のステップ(ステップ2.4)から48時間後、EBを15 mLチューブに集め、15分間落ち着かせます。</li>
		<li>上清を除去し、2 mLの新鮮なMSC分化培地に再懸濁します。</li>
		<li>基底膜マトリックスコート6ウェルプレートの2つのウェルに移す。</li>
		<li>さらに5日間、一日おきにメディアを交換してください。</li>
		<li>5日後、使用済み培地を取り除き、2.5 ng/mLの塩基性線維芽細胞増殖因子(bFGF)を含む新鮮なMSC分化培地と交換します。</li>
	</ol></li>
	<li>以下に概説する手順に従って、メッキされたEBが80%〜90%のコンフルエントに達したら通過させます。<ol><li>細胞をDPBSで洗浄し、トリプシン-EDTA-500 μLを6ウェルプレートのウェルに添加し、細胞を37°Cで3分間インキュベートします。</li>
		<li>15 mL コニカルチューブ内の MSC 分化培地を使用して細胞を回収し、750 x g で 4 分間回転させます。</li>
		<li>2.5 ng/mLのbFGFを含むMSC分化培地に再懸濁し、基底膜マトリックスコーティングプレート上に細胞を1:3の比率でプレートします。</li>
		<li>細胞が70%〜80%のコンフルエントに達したら継代を繰り返します。2〜3回の継代で3〜600万個の細胞を獲得すると予想されています。</li>
	</ol></li>
</ol>3. iPS細胞由来間葉系幹細胞のフローサイトメトリー解析
注:2〜3回の継代を受けたら、MSC分化の効率のために細胞にアクセスする必要があります。細胞がMSC分化マーカー-CD44、CD73、CD90、およびCD105を90%を超える効率で発現し、高レベルの造血マーカー-CD14、CD19、CD34、およびCD45を発現しない場合、分化は成功したと見なされます。これらのマーカーの効率には、以下の手順に従ってアクセスできます。
<ol><li>上記で概説したステップ(ステップ2.6)を使用して細胞を継代し、V底96ウェルプレートの1ウェルで1 x 105 細胞を達成します。</li>
	<li>プレートを375 x g で4°Cで4分間遠心分離します。</li>
	<li>1 x 105 細胞を1 μLの結合抗体(Ab)を含む100 μLの冷DPBSに再懸濁し( 材料の表を参照)、光への暴露を防ぐために4°Cで30〜40分間インキュベートします。</li>
	<li>別の1 x 105 細胞を100 μLの冷DPBSに再懸濁し、抱合型Abのそれぞれのアイソタイプコントロールを1:100の濃度で再懸濁し、4°Cで30〜40分間インキュベートして、光への曝露を防ぎます。</li>
	<li>インキュベーション後、プレートを375 x g で4°Cで4分間遠心分離します。 シンクの上でプレートを振って上清を捨てます。</li>
	<li>細胞を100 μLの冷たいDPBSに再懸濁します。</li>
	<li>細胞を375 x g で4°Cで4分間遠心分離します。 上清を捨てる。</li>
	<li>細胞を200 μLの冷DPBSに再懸濁し、暗くて冷たい1.5 mLマイクロ遠心チューブに集め、蛍光活性化セルソーティング(FACS)で分析されるまで氷上に保ちます。</li>
	<li>FACS解析では、側方散乱(SSC-A)と前方散乱(FSC-A)を使用して細胞を分散させ、破片を排除します。さらに、前方散乱高さ(FSC-H)と前方散乱領域(FSC-A)を使用してゲート細胞を分配し、生細胞集団からダブレットから一重項を区別します。 注:細胞は、すべてのマーカーのアイソタイプコントロールのシフトに対してゲートされ、すべての染色サンプルから少なくとも10,000のゲートイベントが分析に使用されました。</li>
</ol>4. 間葉系幹細胞の脂肪細胞への分化
<ol><li>最小必須培地(MEM)-αに10%ノックアウト血清置換(KOSR)、1%グルタミン、1%P/S、4.5 ng/μLのグルコースを添加して脂肪細胞分化基礎培地を調製し、4°Cで保存します。</li>
	<li>MSCが90%以上のコンフルエンシーに達するのを待ちます。成長停止期間を経るために、さらに48時間培養を続けます。</li>
	<li>100 μg/mLの3-イソブチル-1-メチルキサンチン(IBMX)、1 μMのデキサメタゾン、0.2 U/mLのインスリン、100 μMのインドメタシン、および10 μMのロシグリタゾンを基礎培地に添加することにより、完全な脂肪細胞分化培地を調製します。</li>
