Name: 植物-真菌相互作用におけるペクチンを検出する二重染色法 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-02-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 39 s
Description: 学ぶ 植物-真菌相互作用におけるペクチン検出の二重染色法。コットンブルーとルテニウムレッドを用いて、コーヒー葉の真菌構造と細胞壁変化を明確に可視化し、Hemileia vastatrixなどの病原菌との相互作用を解析します。

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著者らは、この研究を発展させるための支援について、ハドソン・W・P・デ・カルヴァーリョ博士に感謝したい。著者らはまた、電子顕微鏡研究所「北島エリオット渡辺教授」が光顕微鏡施設を提供してくれたことにも感謝している。著者らは、植物材料に病変を供給したFlávia Rodrigues Alves Patrício博士に感謝する。

緩衝溶液及び試薬の調製
<ol><li>100 mLの蒸留水に4.28 gのカコジル酸ナトリウムを加えて2 Mカコジル酸緩衝液を調製し、0.2 N HClでpHを7.25に調整します。</li>
	<li>10mLの25%グルタルアルデヒド水溶液、10mLの10%ホルムアルデヒド水溶液、25mLの2Mカコジル酸緩衝液、および0.5mLの0.5M CaCl226を混合して、100mLのカルノフスキー固定液を調製する。蒸留水で100mLまでの容量を作ります。 注:溶液は冷蔵庫に6ヶ月間保管することができます。 警告: カコジル酸緩衝溶液は有毒です。したがって、固定液溶液をヒュームフードまたはオープンエリアで処理してください。溶液蒸気を吸い込まないようにし、取り扱い中は手袋を着用してください。</li>
	<li>3 mM Ca(NO3)2.4H 2 O、2 mM NH 4H2 PO4、5 mM KH 2PO4、2 mMMgSO 4.7H2O、9.07 mM MnSO 4、0.765 mM ZnSO4.7H 2 O、46.4 mMH3BO3、 0.09 mMNa2MoO4.H2O、0.01 mM CuSO4、および鉄-EDTA(エチレンジアミン四酢酸)として36 mM FeSO4.7H2O2Oが挙げられる27。</li>
</ol>2. 植物サンプルおよび真菌接種
注:コーヒーの錆びの影響を受けた葉の実験のために、 コーヒーアラビカ cvの5つの2ヶ月齢の苗木。カトゥアイはブラジルのサンパウロ州ピラシカバにあるサンパウロ大学の農業原子力センター(CENA)の温室で栽培され、保管されました。
<ol><li>250μmolの光子s-1 m-2の光子フラックスでLEDランプによって作成された12時間の光周期で27± 3°Cに保たれた成長チャンバー内で、ホーグランド水溶液(pH〜5.5)で満たされた500mLのプラスチックポットで4ヶ月間コーヒー植物を栽培する。ホーグランド養液を毎週4ヶ月間交換してください。</li>
	<li>それらのアブキシャル表面上の5つの植物から4つの膨張した葉を、参考文献28に記載の方法に従って1 x103H. vastatrix uredosporesに接種する。接種後、植物を黒いビニール袋で覆って暗闇の中で48時間保管してください。接種後30日目に病変を収穫する。 </li>
	<li>Coffea arabica cvからCercospora cfeicolaによって引き起こされる特徴的な病変を収穫する。ブラジル、サンパウロ州カンピナスの生物研究所にあるオバタン植物(座標:-22.906506126269942、-47.015075902025266)。試料を処理する前に、実体顕微鏡で病変を分析し、コーヒーC.コフェイコーラ分生子の存在を検証した。次に、分生子とともにいくつかのスライドを装着し、疾患病因22を確認する。</li>
</ol>3. サンプルの採取、固定、脱水
<ol><li>メスとピンセットを使用して、病変の中央領域で〜10mm2の葉サンプルを採取する(黄色の斑点;図1)30mLのカルノフスキー固定液に浸漬する(図1および図2A)。固定ステップは、冷蔵庫で48時間行うことができます。</li>
