Name: 生きた シロイヌナ ズナ根の表皮細胞の物性を調べる原子間力顕微鏡 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-03-31T13:50:00.000+00:00
Duration: 5 min 51 s
Description: 学ぶ原子間力顕微鏡による非侵襲的な植物細胞壁の物性測定法。シロイヌナズナの根表皮細胞を用いて、成長過程における細胞壁の弾性率変化を定量化し、器官全体の成長と関連付けることができます。

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この研究は、CSIC I + D 2018、助成金番号95(マリアナソテロシルベイラ)によって資金提供されました。CSICグルポス(オマールボルサニ)とペデシバ。

1.植物材料の調製と成長条件
<ol><li>必要な植物材料を生成するには、シロイヌナズナ野生型の種子と目的の変異株を滅菌します。 注:このプロトコルでは、以下を使用しました:ttl1:T-DNA挿入ラインSalk_063943(TTL1の場合;AT1G53300) - コロンビア-0(Col-0)野生型;Procuste1(prc1-1)変異体は、10,11で前述したように、CESA6遺伝子(AT5G64740)のノックアウト変異(Q720stop)からなる。およびTTL1 x PRC1-1二重変異体。<ol><li>約50μLの種子をマイクロチューブに入れます。室温で500 μLの70%エタノール+ 0.01%トゥイーン溶液を加えます。混合して7分間インキュベートします。</li>
		<li>エタノール溶液を注ぎ、500μLの20%次亜塩素酸ナトリウムを加える。混合して7分間インキュベートします。</li>
		<li>次亜塩素酸ナトリウム溶液を注ぎ、滅菌水で種子を3〜4回洗います。</li>
	</ol></li>
	<li>鍍金<ol><li>基礎ムラシゲおよびスクーグ(MS)培地12 +1.5%スクロース+1%寒天(pH 5.7)を予め調製する( 材料表参照)。培地をオートクレーブします。無菌環境で動作するように層流フードを準備し、実験に必要な正方形のペトリ皿にラベルを付けます。培地をペトリ皿に注ぎ、培地を固化させます。</li>
		<li>滅菌ピペットチップを使用して滅菌種子を培地を含む正方形のペトリ皿にプレートします。種子を2列に均等に分配します。種子が乾いたら、蓋を閉めてプレートを密封します。種子を暗所で4°Cで4日間層別化する。 注:発芽を同期させるには層別化が必要です。</li>
		<li>プレートを成長チャンバーに垂直に配置し、25 μmolm 2 s−1 の光強度と23 °C(昼/夜)の長日体制(16時間の光/8時間の暗)で置きます。7日間苗を育てます。</li>
	</ol></li>
</ol>2.浸透圧ストレス治療(オプション)
注:このセクションでは、凍結鏡浸透圧計によって推定された-1.2MPaの浸透電位でのシロイヌナズナの根の成長について詳しく説明します(材料の表)。この部分は、手元の実験的な質問に応じて省略または変更できます。
<ol><li>基礎MS培地+ 1.5%スクロース+ 400 mMマンニトール+ 1%寒天(pH 5.7)を調製します。培地をオートクレーブします。層流フード内の正方形のペトリ皿に培地を注ぎ、培地を固化させます。</li>
	<li>ピンセット(Table of Materials)を用いて、基礎MS+1.5%スクロース培地で予め生育させた5日齢の苗を、400mMマンニトールを添加した培地を含む正方形のシャーレに入れる。ステップ1.2.3と同じ条件でプレートを成長チャンバーに垂直に置きます。この浸透圧ストレス条件下で7日間苗を育てます。 注:重度の浸透圧ストレス時の一次根の根の成長適応を評価するには、発芽の5日後に制御された条件で成長した苗を使用して、根の分裂組織のサイズがすでに確立されていることを確認することをお勧めします13。あるいは、浸透圧ストレス作用の発生効果を決定するために、発達のすべての段階で分析を実行することができます。</li>
