Name: アメリカのゴキブリにおけるRNA干渉の応用 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2021-12-17T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 32 s
Description: 学ぶRNA干渉技術を用いたアメリカゴキブリの遺伝子ノックダウン手法。特定遺伝子を標的とし、発生・再生・交尾行動などの分子メカニズムを解明する。遺伝子編集が困難な非モデル生物における多様な生命活動研究に応用可能です。

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この研究は、中国国家自然科学財団(助成金番号32070500、31620103917、31330072、および31572325からC.R.、Sh.L.まで)、広東省自然科学財団(助成金番号2021B1515020044および2020A1515011267からC.R.まで)、広東省科学技術部(助成金番号2019B090905003および2019A0102006)、広州科学技術部(助成金番号202102020110)の支援を受けました。 深セン科学技術プログラム(助成金番号。KQTD20180411143628272からSh.L.へ)。

P.アメリカーナのラインは、当初、Huiling Hao博士によって提供されました。この種は30年間近親交配で維持されています9。
1. P.アメリカーナの孵化と給餌
<ol><li>P. americanaの新鮮なオテカエ(産卵直後)を集め、25°C、湿度60%の暗所インキュベーターで約25日間孵化させます。その後、孵化の3日前に温度と湿度を30°Cと75%に上げます。</li>
	<li>4mmの開口部を有するふるいを使用して、孵化したニンフをオテカエから分離する。</li>
	<li>ニンフを円筒形の容器(直径12cm、高さ10cm)に入れ、湿度70%の28°Cの暗闇に保管してください。ゴキブリが逃げるのを防ぐために、容器の内側の端をワセリンで磨く。ネズミの餌、水、避難所(卵トレイ)を提供する。ニンフの活動に注意を払い、定期的に糞便や破片をきれいにしてください。</li>
</ol>2.適切な齢期のニンフの選択
<ol><li>ガラス管を使って、脱皮したての P.アメリカーナ (体色は白)を選びます。それらを新しい容器に保管し、治療のための正しい段階を待つ。 注:上記の摂食条件下で〜19日後、3番目の インスターのニンフは注射のために利用可能になります。脱皮したばかりのゴキブリの色は白く、インスターは脱皮時間によって明確になります。</li>
</ol>T7プロモーターによる標的断片の調製
<ol><li>P.アメリカーナのcDNAを鋳型として用い、ペアプライマーを設計してPCRを行い、標的遺伝子9の300-800 bp DNA断片を得た。次に、PCR断片をpTOPOベクター(材料表を参照)にクローニングしてシーケンシングを行います。</li>
	<li>標的断片DNAを鋳型として用いて、5'末端にT7プロモーター配列(5'-GGATCCTAATACGACTCACTTACATAGG-3')を有する1組の新しいプライマーを合成し、別のPCRを行い、両側にT7プロモーターを有する標的断片を得る9。</li>
</ol>4. インビトロでのdsRNAの転写と合成
<ol><li>反応系に10 μLのT7 2X Buffer、2 μLの酵素ミックス、T7 Express(材料表を参照)、および2 μgのPCR産物(ステップ3.2で得られた)を加え、ddH 2Oで全量を20μLに加算します。 その後、ゆっくりと室温まで冷却する。</li>
	<li>RNase A溶液(4μg/μL)をddH2Oで1:200の比率で希釈する。次に、1 μL の RQ1 RNase フリー DNase (1 U/μL) と 1 μL の希釈 RNase A 溶液をシステムに加えます ( 材料表を参照)。 メモ: 現在、単一システムの容量は 22 μL です。</li>
	<li>37°Cで30分間インキュベートする。次いで、酢酸ナトリウムの全容量の10%(N反応を同時に行う場合、全容量はN x 22μLである)およびイソプロパノールの全容量の3容量を加える。</li>
	<li>手動で軽く逆さまに混ぜ、氷の上に5分間置き、13,000 x g で4°Cで10分間遠心分離します。</li>
	<li>上清をピペットで取り出し、残渣を75%エタノール(25%ジエチルピロカーボネート(DEPC)処理水)で洗浄し、13,000 x g で4°Cで5分間遠心分離した。</li>
	<li>上清をもう一度取り除く。ペレットを室温で15分間風乾する。約 100 μL の DEPC 水を使用して dsRNA を溶解し、dsRNA を希釈して最後の 2 μg/μL にします。 注:dsRNAは-80°Cで6ヶ月間保存することができた。</li>
</ol>5. dsRNA溶液をシリンジにロードする
<ol><li>マイクロインジェクションポンプ( 材料表を参照)にプログラムを事前に設定して、各インジェクションの体積が一貫していることを確認します。シリンジを使用する前に、DEPC水を8〜10回充填してシリンジを清掃してください。</li>
	<li>マイクロインジェクションポンプに10 μLのシリンジを取り付け、ポンプを起動し、シリンジに10 μLのdsRNA溶液(ステップ4.6で調製)を充填します。1 μLのdsRNAを3齢の ニンフに注入し(ステップ2を参照)、体内に漏れないようにします。</li>
</ol>6. P.アメリカーナへのdsRNAの注入
<ol><li>ゴキブリがもう動かなくなるまで、容器内のCO2 濃度を高めてゴキブリを麻酔し、すぐに注射を進める。</li>
	<li>ピンセットでゴキブリを優しく拾い上げ、手でゴキブリを針に向かって届けます。次に、2つの腹部ソマイト間の隙間 を介して 針を表皮に対して水平に挿入する。インサートの深さについては、浅いほど良いです。</li>
	<li>次に、dsRNA溶液をゴキブリに注入する。最後に、針先を引き出します。内臓を傷つけないように、針先が表皮にできるだけ近いことを確認してください。 注:注射は解剖顕微鏡下で行う必要があります。</li>
	<li>注射されたゴキブリをきれいなバイオアッセイ容器に入れる。CO2の影響から回復するまで約10〜20分 待ちます。容器に注射日、dsRNAの種類と用量、 P.アメリカーナの年齢をラベル付けします。</li>
	<li>注入されたゴキブリを28°C、湿度70%の暗い環境に置き、水、飼料、および避難所を提供し、ゴキブリの表現型の可能な変化を定期的に観察する。</li>
</ol>7. ノックダウン確認と表現型解析
<ol><li>定量的リアルタイムPCR(qRT-PCR)やウェスタンブロッティングなどの利用可能な分子生物学技術を使用して、RNAiの効率を評価します。詳細なqRT-PCRおよびウェスタンブロッティング手順については、参考文献1,12を参照してください。</li>
	<li>RNAi関連の表現型を観察・解析するには、生きた動物に適した顕微鏡を使用してください。 注:RNAiは、ゴキブリの形態、行動、脱皮、四肢再生、およびその他の生理学的活動に影響を与える可能性があります。表現型の特定の頻度は、特定の条件に従って計算される。</li>
</ol>