	<li>少なくとも4回、葉の組織における固定液の透過性を高めるために、オイルポンプを使用して葉サンプルを低真空(500〜600mBar)にそれぞれ15分間供する。この手順は、サンプルの回転で実行します(図1)。</li>
	<li>固定後、蒸留水で希釈した0.5 Mカコジル酸緩衝液(pH 7.2)で葉サンプルを5分間それぞれ3回洗浄し、その後、段階的なエタノール系列(30%、50%、70%、90%(2x)、および100%(2x))に各エタノール濃度で15分間移す(図1 および 図2B)。</li>
</ol>4. 保存埋め込み手順
<ol><li>製造元の指示に従って、サンプルを3つのステップでグリコールメタクリレート(GMA)に徐々に移します。まず、GMA粉末(1g)と塩基性樹脂100mLを混合して溶液Aを作る(ヒトレシンキット; 材料表)磁気攪拌下で、以下の手順に従ってください。<ol>
<li>サンプルを1:2溶液A:100%エタノールに3時間浸漬する。</li>
		<li>サンプルを1:1溶液A:100%エタノールに3時間浸漬する。</li>
		<li>サンプルを純粋な塩基性樹脂に2〜4日間浸漬する。このステップの間、サンプルを1日4回、15分間、低真空にかけ、その後回転させる。</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. 重合
注: 重合プロセスには、1.2 mL のプラスチック金型、基本樹脂、および硬化剤が必要です (市販のキットの詳細については、 材料表 を参照してください)。
<ol><li>15 mLの溶液A(ステップ4.1)と1 mLの硬化剤を2分間回転させるビーカーで混合し、重合溶液(溶液B)を作製した。</li>
	<li>2 mLの重合溶液(溶液B)をプラスチック金型に入れる。木製のピックを使用して、病変葉サンプルを純粋な塩基性樹脂から溶液Bに移します(図2C)。ピンセットは組織の破砕を引き起こす可能性があるため、使用しないでください。</li>
	<li>溶液Bが5分以内に迅速に粘性になるように、葉のサンプルをプラスチック金型に対して垂直に素早く配向させるようにしてください。複数の病変葉サンプルを単一のカビに入れることができる。 注:多くのサンプルを申請する前に、上記の手順を数回練習することをお勧めします。試料が多いと、鋳型間で重合時間が異なり、葉試料の垂直配向が達成しにくい場合がある。</li>
	<li>葉サンプルの垂直配向が達成されたら、30分間待ってから、湿気を防ぐためにプラスチックモールドをシリカゲルを含むプラスチックまたはガラスチャンバに移す。重合のために2〜3時間待つ。</li>
	<li>2〜3時間後に樹脂と葉サンプルが重合したら、ブロックベースをサンディングヤスリでサンディングして、得られたブロックをプラスチック金型から取り外します。次に、ブロックを木片に接着します(図2D)。</li>
</ol>6. セクショニング
<ol><li>8cmのスチールブレードを備えた回転ミクロトーム(図2E)を使用して、ブロックを厚さ5μmのセクションに切断します。蒸留水で覆われたスライドガラスの上に切片を置きます。水上に浮いた切片を有するスライドを40°Cのホットプレートに移し、乾燥させ、スライドガラスへの切片の接着を促進する。</li>
	<li>乾燥後(図2F)、スライドガラスにブロック参照名とスライド番号のラベルを付けます。</li>
</ol>7. 二重染色プロセス
<ol><li>ラクトフェノール(40%グリセロール、20%フェノール、および20%乳酸水)の5%コットンブルーの2mLで切片を覆い、45°Cのホットプレート上で5分間加熱する(図3A)。</li>
	<li>蒸留水を満たしたビーカーでスライドを3回洗浄して余分な色素を除去する(図3B-D)。</li>
	<li>2mLの0.01%ルテニウムレッドで1分間水中で染色する(図3E)。</li>
	<li>蒸留水を満たしたビーカーでスライドを3回洗浄して余分な色素を除去します(図3F、G)。</li>
	<li>切片の上に蒸留水1滴を入れ、光学顕微鏡分析を行うための24 mm x 60 mmのカバースリップで切片を覆います。</li>
</ol>