</ol>3. 原子間力顕微鏡(AFM)ナノインデンテーション実験
<ol><li>ナノインデンテーション実験用試料の作製 注:これは、生きた生物学的サンプルの研究にAFMを適用するための重要なステップです。サンプルは、圧痕測定中に機械的に安定するために、基板にしっかりと取り付けられている必要があります。同時に、サンプルの構造品質を維持する必要があります。AFM用の大きなサンプルを安定させるための効果的な戦略は、接着剤を使用することです。接着剤は迅速に乾燥する必要があり、周囲の媒体と有毒または反応性であってはなりません。このプロトコルでは、ポリスチレンペトリ皿を基質として使用し、非酸性シリコーン接着剤(材料表)を使用してシロイヌナズナの苗を結合しました。<ol><li>カバーガラスでシリコーン接着剤の薄層をペトリ皿に広げます。接着剤を45秒間空気中に置いておきます。</li>
		<li>ピンセットを使用して、苗を接着剤の上に置き、苗の突出した部分とカンチレバーが接触しないように方向付けます。次に、根元をシリコーン接着剤層にそっと押し付けてしっかりと結合します。プロトコルの次のステップに進む前に、苗を接着剤と45秒間接触させたままにします。</li>
		<li>添付した苗を2 μg/mLヨウ化プロピジウム(PI; 資料表)暗所で5分間、1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)溶液で3回注意深く洗浄します(材料の表)。</li>
		<li>PIインキュベートした苗を、AFMと結合した倒立蛍光顕微鏡に入れます。蛍光を観察するには、励起波長と発光波長をそれぞれ572 nmと617 nmに設定します。表皮細胞内に蛍光がないことは、根の生存能力を確認する。</li>
		<li>苗を1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)溶液で覆います。</li>
	</ol></li>
	<li>インデントプロトコル 注:室温でサンプルを支持体に固定化してから1時間以内にすべてのAFM測定を実行してください。AFMが配置されている部屋は、エアコンで25°Cに維持する必要があります。PBS溶液は同じ温度でなければなりません。<ol><li>先端がピラミッド型の標準的な窒化ケイ素カンチレバー(材料表を参照)を流体用のAFMプローブホルダー(材料表)に取り付けます。</li>
		<li>カンチレバーのレーザーを先端の位置に近づけます。次に、フォトダイオードを動かして、検出器の中央にレーザースポットを配置します。</li>
		<li>たわみ感度を校正するには、1x PBSのポリスチレンペトリ皿をAFMの下に配置します。 注: この手順は、インデントを計算するために必要です。硬い表面で力を測定する場合、表面にくぼみがないため、zスキャナーの変位の変化はカンチレバーのたわみに対応します。したがって、硬い表面でのたわみ感度を校正することは非常に重要です。柔らかい表面を使用すると、たわみ感度が過大評価され、ばね定数が低すぎます。</li>
		<li>非接触たわみが0 Vに近づくように光検出器を調整します。ランプサイズ3 μm、圧擢および収縮率0.6 μm/s、トリガーしきい値0.5 Vのインデンテーション(フォースカーブ)を実行して、たわみ感度を校正します。</li>
		<li>カンチレバーのバネ定数を校正するには、スプリング定数が約5 N / m未満のプローブに推奨されるAFMソフトウェア(材料表)のサーマルチューンユーティリティを使用するか、参考文献14で説明されている方法を使用します。ソフトウェアでサーマルチューンをアクティブにする前に、プローブがサンプルと相互作用しないことを確認してください。<ol><li>カンチレバー温度を入力します。温度調整&gt;キャリブレーションまたはナノスコープツールバーの熱調整アイコンをクリックします。周波数範囲(1〜100 Hz)を選択します。</li>