	<li>MSC分化培地を除去し、DPBSを用いて細胞を洗浄します。</li>
	<li>6ウェルプレートのウェルには完全脂肪細胞分化培地(2 mL)、12ウェルプレートのウェルには1 mLを加え、細胞を37°Cでインキュベートします。 14日間、一日おきに完全な分化培地を交換してください。</li>
</ol>5. 脂肪細胞の分化効率の評価
<ol><li>分化14日目に、脂肪細胞成熟マーカー、FABP4、およびアディポネクチンについて細胞を染色することにより、分化効率を確認します。</li>
	<li>培地を取り出し、細胞をDPBSで洗浄します。</li>
	<li>4%パラホルムアルデヒド(PFA)(200 μL)を使用して細胞を24ウェルプレートのウェルに固定し、室温で15分間インキュベートします。</li>
	<li>PFAを廃棄し、0.5%トゥイーン(TBST)を含むトリス緩衝生理食塩水を使用して洗浄し、室温で15分間シェーカーに置きます。このプロセスを2回繰り返します。</li>
	<li>固定した細胞を0.5%Triton X-100(PBST)を含むリン酸緩衝生理食塩水で透過処理し、室温で15〜20分間シェーカー上に置きます。</li>
	<li>PBSTを廃棄し、ブロッキングバッファー(PBST中の5%-6%ウシ血清アルブミン(BSA))-6ウェルプレートのウェルには500 μL、12ウェルプレートのウェルには250 μLを加え、シェーカー上で室温で40〜60分間インキュベートします。</li>
	<li>FABP4に対する一次抗体、アディポネクチンを2%〜3%BSAで1:500の濃度で希釈します( 材料表を参照)。異なる動物で飼育した場合にのみこれらの抗体を一緒に追加し、プレートを4°Cのシェーカーに一晩置きます。</li>
	<li>一次抗体を除去し、細胞をTBSTで3回洗浄し(各15分)、室温でシェーカー上に置きます。</li>
	<li>アレクサ蛍光二次抗体をPBSTで調製します(1:500)。二次抗体の組み合わせ(一次抗体が産生される種に応じて)で細胞を室温で60分間インキュベートし、プレートをアルミホイルで覆って光から保護します。</li>
	<li>二次抗体を廃棄し、TBSTで3回洗浄し、プレートをシェーカーに置きます。</li>
	<li>核を染色するには、PBSで希釈した24ウェルプレートのウェルに1 μg/mLのHoechst 33342-200 μLを加え、室温で5分間インキュベートします。</li>
	<li>ヘキスト溶液を廃棄し、24ウェルプレートのウェルにPBS-500 μLを細胞に加えます。倒立蛍光顕微鏡で可視化するまで、プレートを光から覆ってください。</li>
</ol>6. ナイルレッドを用いた脂肪細胞の選別
<ol><li>DMSOに1 mg/mLのナイルレッドストック溶液を加えてナイルレッド作業溶液を調製し、-20°Cで保存します。 使用直前に、ナイルレッドストックを解凍し、DPBSで再構成して、300 nMの作業溶液濃度を達成します。</li>
	<li>脂肪細胞分化の14日目以降に、細胞から培地を廃棄し、DPBSを用いて洗浄する。</li>
	<li>ナイルレッドの作業溶液-1 mLを6ウェルプレートのウェルに加え、37°Cで15分間インキュベートします。</li>
	<li>ナイルレッド溶液を除去し、トリプシン-EDTA -500 μLを6ウェルプレートのウェルに加え、37°Cで4分間インキュベートします。</li>
	<li>15 mL コニカルチューブ内の 5% FBS を含む DMEM を使用して細胞を回収します。750 x g で4分間遠心分離します。</li>
	<li>上清を除去し、DPBS-1 mL に 1 x 106 細胞分間再懸濁します。750 x g で4分間遠心分離します。</li>
	<li>上清を除去し、DPBS-1 mL に 1 x 106 細胞分間再懸濁します。FACSソーターを使用して、FL1チャネルを使用してナイル赤陽性細胞を単離します。</li>
	<li>選別した細胞を脂肪細胞分化培地で再培養するか、選別した細胞を集めてRNAやタンパク質を単離します。</li>
	<li>選別した細胞からRNAを抽出し、FABP4、PPARG、C/EBPAなどの脂肪細胞分化マーカーの相対定量解析を行います。ナイル赤陽性細胞は、選別されていない細胞と比較して、少なくとも2倍の遺伝子発現の有意なアップレギュレーションを示す。</li>
</ol>