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<li>Whitakaer, F. C. S., Denison, F. C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lactic+acid+in+wool+dyeing%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Society+of+Dyers+and+Colourists%22%5BJournal%5D)">Lactic acid in wool dyeing.</a> Journal of the Society of Dyers and Colourists. 98, 103(1895).</li>
<li>Chamberlain, C. J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aChamberlain%2C+CJ+%22Methods+in+Plant+Histology%22">Methods in Plant Histology</a>. , The University of Chicago Press. Chicago. 349(1932).</li>
<li>Sterling, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crystal-structure+of+ruthenium+red+and+stereochemistry+of+its+pectin+stain%5BTitle%5D)+AND+%22American+Journal+of+Botany%22%5BJournal%5D)">Crystal-structure of ruthenium red and stereochemistry of its pectin stain.</a> American Journal of Botany. 57, 172-175 (1970).</li>
<li>Luft, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ruthenium+red+and+violet.+1.+Chemistry%2C+purification%2C+methods+of+use+for+electron+microscopy+and+mechanism+of+action%5BTitle%5D)+AND+%22The+Anatomical+Record%22%5BJournal%5D)">Ruthenium red and violet. 1. Chemistry, purification, methods of use for electron microscopy and mechanism of action.</a> The Anatomical Record. 171 (3), 347-368 (1971).</li>
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</ol>

著者らは利益相反がないと宣言しています。

本研究は、ハウストリアを生物栄養病態系に封入する細胞壁のペクチン組成を調べるための代替二重染色組織化学的試験を導入する。その目的はまた、壊死性真菌およびそれによって誘導される細胞壁変化を検出する方法の有効性を実証することである。ここで、コーヒー実質細胞壁のペクチンは、錆病菌ヘミレイア・バスタトリクスの首とハウスリウムの両方をカプセル化することができる。Silvaらはまた、コーヒー−H.バスタトリックス病態系14、29におけるセルロースおよびカロースによるカプセル化について記載している。防御機構に関連する細胞壁ポリマーの中で、ペクチンは植物病原体系において重要な役割を果たしている10、11、12。したがって、ペクチン機能の知識は、病理組織学的に大きな価値がある。
<p class="jove_c...