			<li>サーマルチューンパネルの[データの取得]をクリックします。AFMがデータを取得するのを待ってから、シンプルハーモニックオシレーター(流体)ボタンをクリックします。</li>
			<li>[ フィルターの幅の中央値] を 3 に調整します。 PSDビン幅 を調整して、平均化によって集録データのノイズを低減します。最初の共振ピークの周囲にフィット境界を設定します。</li>
			<li>[ ばね定数kの計算]をクリックし、ポップアップウィンドウで[ はい ]をクリックして、ユーザーがこの値を使用するかどうかを尋ねます。</li>
			<li>上記の手順を3回繰り返し、手動でばね定数値の平均を取得します。この平均値を、PicoForce ビューの [ランプ] パラメータ リストの [ばね定数] ボックスに入力します。キャリブレーションはこの時点で終了します。</li>
		</ol></li>
		<li>接眼レンズ倍率10倍、20倍、および40倍の倒立光学顕微鏡を使用して、AFMプローブを一次根の第4の細長い表皮細胞の表面に配置し、細胞の中心に配置するようにします。</li>
		<li>計算されたばね定数値(ステップ3.2.5.5)を使用して、ランプサイズが3 μm、トリガーしきい値が11 nN、および選択したポイントでの圧痕および収縮率が0.6 μm/sの力曲線を取得します。 注:以前の研究15,16では、押し込みと収縮の頻度が低いと、ヒステリシスと抗力を最小限に抑えるのに役立つことがわかりました。</li>
		<li>各処理について、根ごとに3つの細胞から力曲線を取得します(処理ごとに3つの生物学的複製を使用します)。各ルートの少なくとも150の力曲線をキャプチャします。</li>
	</ol></li>
</ol>4.見かけのヤング率を測定します
<ol><li>各力曲線をピラミッド圧子17の次のモデルに適合させます: <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/63533/63533eq01.jpg" style="margin: auto;">ここで、 E はサンプルの見かけのヤング率、 <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/63533/63533eq02.jpg" style="margin: auto;"> α はサンプルのポアソン係数、頂点に対する半角です。相関係数(r2)が0.99&lt;当てはめを破棄します。完全に非圧縮性材料のポアソン比= <img alt="Equation 2" src="/files/ftp_upload/63533/63533eq02.jpg" style="margin: auto;"> 0.5と、メーカーによって与えられた圧子の形状を考えてみましょう。 注: 荷重曲線の接触点から最初の100 nmを使用して、フィッティングが細胞壁の力学にできるだけ敏感になり、見かけのヤング率値に対する膨圧の影響を減らします8。フィッティングは、荷重曲線の接触点から特定のくぼみの深さを設定できるカスタムMATLABプログラム(J.C.Bへの書き込みによる個人的な要求に応じて利用可能)を使用して行われました。</li>
	<li>見かけのヤング率データを使用して正規化されたヒストグラムを作成し、ガウス分布に適合させます。95%信頼区間外のデータポイントを破棄し、ヒストグラムとガウス適合値の両方を再計算します。見かけのヤング率の平均と標準偏差を計算して報告します。</li>
	<li>ANOVAのような多重比較検定によってグループ間の比較の有意性を判断します。</li>
</ol>