<ol><li>Miller, S. C., Miyata, K., Brown, S. J., Tomoyasu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+systemic+RNA+interference+in+the+red+flour+beetle+Tribolium+castaneum%3A+Parameters+affecting+the+efficiency+of+RNAi%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Dissecting systemic RNA interference in the red flour beetle Tribolium castaneum: Parameters affecting the efficiency of RNAi.</a> PloS One. 7 (10), 47431(2012).</li>
<li>Fire, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+and+specific+genetic+interference+by+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 391 (6669), 806-811 (1998).</li>
<li>Ambesajir, A., Kaushik, A., Kaushik, J. J., Petros, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference%3A+A+futuristic+tool+and+its+therapeutic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Saudi+Journal+of+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">RNA interference: A futuristic tool and its therapeutic applications.</a> Saudi Journal of Biological Sciences. 19 (4), 395-403 (2012).</li>
<li>Younis, A., Siddique, M. I., Kim, C. K., Lim, K. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+%28RNAi%29+induced+gene+silencing%3A+A+promising+approach+of+hi-tech+plant+breeding%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Biological+Sciences%22%5BJournal%5D)">RNA interference (RNAi) induced gene silencing: A promising approach of hi-tech plant breeding.</a> International Journal of Biological Sciences. 10 (10), 1150-1158 (2014).</li>
<li>Bellés, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Beyond+Drosophila%3A+RNAi+in+vivo+and+functional+genomics+in+insects%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Entomology%22%5BJournal%5D)">Beyond Drosophila: RNAi in vivo and functional genomics in insects.</a> Annual Review of Entomology. 55, 111-128 (2010).</li>
<li>French, A. S., Meisner, S., Liu, H., Weckström, M., Torkkeli, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptome+analysis+and+RNA+interference+of+cockroach+phototransduction+indicate+three+opsins+and+suggest+a+major+role+for+TRPL+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Physiology%22%5BJournal%5D)">Transcriptome analysis and RNA interference of cockroach phototransduction indicate three opsins and suggest a major role for TRPL channels.</a> Frontiers in Physiology. 6, 207(2015).</li>
<li>Hennenfent, A., Liu, H., Torkkeli, P. H., French, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+interference+supports+a+role+for+Nanchung-Inactive+in+mechanotransduction+by+the+cockroach%2C+Periplaneta+americana%2C+tactile+spine%5BTitle%5D)+AND+%22Invertebrate+Neuroscience%3A+IN%22%5BJournal%5D)">RNA interference supports a role for Nanchung-Inactive in mechanotransduction by the cockroach, Periplaneta americana, tactile spine.</a> Invertebrate Neuroscience: IN. 20 (1), 1(2020).</li>
<li>Immonen, E. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EAG+channels+expressed+in+microvillar+photoreceptors+are+unsuited+to+diurnal+vision%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Physiology%22%5BJournal%5D)">EAG channels expressed in microvillar photoreceptors are unsuited to diurnal vision.</a> The Journal of Physiology. 595 (16), 5465-5479 (2017).</li>
<li>Li, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genomic+and+functional+landscapes+of+developmental+plasticity+in+the+American+cockroach%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">The genomic and functional landscapes of developmental plasticity in the American cockroach.</a> Nature Communications. 9 (1), 1008(2018).</li>
<li>Zhao, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Grainy+head+signaling+regulates+epithelium+development+and+ecdysis+in+Blattella+germanica%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Science%22%5BJournal%5D)">Grainy head signaling regulates epithelium development and ecdysis in Blattella germanica.</a> Insect Science. 28 (2), 485-494 (2021).</li>