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</ol>

著者は、競合する利益がないことを宣言します。

このプロトコルは、MSCを高い収率と効率で提供できるため、最も重要です。このMSCの大量生産は、iPS細胞由来EBと10 μMのRA14,15との一過性インキュベーションによって可能になりました。10 μMのRAによる一過性治療は、MSC収量を11.2〜1542倍に増加させ14,15、このプロトコルはiPS細胞とhPSCの両方に適用できます。この用量および治療期間において、RAは、iPS細胞の生存および増殖に重要な細胞増殖、アポトーシス、ならびに細胞間およびECM細胞接着に関与するいくつかの遺伝子の発現を直接的または間接的に調節することにより、EB形成細胞の増殖および生存能力を改善する14,16.遺伝子には、転写因子(EGFR4、SOX4など)、成長因子および成長因子受容体(IGF2、FG...

間葉系幹細胞(MSC)は、脂肪細胞、骨細胞、軟骨細胞などの中胚葉起源の細胞を産生するための効果的な一時的なリソースとして機能し、それぞれの遺伝性疾患のモデリングにさらに使用できます。しかし、以前のアプローチでは、これらのMSCを成体組織から得ることに依存しており1、ドナーから大量に入手するという課題と、最適ではないin vitro培養条件で機能的に生存し続けるという限界がありました1,2。これらの障害は、in vitroでMSCを生成するためのプロトコルを有するという大きな要求を生み出している。ヒト人工多能性幹細胞(iPSC)は、MSCの特徴を示すMSCの貴重な供給源として使用することができます3,4,5。iPS細胞由来の間葉系幹細胞は、いくつかの疾患の治療選択肢として使用できます。また、iPS細胞由来のMSCは脂肪細胞を生成する能力があるため、ヒトの脂肪生成、肥満、および脂肪細胞関連疾患を研究するための貴重なin vitroヒトモデルになります。
脂肪細胞の現在の分化プロトコルは2つのグループに分類でき、1つは化学的またはタンパク質ベースのカクテルを使用した脂肪細胞の分化を含み、結果として得られる収量は30%-60%6,7,8,9であり、もう1つは脂肪細胞の発生を支配する主要な転写因子の堅牢な誘導のための遺伝子操作を含み、80%-90%の収量をもたらします10。11.しかし、遺伝子操作は脂肪細胞分化の自然な過程を再現せず、脂肪生成中に到着する微妙なパラダイムを隠すことが多く、疾患モデリングの目的には効果がありません12,13。そこで、ナイルレッドを用いて脂質を含む脂肪細胞に蛍光タグを付けることで、化学的に由来した成熟脂肪細胞と未成熟脂肪細胞を選別する方法を提示します。
ここでは、iPS細胞由来の胚様体(EB)をオールトランス レチノイン酸と一過性インキュベートして、脂肪細胞の生成にさらに使用できる多数の急速に増殖するMSCを生成するプロトコルを紹介します14。また、親油性色素を使用して脂肪滴に蛍光タグを付けることにより、化学的に誘導された成熟脂肪細胞を不均一な分化プールから選別する方法も紹介します。ナイルレッド。これにより、脂肪細胞関連代謝障害を正確にモデル化するための機能が強化された成熟脂肪細胞の純粋な集団の生成が可能になります。