<ol><li>Anderson, C. T., Kieber, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+construction%2C+perception%2C+and+remodeling+of+plant+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Plant+Biology%22%5BJournal%5D)">Dynamic construction, perception, and remodeling of plant cell walls.</a> Annual Review of Plant Biology. 71, 39-69 (2020).</li>
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<li>Peaucelle, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AFM-based+mapping+of+the+elastic+properties+of+cell+walls%3A+At+tissue%2C+cellular%2C+and+subcellular+resolutions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">AFM-based mapping of the elastic properties of cell walls: At tissue, cellular, and subcellular resolutions.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (89), e51317(2014).</li>
<li>Peaucelle, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pectin-induced+changes+in+cell+wall+mechanics+underlie+organ+initiation+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Pectin-induced changes in cell wall mechanics underlie organ initiation in Arabidopsis.</a> Current Biology. 21 (20), 1720-1726 (2011).</li>
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</ol>

著者には利益相反はありません。データのフィッティングに使用されるMATLABスクリプトは、個人的な要求に応じてJ.C.Bに書面で入手できます。

細胞および細胞壁の力学は、力学が成長プロセスにどのように影響するかについての洞察を得るためにますます関連性が高まっています。物理的な力が固体組織内でかなりの距離にわたって伝播するにつれて、細胞壁の物理的特性の変化と、それらがどのように感知され、制御され、調整され、植物の成長に影響を与えるかの研究は、重要な研究分野になりつつあります2,3,8。
ここでは、シロイヌナズナの根の伸長帯における細胞の細胞壁物性を調べる方法を紹介します。AFM技術は、根の成長における細胞壁の物理的特性の影響を理解するために、成長率研究などの他の技術と容易に組み合わせることができる。
最も重要な実験ステップの1つは、サンプルの機械的固定化です。サンプルは、インデント中のサンプルの移動を避けるためにしっかりと取り付けられている必要があります。シリコーン接着剤の層は、すばや...

植物細胞は、細胞の種類や成長段階に応じて厚さが0.1から数μmまで変化する多糖類、タンパク質、代謝物、水の相互作用ネットワークで構成される複雑な構造である細胞壁に囲まれています1,2。細胞壁の機械的特性は、植物の成長に不可欠な役割を果たします。細胞壁の低い剛性値は、細胞増殖と細胞壁拡張の前提条件として提案されており、すべての細胞がその機能を実行するために機械的な力を感知するという証拠が増えています。しかし、細胞壁の物理的性質の変化が細胞の運命を決定するかどうかはまだ議論されています2,3,4。植物細胞は発生中に動かないため、臓器の最終的な形状は、細胞がどれだけ遠く、どの方向に拡大するかによって異なります。したがって、シロイヌナズナの根は、根の異なる領域で異なるタイプの増殖が起こるため、細胞増殖における細胞壁の物理的特性の影響を研究するための優れたモデルです。例えば、異方性拡大は伸長帯において、特に表皮細胞5において顕著に顕著である。
ここで説明した方法は、倒立蛍光位相顕微鏡6と組み合わせた原子間力顕微鏡(AFM)を使用して、生きているシロイヌナズナの根のナノスケールでの表皮細胞の細胞壁の物理的特性を特徴付けるために使用されました。AFM技術の広範な改訂については、7,8,9を読んでください。
このプロトコルは、植物細胞壁のAFMベースの弾性測定のための基本的なサンプル調製方法と一般的な方法を概説しています。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/63533/63533fig01v2.jpg"> 図1:原子間力顕微鏡(AFM)を用いたシロイヌナズナの根の力押し込み実験の概略図。このスキームは、根のサンプルをしっかりと固定するための基質の準備(1-2)、ヨウ化プロピジウム染色による根の生存率の確認(3)、一次根の細長い表皮細胞の表面へのカンチレバーの位置決め(4-5)、力曲線の測定(6)、および見かけのヤング率を計算するための力曲線処理(7-8)からの力-押し込み実験の手順の概要を示しています。EZ:伸びゾーン。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/63533/63533fig01largev2.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>