<li>Lozano, J., Belles, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Conserved+repressive+function+of+Kr%C3%BCppel+homolog+1+on+insect+metamorphosis+in+hemimetabolous+and+holometabolous+species%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Conserved repressive function of Krüppel homolog 1 on insect metamorphosis in hemimetabolous and holometabolous species.</a> Scientific Reports. 1, 163(2011).</li>
<li>Philip, B. N., Tomoyasu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+knockdown+analysis+by+double-stranded+RNA+injection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology+%28Clifton%2C+N.+J%29%22%5BJournal%5D)">Gene knockdown analysis by double-stranded RNA injection.</a> Methods in Molecular Biology (Clifton, N. J). 772, 471-497 (2011).</li>
<li>Zheng, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CRISPR+interference-based+specific+and+efficient+gene+inactivation+in+the+brain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">CRISPR interference-based specific and efficient gene inactivation in the brain.</a> Nature Neuroscience. 21 (3), 447-454 (2018).</li>
<li>Garbutt, J. S., Bellés, X., Richards, E. H., Reynolds, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Persistence+of+double-stranded+RNA+in+insect+hemolymph+as+a+potential+determiner+of+RNA+interference+success%3A+Evidence+from+Manduca+sexta+and+Blattella+germanica%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Insect+Physiology%22%5BJournal%5D)">Persistence of double-stranded RNA in insect hemolymph as a potential determiner of RNA interference success: Evidence from Manduca sexta and Blattella germanica.</a> Journal of Insect Physiology. 59 (2), 171-178 (2013).</li>
<li>Parrish, S., Fleenor, J., Xu, S., Mello, C., Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+anatomy+of+a+dsRNA+trigger%3A+differential+requirement+for+the+two+trigger+strands+in+RNA+interference%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Cell%22%5BJournal%5D)">Functional anatomy of a dsRNA trigger: differential requirement for the two trigger strands in RNA interference.</a> Molecular Cell. 6 (5), 1077-1087 (2000).</li>
<li>Lemonds, T. R., Liu, J., Popadić, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+contribution+of+the+melanin+pathway+to+overall+body+pigmentation+during+ontogenesis+of+Periplaneta+americana%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Science%22%5BJournal%5D)">The contribution of the melanin pathway to overall body pigmentation during ontogenesis of Periplaneta americana.</a> Insect Science. 23 (4), 513-519 (2016).</li>
<li>Jackson, A. L., Linsley, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noise+amidst+the+silence%3A+Off-target+effects+of+siRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Genetics%3A+TIG%22%5BJournal%5D)">Noise amidst the silence: Off-target effects of siRNAs.</a> Trends in Genetics: TIG. 20 (11), 521-524 (2004).</li>
<li>Patel, M., Peter, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+DISE-inducing+shRNAs+by+monitoring+cellular+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle+%28Georgetown%2C+Tex%29%22%5BJournal%5D)">Identification of DISE-inducing shRNAs by monitoring cellular responses.</a> Cell Cycle (Georgetown, Tex). 17 (4), 506-514 (2018).</li>
<li>Ventós-Alfonso, A., Ylla, G., Montañes, J. C., Belles, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNMT1+promotes+genome+methylation+and+early+embryo+development+in+cockroaches%5BTitle%5D)+AND+%22iScience%22%5BJournal%5D)">DNMT1 promotes genome methylation and early embryo development in cockroaches.</a> iScience. 23 (12), 101778(2020).</li>
<li>Wang, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variation+in+RNAi+efficacy+among+insect+species+is+attributable+to+dsRNA+degradation+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Insect+Biochemistry+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Variation in RNAi efficacy among insect species is attributable to dsRNA degradation in vivo.</a> Insect Biochemistry and Molecular Biology. 77, 1-9 (2016).</li>
<li>Bi, F., Liu, N., Small Fan, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((interfering+RNA%3A+A+new+tool+for+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">interfering RNA: A new tool for gene therapy.</a> Current Gene Therapy. 3 (5), 411-417 (2003).</li>
</ol>