<table><tbody><tr><td>アディポネクチン</td><td>Abcam</td><td>ab22554</td>脂肪<td>細胞成熟マーカー</td></tr>抗<tr><td>CD105</td><td>BDファーミンゲン</td><td>560839</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD14</td><td>BDファーミンゲン</td><td>561712</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD19</td><td>BDファーミンゲン</td><td>555415</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD34</td><td>BDファーミンゲン</td><td>555824</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD44</td><td>abcam</td><td>ab93758</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD45</td><td>BD Pharmingen</td><td> 560975</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD73</td><td>BD Pharmingen</td><td>550256</td><td>MSC分化マーカー</td></tr><tr><td>抗CD90</td><td>BD Pharmingen</td><td>555596</td><td>MSC分化</td></tr><tr><td>マーカーbFGF</td><td>R&D</td><td>233-FP</td><td>MSC 培地サプリメント</td></tr><tr><td>C/EBPA</td><td>Abcam</td><td>ab40761</td><td>脂肪細胞成熟マーカー</td></tr><tr><td>デキサメタゾン</td><td>Torics</td><td>1126</td><td>脂肪細胞分化培地サプリメント</td></tr><tr><td>FABP4</td><td>Abcam</td><td>ab93945</td><td>脂肪細胞成熟マーカー</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清</td><td>ThermoFisher</td><td>10082147</td><td>MSC 培地サプリメント</td></tr><tr><td>Glutamax</td><td>ThermoFisher</td><td>35050-061</td><td>MSC培養培地サプリメント</td></tr><tr><td>IBMX</td><td>Sigma Aldrich</td><td>I5879</td><td>脂肪細胞分化培地サプリメント</td></tr><tr><td>インドメタシン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>I7378</td><td>脂肪細胞分化培地サプリメント</td></tr><tr><td>インスリン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>91077C</td><td>脂肪細胞分化培地サプリメント</td></tr><tr><td>ノックアウトDMEM</td><td>ThermoFisher</td><td>12660012</td><td>マトリゲルを調製するための基礎培地</td></tr><tr><td>低グルコース DMEM</td><td>ThermoFisher</td><td>11885084</td><td>MSC 培養培地</td></tr><tr><td>マトリゲル</td><td>Corning</td><td>354230</td><td>コーティングマトリックス</td></tr><tr><td>MEM-α</td><td>ThermoFisher</td><td>12561056</td><td>脂肪細胞分化培地</td></tr><tr><td>Nilered</td><td>Sigma Aldrich</td><td>19123</td><td>脂肪細胞のソーティングマーカー</td></tr><tr><td>ペニシリン</td><td>サーモフィッシャー</td><td>15140122</td><td>MSC/脂肪細胞培地サプリメント</td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水</td><td>サーモフィッシャー</td><td>14190144</td><td>洗浄バッファー</td></tr><tr><td>Pierce&trade; 20X TBS バッファー</td><td>サーモフィッシャー</td><td>28358</td><td>洗浄バッファー</td></tr><tr><td>PPARG</td><td>細胞シグナル伝達技術</td><td>2443</td><td>脂肪細胞成熟マーカー</td></tr><tr><td>ReLeSR</td><td>幹細胞技術</td><td>5872</td><td>解離試薬</td></tr><tr><td>レチノイン酸</td><td>Sigma Aldrich</td><td>R2625</td><td>MSC 分化培地サプリメント</td></tr><tr><td>岩石阻害剤</td><td>Tocris</td><td>1254/10</td><td>hPSC 培地サプリメント</td></tr><tr><td>ロジグリタゾン</td><td>Sigma Aldrich</td><td>R2408</td><td>脂肪細胞分化培地サプリメント</td></tr><tr><td>StemFlex</td><td>ThermoFisher</td><td>A334901</td><td>hPSC培地</td></tr><tr><td>トリトン</td><td>サーモフィッシャー</td><td>28314</td><td>透過性</td></tr>試薬 <tr><td>トリプシン</td><td>サーモフィッシャー</td><td>25200072</td><td>解離試薬</td></tr><tr><td>Tween 20</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P7942</td><td>洗浄バッファー</td></tr></tbody></table>