<table><tbody><tr><td>1 x リン酸緩衝生理食塩水(PBS)</td><td></td><td></td><td>塩化ナトリウムとリン酸緩衝液を含み、浸透圧ショックを防ぎ、生細胞の水分バランスを維持するために配合されています。</td></tr><tr><td>AFMソフトウェア</td><td>Bruker, Billerica, MA, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>原子間力顕微鏡(AFM)</td><td>BioScope Catalyst, Bruker, Billerica, MA, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Catalyst プローブホルダー-流体</td><td>Bruker, Billerica, MA, USA</td><td>CAT-FCH</td><td>Bioscope Catalyst用のプローブホルダーで、接触モードまたはタッピングモードでの流体操作用に設計されています。&nbsp;エアー操作にも対応。</td></tr><tr><td>極低温浸透圧計; model OSMOMAT 030</td><td>Gonotech, Berlin, Germany</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Murashige &Skoog Medium</td><td>Duchess Biochemie</td><td>M0221</td><td>Original concentration, (1962)</td></tr><tr><td>Optical inverted microscope coupled to the AFM</td><td>Olympus IX81, Miami, FL, USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PEGAMIL</td><td>ANAEROBICOS S.R.L., Buenos Aires, Argentina</td><td>100429</td><td>中性、非酸性シリコーン接着剤</td></tr><tr><td>ペトリ皿</td><td>Deltalab</td><td>200201.B</td><td>ポリスチレン、55 x 14 mm、放射線滅菌。</td></tr><tr><td>ヨウ化プロピジウム</td><td>Sigma</td><td>P4170</td><td>根の生存率試験用。</td></tr><tr><td>窒化ケイ素プローブ、DNP-10、カンチレバーA</td><td>Bruker、Billerica、MA、USA</td><td>DNP-10/A</td><td>液体運転における力変調顕微鏡用。プローブ先端半径は20-60nmです。175-&mu;m-long三角カンチレバー、&nbsp;ばね定数は0.35N/mです。</td></tr><tr><td>ピンセット</td><td>Σ</td><td>T4537</td><td></td></tr></tbody></table>

生きた シロイヌナ ズナ根の表皮細胞の物性を調べる原子間力顕微鏡

Atomic Force Microscopy to Study the Physical Properties of Epidermal Cells of Live Arabidopsis Roots

ここでは、原子間力顕微鏡(AFM)と光学倒立蛍光顕微鏡を組み合わせたナノインデンテーションにより、生きているシロイヌナズナの根の表皮細胞の細胞壁の物理的特性を特徴付ける方法について説明します。この方法は、サンプルの変形を測定しながら制御された力を加えることで構成され、細胞壁の見かけのヤング率などのパラメータを細胞内分解能で定量化できます。サンプルの慎重な機械的固定化と、圧子とくぼみの深さの正しい選択が必要です。外部組織でのみ使用できますが、この方法は、発生中の植物細胞壁の機械的変化を特徴付けることを可能にし、これらの微視的変化と臓器全体の成長との相関を可能にします。

フォースインデンテーション実験 次のテキストは、プロトコルが適切に実行されたときに予想される典型的な出力を示すために、フォースインデント実験を実施したときに予想されるいくつかの結果を示しています。
力-変位曲線 根伸長ゾーンの細胞の中心に配置された位置で生きたサンプルをインデントして得られた代表的な力押し込みプロットを 図2に示します。AFMチップが細胞壁の表面をくぼみ始めると、変形に対する細胞壁の反対のために力が増加し始めます( 図2Aの1で示されています)。力(荷重)の増加は、最大力値に達するまで続きます( 図2Aの2で示されています)。この時点以降、インデントのアンロード部分が始まります。
<p class="jove_content biglegend" fo:keep-together.within-page...

原子間力顕微鏡インデンテーションプロトコルは、正常または制約された成長中(すなわち、水不足下)の組織または器官の特定の細胞の細胞壁の物理的特性の役割を解剖する可能性を提供する。

A method is described here to characterize the physical properties of the cell wall of epidermal cells of living Arabidopsis roots through ...