植物の細胞壁防御機構は、真菌感染を抑制するために重要である。研究は、19世紀以来の細胞壁の厚さと組成の変化を報告している1,2。これらの変化は、真菌が細胞に入るのを妨げる乳頭の形成を刺激する真菌病原体によって誘発され得るか、または真菌ハウストリアから宿主細胞プロトプラストを単離するために菌糸を封入するために使用することができる。動的細胞壁障壁(すなわち、乳頭および完全に包まれたハウストリウム)の産生は、植物抵抗性を促進するために重要である3。真菌関連疾患に関する病理組織学的研究は、これらのメカニズムの発生を調査し、細胞壁ポリマー、セルロース、ヘミセルロース(アラビノキシラン)、およびカロースを真菌攻撃に対する耐性メカニズムとして記述している4、5、6、7。
細胞壁は微生物の攻撃に対する最初の障壁であり、植物 - 真菌相互作用を損なう。ペクティック多糖類は細胞壁を構成し、ホモガラクツロナンが最も豊富なポリマーである真二子植物の初代細胞における細胞壁組成の約30%(約60%)を占める8。ゴルジ体は、ガラクツロン酸鎖を構成する複雑なペクチン化合物を分泌し、メチル化されていてもいなくてもよい8,9。2012年以来、文献は、ペクチンメチルエステル化の程度が微生物ペクチン酵素10、11、12による感染時の適合性を決定するのに重要であることを指摘している。したがって、植物 - 真菌病態系におけるペクチック化合物の存在および分布を検証するためにプロトコルが必要である。
乳頭またはハウストリアのカプセル化を検出するために様々な技術が用いられてきた。使用される参照方法は、固定組織の透過型電子顕微鏡(TEM)および生体および固定組織の光学顕微鏡法である。TEMに関しては、いくつかの研究が真菌耐性における細胞壁アポジションの構造的役割を実証している13,14,15,16、およびレクチンおよび抗体の使用が炭水化物ポリマーを見つけるための複雑な方法であること16。しかし、研究は、光学顕微鏡法が重要なアプローチであり、組織化学的および免疫組織化学的ツールが乳頭およびハウスストリウム包帯の組成をよりよく理解することを可能にすることを示している6,7。
病原性真菌は、生物栄養性および壊死性の2つの主要なタイプのライフスタイルを示す。生物栄養性真菌は、その栄養のために生細胞に依存しているのに対し、壊死性真菌は宿主細胞を殺し、次いで死んだ組織に生息する17。ラテンアメリカでは、真菌Hemileia vastatrixによって引き起こされるコーヒー葉の錆は、コーヒー作物における重要な病気である18,19。ヘミレイア・バスタトリックスは、生物栄養挙動を示し、耐性コーヒー種または栽培品種で観察される構造変化のうち、過敏応答、細胞壁へのカロース、セルロース、およびリグニンの沈着、ならびに細胞肥大14が報告されている。著者の知る限り、文献はコーヒーの錆び抵抗性におけるペクチンの重要性に関する情報を報告していない。一方、セルコスポリオーシスを引き起こす壊死性真菌は、ペクチナーゼおよびポリガラクツロナーゼ20などの細胞壁分解に関連する一連の酵素を介してペクチンを標的とする。コーヒー中のセルコスポリア症は、真菌Cercospora coffeicolaによって引き起こされる、コーヒー作物21、22に対する主要な脅威でもある。この真菌は、葉と果実の両方に壊死性病変を引き起こす。浸透後、C.コフェイコーラは、細胞内および細胞間経路23、24、25を介して植物組織にコロニー形成する。
本プロトコールは、細胞壁上の真菌構造およびペクチンの存在を調査する。このプロトコールは、真菌との生物栄養相互作用において宿主によって誘導されるペクチン(ペクチンのポリウロン酸の酸性基に特異的であるルテニウム赤色色素で染色される)に関連する植物応答を同定するのに有用である。また、壊死性真菌がペクチック細胞壁の分解に及ぼす影響を検証するのにも役立ちます。本結果は、二重染色法が真菌の構造や生殖期の判別に有効であることを示している。

<table><tbody><tr><td>ブレード DB80 HS</td><td>ライカ</td><td>14035838383</td><td>セクショニング</td></tr><tr><td>カコジル酸バッファー</td><td>EMS</td><td># 11652</td><td>固定</td></tr><tr><td>コットン ブルー ラクトフェノール</td><td>メタクイアキュート;mica</td><td>70SOLSIG024629</td><td>Staining</td></tr><tr><td>Formaldehyde</td><td>EMS</td><td>#15712</td><td>Fixation</td></tr><tr><td>Glutaraldehyde</td><td>EMS</td><td>#16216</td><td>Fixation</td></tr><tr><td>Historesin Kit</td><td>Technovit /EMS</td><td>#14653</td><td>Historesin for embedding</td></tr><tr><td>Hot plate</td><td>Dubesser</td><td>SSCD25X30-110V</td><td>Staining</td></tr><tr><td>Microscopy</td><td>Zeiss</td><td>#490040-0030-000</td><td>画像キャプチャ</td></tr><tr><td>ミクロトーム (ライカ RM 2540)</td><td>ライカ</td><td>149BIO000C1 14050238005</td><td>切片</td></tr><tr><td>プラスチック成形カップトレー</td><td>EMS</td><td>10176-30</td><td>染色</td></tr><tr><td>ルテニウムレッド</td><td>LABHouse</td><td>#006004</td><td>染色</td></tr><tr><td>ソフト Axion Vision</td><td>Zeiss</td><td>#410130-0909-000</td><td>画像キャプチャ</td></tr><tr><td>真空ポンプ</td><td>Prismatec</td><td>131 TIPO 2 V.C.</td><td>固定</td></tr></tbody></table>