脂肪細胞関連疾患を研究するためのヒトips細胞を純粋な脂肪細胞集団に確実に分化させる(英語)

Robust Differentiation of Human iPSCs into a Pure Population of Adipocytes to Study Adipocyte-Associated Disorders

人工多能性幹細胞(iPSC)技術の最近の進歩により、脂肪細胞を含むさまざまな種類の細胞の生成が可能になりました。しかしながら、現在の分化方法は効率が低く、脂肪細胞の均質な集団を産生しない。ここでは、オールトランスレチノインベースの方法を使用して間葉系幹細胞(MSC)を高収率で製造することにより、この問題を回避します。細胞の増殖、生存、接着を支配する経路を調節することにより、私たちの分化戦略は、多能性MSCの純粋な集団に分化する胚体(EB)の効率的な生成を可能にします。この方法によって生成される多数のMSCは、脂肪細胞を生成するための理想的な供給源を提供します。しかしながら、脂肪細胞の分化に起因するサンプルの不均一性は依然として課題である。そこで、FACSを用いた脂質含有成熟脂肪細胞の精製にはナイルレッドベースの法を用いた。このソーティング戦略により、サンプルの不均一性を低減し、細胞機能を強化した脂肪細胞のプールを使用して、脂肪細胞関連の代謝障害をモデル化する信頼性の高い方法を確立することができました。

間葉系分化における細胞の概略と形態:iPS細胞から間葉系幹細胞への分化には、EB形成、MSC分化、MSC増殖にまたがるさまざまな発生段階があります(図1)。発生のこれらの段階で、細胞は、それらが受ける異なる刺激化学物質のために様々な形態を獲得する。分化を開始すると、細胞は懸濁液に播種され、直径が小から中のサイズでありながら、明確な細胞境界を持つ円形であることが期待されます(図2)。分化の初期段階で浮遊状態で細胞を培養することを選択することで、自然な胚発生のプロセスによく似たものになり、この段階は分化を成功させるために非常に重要です。EB形成とRA処理の段階に続いて、基底膜マトリックスコーティングプレートにEBをメッキします。めっき時のEBの生存率は、より多くのMSCを生じる急速な増殖挙動を観察することでアクセスできます(図2)。間葉系幹細胞が示すこの急速な増殖挙動は、特異で細長い形態を保持しながら、新しいマトリックスコーティングされたプレートに通過させた後でも...

このプロトコルにより、人工多能性幹細胞(iPSC)から純粋な脂肪細胞集団を作製することができます。レチノイン酸は、iPS細胞を脂肪細胞の産生に使用される間葉系幹細胞(MSC)に分化させるために使用されます。次に、ナイルレッド染色に基づくソーティングアプローチを使用して、純粋な脂肪細胞を取得します。

脂肪細胞関連疾患を研究するためのヒトiPS細胞を純粋な脂肪細胞集団に確実に分化させる(英語)

Recent advances in induced pluripotent stem cell (iPSC) technology have allowed the generation of different cell types, including adipocytes. However, the ...