著者らは、利益相反はないと宣言している。

この報告書は、 P. americanaにおける方法論的ステップバイステップRNAi戦略を説明した。注目すべきは、他のゴキブリ(例えば、Blattella germanica )や、小さな変化を伴う他の多くの昆虫にも適用することができる。しかし、RNAiの遺伝子サイレンシング効率は必ずしも十分に高いとは限らず、遺伝子ノックアウト戦略と比較して明らかな欠点がある13。遺伝子レベルの以下の残留効果は、実際の表現型を妨害する可能性がある。RNAi治療を確実に成功させるためには、動物の体調、対照群の選択、dsRNA分子の長さおよび濃度、オフターゲット効果(OTE)の可能性の回避、およびdsRNAに対する組織の異なる感受性を含む、いくつかの重要な条件を考慮する必要がある。
P.アメリカーナの体調 健康な動物は、 P. americanaにおけるRNAiおよび異なる遺伝子機能研究の成功の前提である。その...

進化的に保存されたメカニズムであるRNA干渉(RNAi)は、アンドリュー・ファイアとクレイグ・メロ2が二本鎖RNA(dsRNA)媒介遺伝子沈黙戦略を開発して以来、多くの生物1で遺伝子発現を阻害するために徐々に不可欠な逆遺伝学的ツールになります。dsRNAは、21〜23ヌクレオチドの断片に切断され、小さな干渉RNA(siRNA)は、細胞内の酵素ダイサーによってRNAi経路を活性化する。その後、siRNAはRNA誘導サイレンシング複合体(RISC)に組み込まれ、標的mRNAに結合し、mRNA切断を引き起こし、最終的に遺伝子機能の喪失をもたらす3、4、5。昆虫種のうち、直翅目、錬翅目、半翅目、鞘翅目、神経翅目、双翅目、膜翅目、鱗翅目、およびブラットデア5、6、7、8など、多くの昆虫順でこれまでに多くの全身RNAi実験が報告されている。
ゴキブリ(Blattaria)は、急速な成長サイクル、環境への強い適応性、および高い発生可塑性を備えた発生および変成研究において不可欠な昆虫科である9。RNAiがゴキブリと互換性があることを発見する前は、以前の研究はゴキブリの遺伝子操作技術の不足のためにゴキブリの予防と制御にのみ焦点を当てていました。ゴキブリのオテカのユニークな構造は、CRISPR-Cas9システムで胚注入ベースの遺伝子ノックアウトを行うことを困難にしました。その上、ゴキブリのほとんどの組織(P. americanaなど)は、堅牢な全身RNAi応答を示し、1つ以上の標的dsRNAを注射することによって機能不全表現型の迅速な生成を可能にする9、10、11。これらの特徴により、RNAiはP. americanaの遺伝子機能研究に不可欠な技術となりました。
P. americanaの機能的遺伝子研究におけるRNAiの使用が報告されているにもかかわらず、詳細または段階的な説明は得られなかった。このレポートは、P. americanaのRNAiの段階的な運用ガイドラインを提供し、他のゴキブリの遺伝子機能研究に有用である。さらに、このガイドはBlattodeaに限定されず、軽微な変更を加えて他の多くの昆虫に適用することができます。