植物-真菌相互作用におけるペクチンを検出する二重染色法

Double-Staining Method to Detect Pectin in Plant-Fungus Interaction

植物細胞は、真菌感染から身を守るために、構成的または誘導性のいずれかの異なる構造機構を使用する。カプセル化は、植物細胞プロトプラストから真菌ハウストリアを単離するための効率的な誘導可能な機構である。逆に、細胞壁のポリマー成分の1つであるペクチンは、壊死的相互作用におけるいくつかのペプチド分解酵素の標的である。ここでは、光学顕微鏡によってペクチンおよび真菌菌糸を検出するためのプロトコルが提示される。錆病菌 ヘミレイア・バスタトリックス に感染したコーヒー葉の細胞へのペクチンリッチなカプセル化と 、セルコスポラ・コフェイコーラ によって誘導された葉肉細胞壁修飾が調査される。病変葉サンプルをカルノフスキー溶液で固定し、脱水し、グリコールメタクリレートに2〜4日間包埋した。すべてのステップに続いて、細胞間空間内の空気を除去し、包埋プロセスを改善するための真空ポンピングが続いた。埋め込まれたブロックを厚さ5〜7μmのセクションに切断し、これを水で覆われたスライドガラス上に堆積させ、続いて40°Cで30分間加熱した。次に、スライドをラクトフェノール中の5%コットンブルーで二重染色して真菌を検出し、水中の0.05%ルテニウムレッドでペクチン(ペクチンのポリウロン酸の酸性基)を検出した。 ヘミレイア・バスタトリックスの 真菌ハウストリアはペクチンによってカプセル化されていることが判明した。コーヒーセルコスポリオーシスでは、葉肉細胞が細胞壁の溶解を示し、細胞間菌糸および分生子色素が観察された。ここで提示される方法は、植物−真菌相互作用におけるペクチン関連応答を検出するのに有効である。

GMA包埋部のコットンブルーラクトフェノール染色は、生物栄養性および壊死性真菌相互作用の両方において、コーヒー葉肉細胞間および内部にいくつかの真菌構造の存在を明らかにした。
生物栄養病原系において、二重染色法を用いて染色すると、細胞壁および緻密なプロトプラスト含量を含む ヘミレイア・バスタトリクス 菌糸は、海綿状および柵状実質の両方において濃い青色で現れる(図4A、B)。ハウストリア母細胞(Hmc)とハウストリアも強い濃い青色を呈する(図4C)。ルテニウムレッドで対比染色すると、細胞間空間における真菌分布が明確に定義される(図4D)。濃い青色のHMCの存在は、感染ゾーンを検出するのに役立ちます。相互作用の間、 H. vastatrix Hmcは宿主細胞壁を壊し、ペクティック化合物に囲まれるハウストリアルネックを発達させた(<strong...

このプロトコルは、コーヒー - 真菌相互作用におけるペクチンを検出するための顕微鏡的方法を記載する。

Plant cells use different structural mechanisms, either constitutive or inducible, to defend themselves from fungal infection. Encapsulation is an ...