これまでのアプローチは、試験管内で間葉系幹細胞を得るための侵襲性の高い方法に依存していましたが、それらの間葉系幹細胞は、30〜60%の範囲の効率で30%の不均一プールを生成するという限界がありましたここでは、ナイルレッドを用いたソーティングによって成熟脂肪細胞の純粋な集団を産生できる、急速に増殖する間葉系幹細胞を大量に生産するためのプロトコルを提示します。iPS細胞が80%コンフルエントに達したら、細胞をDPBSで洗浄し、EDTAを含む解離培地を加えます。細胞を摂氏37度で1分間インキュベートします。1分後、解離試薬を吸引し、細胞を摂氏37度でさらに1分間置きます。次に、インキュベーターからプレートを取り外します。ウェルあたり1ミリリットルのStemFlex培地を追加し、15ミリリットルの円錐管に細胞を注意深く集めます。細胞を遠心分離します。上清を取り除き、10マイクロモルの岩石阻害剤を含む3ミリリットルのMSC分化培地に穏やかに再懸濁します。細胞懸濁液を混合し、ウェルあたり500マイクロリットルを24ウェル超低アタッチメントプレートに分配します。次にプレートを摂氏37度のインキュベーターに入れます。24時間後、達成された胚体を誘導するために、それらを15ミリリットルのチューブに集めて落ち着かせます。15分後、上清を除去し、10マイクロモルのレチノイン酸を添加したMSC分化培地を加える。胚体を穏やかに再懸濁し、ウェルあたり500マイクロリットルを同じ24ウェル超低アタッチメントプレートに分配します。次にプレートをインキュベーターに入れます。48時間後、胚体を15ミリリットルのチューブに集め、15分間落ち着かせます。その後、上清を除去し、0.1マイクロモルのレチノイン酸を添加したMSC分化培地を加える。胚体を再懸濁した後、ウェルあたり500マイクロリットルを同じ24ウェルプレートに分配し、プレートをインキュベーターに入れます。最後のレチノイン酸処理から48時間後、胚体を採取し、上清を除去し、サイトカインを含まないDMEM低グルコース培地を追加します。同じ24ウェル超低接着プレートにウェルあたり500マイクロリットルの細胞懸濁液を穏やかに再懸濁して分配し、プレートを摂氏37度でインキュベートします。48時間後、iPS細胞由来胚体をプレートし、15ミリリットルのチューブに胚体を採取し、沈降させた後、上清を除去し、2ミリリットルの新鮮なMSC分化培地に再懸濁する。次に、懸濁液を基底膜マトリックスコーティングされた6ウェルプレートの2つのウェルに移し、細胞を摂氏37度でインキュベートします。5日後、使用済み培地を、1ミリリットルあたり2.5ナノグラムの塩基性線維芽細胞増殖因子を含む新しいMSC分化培地と交換し、最大11日間および15日間MCS分化を継続します。播種した胚体が80〜90%コンフルエントに達したら、DPBSで洗浄し、トリプシン-EDTAを添加し、摂氏37度で1分間インキュベートして継代します。プレートからトリプシン-EDTAを取り出し、摂氏37度で1分間再びインキュベートします。次に、ウェルあたり1ミリリットルの培地を追加します。3分後、15ミリリットルのコニカルチューブ内のMSC分化培地を使用して細胞を回収し、細胞を遠心分離します。次いで、塩基性線維芽細胞増殖因子を含むMSC分化培地に細胞を再懸濁し、細胞を基底膜マトリックスコートプレート上に1対3の割合でプレートする。