この方法は、発生中の植物細胞壁の物理的性質の変化を定量化し、この微視的変化を器官全体の成長に関連付けることを可能にする。この技術の主な利点は、侵襲的ではなく、細胞壁の物理的特性のin vivo定量化を可能にする治療を必要とせず、細胞内分解能を比較的迅速に追加できることです。まず、シリコン接着剤の薄層をカバースリップでペトリ皿に広げ、45秒間空中に置いておきます。ピンセットを使用して、苗を接着剤の上に置き、苗の突出した部分とカンチレバーが接触しないように方向を向けます。次に、根元をシリコーン接着剤層にそっと押し付けてしっかりと結合します。45秒間そのままにして、1X PBSソリューションを追加します。ピラミッド型の先端を持つ標準の窒化ケイ素カンチレバーを流体用のAFMプローブホルダーに取り付け、カンチレバーのレーザーを先端の位置に近づけます。次に、フォトダイオードを動かして、検出器の中央にレーザースポットを配置します。ランプサイズ3マイクロメートル、インデントおよびリトラクションレート0.6マイクロメートル/秒、トリガーしきい値0.5ボルトのインデントを実行して、たわみ感度を調整します。プローブがサンプルと相互作用していないことを確認し、カンチレバーのスプリング定数を校正します。サーマルチューンユーティリティを使用して、キャリブレーションをクリックしてからサーマルチューンをクリックするか、ナノスコープツールバーのサーマルチューンアイコンをクリックして、カンチレバーの温度を入力します。周波数範囲を選択したら、サンプル高調波発振器流体ボタンをクリックします。次に、サーマルチューンパネルで取得したデータをクリックします。次に、フィルターの中央値の幅を3に調整します。PSDのビン幅を調整して、平均化して集録データのノイズを低減し、最初の共振ピークの周囲にフィット境界を設定します。[ばね定数Kの計算]をクリックし、ポップアップウィンドウで[はい]をクリックして、ユーザーがこの値を使用するかどうかを尋ねます。接眼レンズ倍率の10倍、20倍、40倍の倒立光学顕微鏡を使用して、AFMプローブを一次根の第4の細長い表皮細胞の表面に配置して、細胞の中心に配置するようにします。以前に計算されたばね定数値を用いて、3マイクロメートルのランプサイズ、11ナノニュートンのトリガーしきい値、および選択された点で毎秒0.6マイクロメートルの圧痕および収縮率を有する力曲線を得た。各処理について、根ごとに3つの細胞から力曲線を取得し、各根について少なくとも150の力曲線をキャプチャします。このプロットは、根の伸長ゾーンのセルの中心に位置するライブサンプルに対して力のくぼみ実験を行った場合に予想される結果を示しています。AFM先端がへこみ始めると、細胞壁の表面は、名誉毀損に対する細胞壁反対のために力が増加し始める。力の増加は、最大力の値に達するまで続きます。この時点以降、インデントのアンロード部分が始まります。力はくぼみ部分の放物線に続いて大きくなりますが、これは計算に使用されるピラミッド型圧子の予測モデルに各曲線を当てはめるために重要です。フィットパラメータとして、接触点の位置は圧痕前のセル壁表面に対応している必要があり、AFMチップ変位の原点と見なされます。くぼみを破棄する前に接触点を検出できない力曲線。さらに、力圧痕実験の荷重および除荷曲線にはノイズがないものでなければなりません。各力曲線をモデルに当てはめた後、得られた見かけのヤング率の値の頻度の分布を示すヒストグラムを得た。このヒストグラムは、対照条件で成長したコロンビアゼロの3つの異なる植物の9つの異なる細胞に対する201個の成功したくぼみのセットで得られた頻度を示しています。根の形態のために、一部の遺伝子型ではインデントが難しい場合があります。例えば、TTL1PRC 1-1二重変異体は重度の浸透圧ストレス下で増殖する。これらのヒストグラムは、9つの異なるセルから得られた見かけのヤング率の値の確率分布を示しています。1つのセルに対応するヒストグラムHのみをガウス分布に適合させることができます。ここに提示された金属は、増殖速度の研究や細胞壁の化学組成の分析などの他の技術と組み合わせることができます。これらの他の技術は、細胞壁の物理的特性に関する化学組成が臓器の成長にどのように影響するかを理解するための情報をさらに補完します。

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

我々は、気孔の分化を文書化、開発の数日間にわたって表皮の共焦点イメージングのための植物の子葉を固定化するためにチャンバースライドやメディアを使用してプロトコルを記述します。フルオロフォアタグ付きタンパク質は、細胞分裂や細胞型分化の過程でそれらの可能な役割の理解を深め、表現と細胞内局在によって動的に追跡することができます。...