このプロトコルは、植物 - 真菌相互作用を同定することを可能にするので重要である。ペクチンを着色することに加えて、それはまた病原体細胞壁ポリマー上の欠陥を示し、真菌構造の同定を可能にする。このシンプルで単純な技術は、光学顕微鏡を使用して実行することができ、走査型電子顕微鏡などの高価な機器を必要としません。さらに、それは組織病理学的研究のための植物構造の優れた区別を得る速い技術である。この技術は、植物 - 真菌相互作用を識別する。したがって、コーヒーサビやセルコスポリア症などの生物栄養性および壊死性真菌によって引き起こされる疾患を診断するために協力しています。まず、メスとピンセットを用いて病変部の中央領域で約10平方ミリメートルの葉サンプルを収穫し、30ミリリットルのカルノフスキー固定液に浸漬する。葉サンプルをオイルポンプを用いて500〜600ミリバールの低真空に15分間供し、葉組織における固定液の透過性を高めるために少なくとも4倍にする。固定後、葉サンプルを蒸留水で希釈した0.5 Mカコジル酸緩衝液でそれぞれ5分間3回洗浄し、その後、各エタノール濃度で15分間、段階的なエタノール系列に移した。サンプルをグリコールメタクリレートに徐々に移すには、1グラムのグリコールメタクリレート粉末を磁気攪拌下で100ミリリットルの塩基性樹脂と混合して溶液Aを作る。次いで、A液と100%エタノールの比率で試料を1対2で3時間浸漬する。溶液A:100%エタノールに対してサンプルを1対1の比率で3時間浸漬し、次いで純粋な塩基性樹脂に2〜4日間浸漬する。試料を1日4回、15分間、少なくとも1日4回低真空に供し、次いで回転させる。15ミリリットルの溶液Aと1ミリリットルの硬化剤をビーカーに2分間回転させて混合し、重合溶液Bを製造し、この重合溶液Bの1.2ミリリットルをプラスチック金型に入れます。木製のピックを使用して、病変した葉のサンプルを純粋な塩基性樹脂から溶液Bに移し、ピンセットは組織破砕を引き起こす可能性があるため、ピンセットの使用を避けてください。溶液Bがすぐに粘性になるので、葉のサンプルをプラスチック金型に対して垂直に素早く向けるようにしてください。葉のサンプルの垂直配向が達成されたら、30分間待ってから、湿気を防ぐためにシリカゲルを含むプラスチックまたはガラスチャンバにプラスチックモールドを移す。2〜3時間後に樹脂と葉サンプルが重合したら、ブロックベースをサンディングヤスリでサンディングして、得られたブロックをプラスチックモールドから取り外します。次に、ブロックを木片に接着します。8センチメートルのスチールブレードを備えた回転マイクロトームを使用して、ブロックを5マイクロメートルの厚さのセクションに切断します。蒸留水で覆われたスライドガラスの上に切片を置きます。その後、スライドをホットプレートに移して摂氏40度で乾燥させ、スライドガラスへの切片の接着を促進します。乾燥後、スライドガラスにブロック参照名とスライド番号のラベルを付けます。ラクトフェノールの5%コットンブルーの2ミリリットルで切片を覆い、摂氏45度のホットプレートで5分間加熱する。蒸留水を満たしたビーカーでスライドを3回洗浄して余分な染料を除去します。2ミリリットルの0.01%ルテニウムレッドで1分間水に染めます。蒸留水を満たしたビーカーでスライドを3回洗浄して余分な染料を除去します。切片の上に蒸留水1滴を入れ、光学顕微鏡分析を行うためのカバースリップで切片を覆う。二重染色法では、細胞壁および緻密なプロトプラスト含量を含むヘミレイア・バスタトリクス菌糸は、海綿状および柵状の実質の両方において濃い青色に見えた。ハウストリウム母細胞とハウストリアも濃い青色を呈した。ルテニウムレッドによるカウンター染色は、細胞間空間における真菌分布を明確に定義した。相互作用の間、ヘミレイア・バスタトリックス・ハウスストリウム母細胞は宿主細胞壁を壊し、ペクティック化合物に囲まれたハウストリアルネックを発達させた。ペクチンが豊富なピンクレッド色のハウストリアルネックのカプセル化は、ハウストリアル形成を防ぐことはできません。場合によっては、ペクチンが豊富なカプセル化がハウストリウムを不完全に包み込んだ。そして場合によっては、ハウストリアムは完全にカプセル化されています。ペクチンに富む細胞壁は、真菌が存在しない病変境界で完全性を維持する。二重染色法は、細胞間菌糸の存在を実証した。相互作用ゾーンでは、ペクチン細胞壁は溶解のために完全性を失うように見えた。分生子などの生殖構造は、副軸表皮に見出された。Cercospora coffeicola 菌糸は、カール構造として気底室に見出され、病変領域の柵実質は細胞壁溶解を受けるようである。ピンセットは組織の破砕を引き起こす可能性があるため、使用しないでください。錆、炭疽菌、セルコスポリオーシス、スマットおよび他の生物栄養性、ヘミ生物栄養性、および壊死性植物 - 真菌相互作用に関するさらなる組織病理学的研究を実施して、異なる病態系におけるこの技術の潜在的な使用を調査するべきである。

double-staining-method-to-detect-pectin-in-plant-fungus-interaction

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

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