MSCが90%コンフルエンスに達した後、成長停止期間を経ることができるように、さらに48時間培養を続けます。次に培地を取り出し、DBPSで細胞を洗浄します。洗浄後、完全脂肪細胞分化培地をプレートに加え、細胞を摂氏37度でインキュベートします。14日間一日おきに培地を交換してください。iPS細胞由来MSCを脂肪細胞に分化させる。ナイルレッドを使用して脂肪細胞を選別するには、テキスト原稿に記載されているように、DMSOでナイルレッド作業溶液を調製します。使用前に、原液を解凍し、DPBSで再構成して、300ナノモルの作業溶液濃度を達成してください。脂肪細胞分化の14日目以降に、細胞から培地を廃棄し、DPBSを用いて洗浄する。それからナイルレッド作業溶液を加えなさい。プレートを覆い、細胞を摂氏37度でインキュベートします。15分後、ナイルレッド溶液をトリプシン-EDTAと交換し、細胞を摂氏37度で4分間インキュベートします。次に、15ミリリットルのコニカルチューブに5%FBSを含むDMEMを使用して細胞を収集し、細胞を遠心分離します。上清を除去し、細胞を1ミリリットルあたり100万細胞の密度でDPBSに再懸濁します。次いで、FACSソーターを用いて、FL-1チャネルを用いてナイル赤陽性細胞を単離する。選別した細胞を採取し、脂肪細胞分化培地で再培養するか、RNA抽出に進み、脂肪細胞分化マーカーの定量解析を行います。分化を開始すると、懸濁液に播種された細胞は、定義された細胞境界を有する円形であり、直径が小から中のサイズである。胚体の生存能力は、より多くの間葉系を生じさせる急速な増殖挙動によって観察される。この急速な増殖挙動は、その独特で細長い形態とともに、MSCを新しいマトリックスコーティングされたプレートに通過させた後でも保持されます。良好な分化により、間葉系表面マーカーCD73、CD44、およびCD90の発現効率が90%を超える信頼性の高いMSCが得られます。また、造血表現型CD14、CD34、CD19を描いた表面マーカーが存在しない細胞の評価では、発現効率は1%未満であり、最終分化型脂肪細胞のマーカーであるFABP4の細胞質分布における高発現は、その発生成熟を示しています。さらに、脂肪細胞成熟の別のマーカーであるアディポネクチンの高発現は、脂肪細胞がグルコースシグナル伝達に応答して脂質貯蔵および脂肪生成を受けるのに十分機能的であることを示している。染色後、ナイルレッドは脂質を含む成熟脂肪細胞にのみ結合するため、蛍光活性化フローサイトメトリーを使用して成熟脂肪細胞を選別するための効果的なツールとなります。ナイル赤陽性細胞は、選別されていない細胞と比較して、成熟マーカーの有意なアップレギュレーションを少なくとも2倍示しています。胚体形成や間葉系細胞の解離時に細胞を採取する際には、間葉系幹細胞の解離後の生存効率に大きな影響を与えるため、非常に穏やかでなければなりません。変異を有する患者から得られた脂肪細胞の純粋な集団は、サンプルの不均一性によってデータが影響を受けることなく、特定の突然変異によって影響を受ける調節経路およびシグナル伝達経路を決定するために、機能的および全トランスクリプトームシーケンシングを受けることができます。この技術により、間葉系幹細胞をin vitroでスケーラブルに生成できるため、ヒトドナーから間葉系幹細胞を採取して脂肪細胞、軟骨細胞、骨細胞に容易に分化させ、組織関連疾患の病因を理解する必要がなくなります。