の長期、高分解能共焦点タイムラプスイメージング<em&gt;シロイヌナズナ子葉</em発芽過程&gt;表皮

原子間力顕微鏡(AFM)を使用して植物組織の機械的特性をマッピングする方法を記述します。私たちは、広視野メソスケールで植物の発生過程で細胞壁に起こる力学的変化をいかに記録し、これらの変化を成長や形態形成と相関させるかに焦点を当てています。...

細胞壁の弾性特性のAFMベースのマッピング：ティッシュ、携帯電話、および細胞内の解像度で

このプロトコルの目的は、気孔複合体の細胞皮質内に、GFPタグPATROL1、膜輸送タンパク質のドットを点滅示す可変角度落射蛍光顕微鏡で植物細胞表面上の蛍光標識タンパク質のダイナミクスを監視する方法を示すことですシロイヌナズナ 。...

可変角度落射蛍光顕微鏡を用いて植物細胞表面ダイナミクスのリアルタイムイメージング

結晶性セルロースは、植物の細胞壁の重要な構成要素です。しかし、細胞分解能での定量化は技術的に困難です。...

結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;ルーツは、組織特異的な細胞壁の変更を監視します

この資料は、主根と 1 つの光学的平面に根毛を閉じ込めた 2...

二層流体プラットフォームシロイヌナズナ実生の根毛の形態のイメージング

ここでは、細胞や組織に対してナノ・マイクロインデントツールとして動作する原子力顕微鏡(AFM)を紹介する。器械はサンプルの3D表面の地形および細胞壁ヤングの係数およびターゴール圧力を含む機械特性の同時獲得を可能にする。...

原子間力顕微鏡を用いて植物細胞と植物組織の機械的特性とターゴール圧を測定

ここでは、細胞内の細胞骨格を撮影する上皮状の微小管細胞骨格を生細胞イメージングするためのプロトコルを説明し、物理的な力の変化に対する応答を監視する。...

ミクロチューブ細胞骨格の生細胞イメージングと シロイヌナズナの 微小機械的操作

細胞壁バイオメカニクスの研究は、植物の成長と形態形成を理解するために不可欠です。原子間力顕微鏡を用いて、若い植物器官の内部組織における薄い一次細胞壁を調べるために、以下のプロトコルが提案されている。...

原子間力顕微鏡を用いた生きた植物器官の初代細胞壁の力学特性評価

この論文では、気孔の発達を制御する遺伝子を特徴付けるために、表皮剥離を使用しない2つの表現型法について説明します。最初の方法は、トルイジンブルーO染色植物表皮を使用して気孔表現型を分析する方法を示しています。2番目の方法は、気孔リガンドを同定し、それらの生物学的活性を監視する方法を説明する。...

表皮表現型スコアリング による 気孔発生に関与する遺伝子の同定

ここでは、原形質膜受容体キナーゼの膜輸送イベントを研究するために、一般的に使用されるいくつかの方法を紹介します。この原稿では、植物材料の調製、薬理学的処理、共焦点イメージングのセットアップなど、詳細なプロトコルについて説明しています。...

気孔系譜細胞における膜輸送事象を研究するための画像ベースの手法

このプロセスは、シ ロイナ ナの蛍光標識核およびクロマチンマーカーラインと共焦点顕微鏡を用いて、シロイ ナナ...

シロイナ根における発生および環境ストレスにおける核形状とクロマチン動態の定量的ライブセルイメージング

学ぶ原子間力顕微鏡による非侵襲的な植物細胞壁の物性測定法。シロイヌナズナの根表皮細胞を用いて、成長過程における細胞壁の弾性率変化を定量化し、器官全体の成長と関連付けることができます。

生きたシロイヌナズナ根の表皮細胞の物性を調べる原子間力顕微鏡

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生きた シロイヌナ ズナ根の表皮細胞の物性を調べる原子間力顕微鏡

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