<table><tbody><tr><td>701 N 10 & マイクロ;L Syr (26s/51/2)</td><td>ハミルトン</td><td>PN:80300</td><td>インジェクション</td></tr><tr><td>インキュベーター</td><td>寧波江南楽器工場</td><td>RXZ-380A-LED</td><td>ゴキブリの孵化と給餌用</td></tr><tr><td>マイクロインジェクションポンプ</td><td>オルコットバイオテクノロジー</td><td>ALC-IP600</td><td>インジェクション</td></tr><tr><td>pTOPO-ブラントクローニングキット</td><td>Aidlab バイオテクノロジー</td><td>CV16</td><td>遺伝子クローニング用定量的</td></tr><tr><td>リアルタイム PCR システム</td><td>バイオ・ラッド</td><td>CFX Connect</td><td>qRT-PCR 解析用</td></tr><tr><td>T7 RiboMAX Express RNAi System</td><td>Promega</td><td>P1700</td><td>Rnase A 溶液 (4 &mu;g/&mu;L)、酢酸ナトリウム、3.0M (pH 5.2)、酵素ミックス、T7 Express、ヌクレアーゼフリー水、Express T7 2x バッファー、RQ1 RNase-Free DNase</td></tr><tr><td>サーマルサイクラーズ</td><td>Bio-Rad</td><td>S1000</td><td>DNA 増幅用</td></tr></tbody></table>

アメリカのゴキブリにおけるrna干渉の応用

Applications of RNA Interference in American Cockroach

衛生害虫であるゴキブリは、その容易な摂食および半代謝特性のために、昆虫の発生および変成研究において必須種である。注釈付きのゲノム配列とともに、これらの利点により、アメリカのゴキブリ、 ペリプラネタアメリカーナ は重要な半代謝昆虫モデルとなっています。ノックアウト戦略の不足によって制限され、効果的なRNA干渉(RNAi)ベースの遺伝子ノックダウンは 、P. americanaの機能的遺伝子研究において不可欠な技術となっている。本プロトコールは、 P. americanaにおけるRNAi操作技術を記述する。このプロトコルには、(1)適切な発生段階での P.アメリカーナ の選択、(2)注射設定の準備、(3)dsRNA注射、および(4)遺伝子ノックダウン効率検出が含まれる。RNAiは、 P. americanaの強力な逆遺伝学的ツールです。 P. americana 組織の大部分は、細胞外dsRNAに感受性である。そのシンプルさにより、研究者は1回または複数の標的dsRNA注射で機能不全の表現型を迅速に取得でき、研究者は P. americana を発生および変成研究に有効に使用することができます。

図 1 は、成功した注入を示しています。マイクロ直径の針を備えたマイクロインジェクションシリンジは、ブースター上に水平に配置する必要があります(図1A)。針は、表皮に対して水平に2つの腹部ソマイト間の隙間 を介して 挿入される(図1B)。液体が P.アメリカーナ 腹部に入ることを確認します。針の角度が急すぎると内臓が損傷し(図1C)、不適切な注射はdsRNA溶液の腹部からの漏出につながります(図1D)。いずれかのdsRNAが漏れた場合、動物を捨てる必要があり、別の注射が行われる。 P.アメリカーナは 注射中に完全に麻酔をかける必要があります。
他の生物学的実験と同様に、RNAi処理が行われる場合、対照群が必要である。治療の違いは、ds...

本プロトコルは、 P. americanaにおけるRNAi操作技術のための段階的なガイドラインを記載する。

アメリカのゴキブリにおけるRNA干渉の応用

Cockroaches, a sanitary pest, are essential species in insect developmental and metamorphic studies due to their easy feeding and hemimetabolous ...