robust-differentiation-human-ipscs-into-pure-population-adipocytes-to

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

成熟した脂肪細胞は、脱分化を通じて幹細胞の豊富な供給源を表している可能性があり、これにより線維芽細胞様細胞の均一な集団が形成されます。コラゲナーゼ消化は、ヒトの脂肪から成熟脂肪細胞を分離するために使用されます。私たちのプロトコルの目標は、ヒトの成熟脂肪細胞から多能性で脱分化した脂肪細胞を取得することです。...

天井の培養における成熟脂肪細胞の脱分化を経てヒト脂肪幹細胞の生成

このプロトコルは、ブタ脂肪由来幹細胞（pADSC）の皮下脂肪組織からの単離を、多能性の検査とともに説明するものです。多能性pADSCは、脂肪細胞の分化過程を描写し、中胚葉間葉の複数の細胞系統、または再生研究のための外胚葉および内胚葉のさらなる系統への分化転換を研究するために使用されます。...

ブタ皮下脂肪組織から分離し、脂肪由来幹細胞の分化

このプロトコルは、蛍光活性化細胞選別または免疫磁気ビーズ分離により、マウス腹腔内白色脂肪組織(WAT)デポから脂肪形成および線維炎症性間質細胞亜集団を単離するための技術的アプローチを説明しています。...

マウス腹腔内脂肪貯蔵所からの脂肪形成性および線維炎症性間質細胞亜集団の単離

蛍光活性化細胞選別を用いて、マウス上体脂肪パッドから生存性の高い脂肪前駆細胞を単離する簡単な方法を提示する。...

マウス上端体脂肪組織からの脂肪前駆細胞の調製

この報告書は、新生児マウスからの原発性褐色および白色の前突細胞の同時分離のためのプロトコルを記述する。単離された細胞は培養中に増殖させ、完全に成熟した白および褐色のアディポサイトに分化するように誘導することができる。この方法は、培養中の一次脂肪細胞の遺伝的、分子的、機能的特徴付けが可能となる。...

新生児マウスからの白色および褐色の前読細胞の分離と分化

このプロトコルは、皮下脂肪からのマウス前駆脂肪細胞の単離、成熟脂肪細胞への分化、およびインスリン抵抗性の誘導について説明しています。インスリン作用は、ウェスタンブロットを介したインスリンシグナル伝達経路のメンバーのリン酸化/活性化によって評価されます。この方法は、初代脂肪細胞におけるインスリン抵抗性/感受性の直接決定を可能にする。...

初代培養における分化マウス脂肪細胞:インスリン抵抗性のモデル

新生仔マウスの肩甲間褐色脂肪組織の間質血管分画から前駆脂肪細胞を単離し、脂肪滴を蓄積する細胞に分化し、分子マーカーを発現し、成熟した褐色脂肪細胞のミトコンドリア形態を示します。これらの細胞は、免疫蛍光法および透過型電子顕微鏡法によってさらに分析されます。...

新生仔マウスの肩甲間脂肪組織の間質血管画分からの褐色脂肪細胞の分化とイメージング

このプロトコルは、マウス脂肪組織から間質血管画分(SVF)を半自動分離して、脂肪前駆細胞を取得し、 in...

組織解離剤を用いたマウス白色脂肪組織からの間質血管画分の半自動単離(英語)

成熟した脂肪細胞のサイズと脆弱性は、その研究と分離に利用できる技術とツールを制限しています。ここでは、成熟したマウス脂肪細胞の単離のためのプロトコルが記載されており、これは異なる脂肪貯蔵庫およびマウスの食事療法に容易に適応することができる。...

赤身および肥満マウスからの初代マウス脂肪細胞の単離と培養

ここでは、処理時間&gt;90%短縮、高い細胞生存率、広範な適合性を特徴とする、脂肪由来幹細胞および脂肪細胞を効率的に単離する標準的な方法を提示します。...

豚脂肪組織から脂肪由来幹細胞および脂肪細胞の効率的な単離

学ぶ、レチノール酸を用いてiPS細胞から間葉系幹細胞を誘導し、ナイルレッド染色による細胞分選で純粋な脂肪細胞集団を効率的に作製する方法。脂肪細胞関連疾患の研究に応用可能です。

脂肪細胞関連疾患を研究するためのヒトiPS細胞を純粋な脂肪細胞集団に確実に分化させる(英語)

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