プロトコルは、アメリカのゴキブリを研究する簡単な方法を提供します。一般的な衛生害虫であり、伝統的な漢方薬にとって有益な昆虫です。特定の遺伝子をノックダウンすることによって、アメリカのゴキブリの複数の生命活動の分子メカニズムを探るのに役立ちます。この技術の主な利点は、アメリカのゴキブリや遺伝子編集に適さない他の同様の昆虫の遺伝子をノックダウンできることです。この技術は、遺伝的およびエピジェネティックな調節、組織の発達過程、付属器の再生、交配行動、およびアメリカのゴキブリの他の興味深い側面など、さまざまな分野を探索するために使用することができます。この技術は操作が簡単で汎用性があります。DSRA注射治療中は動物を健康に保つことをお勧めします。初心者は数回の練習セッションの後にこのテクニックを簡単に習得できると思います。まず、孵化したニンフを4ミリメートルの開口部のふるいでオテカエから分離します。ガラス管で白い麦芽焼きのP.americanaを選んでください。P.americanaを新しい容器に入れ、治療の正しい段階を待ちます。反応系に、10マイクロリットルのT7 2Xバッファー、2マイクロリットルのT7 Express Enzyme Mix、および2マイクログラムのPCR産物を加える。最後に、二重蒸留水で総容量を20マイクロリットルにします。手動で逆さまに静かに混ぜ合わせ、摂氏37度で30分間、次に摂氏70度で10分間インキュベートします。1マイクロリットルあたり4マイクログラムのRNase A溶液をDEPC水で1〜200の割合で希釈する。次いで、1マイクロリットル当たり1マイクロリットルのRQ1 RNase 遊離ドナーゼおよび1マイクロリットルの希釈RNase A溶液を系に加える。摂氏37度で30分間インキュベートする。次いで、酢酸ナトリウムの全体積の10%およびイソプロパノールの全体積の3容量を加える。手動で軽く逆さまに混ぜ合わせ、氷の上に5分間置き、13,000gで4°Cで10分間遠心分離します。上清をピペットで取り除きます。次に、残渣を75%エタノール、25%DEPC処理水で洗浄し、次いで13,000gで摂氏4度で5分間遠心分離する。再度上澄み液を除去し、ペレットを室温で15分間風乾する。次いで、二本鎖RNAを約100マイクロリットルのDEPC水で溶解し、それを1マイクロリットル当たり2マイクログラムの最終濃度に希釈する。マイクロインジェクションポンプにプログラムをセットアップして、各インジェクションの体積が一貫していることを確認します。その後、シリンジにDEPC水を8〜10回充填して洗浄します。マイクロインジェクションポンプに10マイクロリットルのシリンジを取り付けます。その後、ポンプを起動し、シリンジに10マイクロリットルの二本鎖RNA溶液を充填する

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

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篩部と半翅目昆虫の植物 sap 供給の RNA 干渉を誘発する二本鎖 RNA の経口配信方法

このプロトコルでは、標準化し、蚊とハエの体液に直接核酸の特定の量を提供する数年間使用したマイクロインジェクションの方法論について説明します。このプロトコルは、最小限の注入の死亡率の結果し、多産の相関の線量測定が可能します。...

再現可能な dsRNA のインジェクションと蚊とハエの産卵生物検定

RNA干渉は、特定の発生段階で遺伝子発現を操作するための広く適用可能で強力な技術です。ここでは、この手法を、遺伝子配列の獲得から、構造や行動に影響を与える遺伝子のノックダウンまで、水生潜用カブトムシ の熱NECTTus...

特定の発生時における遺伝子発現を操作するための強力なツールとしての水生カブトムシのRNA干渉

細菌によって産生されるdsRNAの経口投与は、 カエノラブディティス・エレガンス...

成虫 のアノフェレスガンビアエ 蚊への効果的な経口RNA干渉(RNAi)投与

ここでは、遺伝子機能の研究を容易にするために、 ブルサフェレンコス・キシロフィルス におけるRNA干渉の詳細な浸漬方法を紹介します。...

パインウッド線虫、ブルサフェレンコス・キシロフィルスにおけるRNA干渉の応用

RNA干渉(RNAi)の操作は、 トリコグラマ スズメバチなど、サイズが小さい多くの寄生生物種において手ごわい課題となっています。この研究は、 Trichogramma denrolimiにおける効率的なRNAi法を明らかにしました。本手法は、 トリコグラマ...

卵に寄生する Trichogramma dendrolimi Matsumura におけるRNA干渉

学ぶRNA干渉技術を用いたアメリカゴキブリの遺伝子ノックダウン手法。特定遺伝子を標的とし、発生・再生・交尾行動などの分子メカニズムを解明する。遺伝子編集が困難な非モデル生物における多様な生命活動研究に応用可能です。

アメリカのゴキブリにおけるRNA干渉の応用

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