Name: エンテロイド由来単分子膜を用いた早産小腸障害および治癒の in vitro モデルに対するヒアルロン酸35 kDaの効果 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-07-28T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 36 s
Description: 学ぶエンテロイド由来単分子膜を用いたスクラッチ創傷アッセイによる早産小腸再生の可視化法。ヒアルロン酸35kDaの効果をリアルタイムで観察し、腸管治癒メカニズムを解明する生理学的モデルを提供します。

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この内容は著者の責任であり、必ずしも国立衛生研究所の公式見解を表すものではありません。HCは、国立衛生研究所からの助成金P20GM134973によってサポートされています。KBは、小児病院財団(CHF)と長老派健康財団(PHF)の助成金によってサポートされています。Cancer Functional Genomicsコアが提供する生細胞イメージングサービスは、オクラホマ大学健康科学センタースティーブンソンがんセンターに授与された国立総合医学研究所の助成金P20GM103639および国立がん研究所の助成金P30CA225520によって部分的にサポートされました。

この研究のすべての動物の手順は、オクラホマ大学健康科学センターの施設動物管理および使用委員会によって承認されました。施設の承認に続いて、早産の非ヒト霊長類(NHP、妊娠90%、オリーブヒヒ、 パピオアヌビス)からの胎児小腸便宜サンプルが、別の研究のために安楽死後に取得されました(プロトコル#101523-16-039-I)20。
1. 早産非ヒト霊長類3次元腸管エンテロイドの樹立
<ol><li>メディアの準備 注:培地は、標準的な無菌技術に従って、陰窩分離の1週間前までに調製できます。ペニシリン/ストレプトマイシン(最終濃度1%)は、必要に応じて、初代細胞用の広域スペクトル抗生物質の代わりに使用できます。<ol><li>ヒトオルガノイド増殖培地+ Y-27632(HOGMY)を調製し、50 mLのオルガノイド増殖培地とヒト基礎培地50 mLを混合します(材料の表)。200 μLの広域抗生物質(最終濃度100 μg/mL)(材料表)とY-27632(最終濃度10 μMまで)を加えます。ベンチトップで室温まで温めます。</li>
		<li>50 mLのオルガノイド増殖培地とヒト基礎培地50 mLのオルガノイドサプリメントを混合することにより、ヒトオルガノイド増殖培地(HOGM)を調製します。200 μLの広域抗生物質(100 μg/mL)を追加します。ベンチトップで室温まで温めます。 注意: HOGMは、通過後最初の2〜3日を超えてメディアを交換する場合に使用されます。</li>
		<li>カルシウムまたはマグネシウムを含まない1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)100 mLを氷冷するまで冷やします。</li>
		<li>カルシウムまたはマグネシウムを含まない1x PBSと0.1%ウシ血清アルブミン(BSA)を組み合わせて、50 mLの洗浄バッファーを調製します。氷が冷えるまで冷やします。</li>
		<li>500 mLのDMEM/F12(ダルベッコ改変イーグル培地/栄養ハム混合物F12 + 15 mM HEPESバッファー)に1 mLの広域抗生物質(100 μg/mL)を加えて、DMEM-F12洗浄バッファーを調製します。氷冷に保ちます。</li>
	</ol></li>
	<li>クリプト分離とメッキ 注:細胞外マトリックス(ECM)ベースのヒドロゲルは、手順全体を通して氷上に残しておく必要があります。この手順は、6つのECMベースのヒドロゲルドームに留置するのに十分な組織を想定しています。異なる密度の陰窩が収穫された場合は、それに応じてドーム番号を変更する必要があります。<ol><li>150 μLの成長因子還元(GFR)基底膜抽出物(BME)(フェノールレッドフリー)を2〜8°Cの氷上で一晩解凍します。</li>
		<li>24ウェル平底組織培養処理ポリスチレンプレートをインキュベーター内で37°C、5%CO2 で最低30分間インキュベートします。</li>
		<li>NHP安楽死と組織採取に続いて、使い捨てペトリ皿で氷冷した1x PBSを使用して、1,000 μLのピペットチップで回腸部の破片を洗い流します。 注:健康なエンテロイドを収穫するには、新鮮な組織を迅速に採取し、氷冷に保つ必要があります。</li>
		<li>回腸を腸全体に沿って縦方向に切断し、氷冷PBSで3回洗浄します。チューブに最も近い回腸セグメントの部分から始めて、15 mLの氷冷PBSを含む50 mLのコニカルチューブ上で滅菌ハサミで組織を小さな断片(長さ約2 mm)にミンチします。</li>
		<li>10 mLの血清学的ピペットを使用して、5〜10倍上下にピペッティングして陰窩を破壊します。組織セグメントをチューブの底に沈降させてから、上清を取り除き、新鮮で氷のように冷たいPBSと交換します。上清が透明で破片がなくなるまで、このプロセスを最低7x〜10x繰り返します。</li>
		<li>透明になったら、上清を取り除き、陰窩を25 mLの細胞解離試薬に再懸濁します。チューブを20rpmのロッキングプラットフォームに室温で15分間置きます。</li>
		<li>ロッカーからチューブを取り外し、細胞を約30秒から1分間沈降させ、上清を取り除きます。10 mLの氷冷洗浄バッファーを追加します。p1000ピペットで上下にピペットし、さらに単一の陰窩に解離します。</li>
		<li>組織を70 μmのセルストレーナーを通して新しい50 mLコニカルチューブにろ過します。元の50 mLコニカルチューブを10 mLの氷冷洗浄バッファーですすぎ、70 μmストレーナーでろ過して、すべての陰窩が元のチューブから除去されていることを確認します。この組織の洗浄を合計4回繰り返します。</li>
		<li>ろ液を300 x g で4°Cで5分間遠心分離し、上清を除去します。600 μLのHOGMYを加え、200 μLのピペットで上下にピペッティングしてペレットを破壊します。溶液が氷のように冷えるまでチューブを氷の上に置きます。 注意: 溶液が氷冷でない場合、ドームはメッキ時に適切な構造を維持しません。ECMベースのヒドロゲルドームをピペッティングするときは、気泡がプレート底部への適切な付着を妨げるため、気泡の導入は避けてください。</li>
		<li>600 μLの氷冷ECMベースのヒドロゲルを加えてセルペレットを懸濁し、200 μLのピペットでよく混ぜます。</li>
		<li>インキュベーターから24ウェルプレートを取り出し、37°Cプレートウォーマーの上に置きます。氷冷したHOGMY/ECMベースのヒドロゲル混合物50 μLを、24ウェル培養プレートの24ウェルの中央にピペットで入れます(ドームあたり50 μL)。</li>
		<li>メッキしたら、ドームを37°Cのプレートウォーマーに1分間置き、プレートの底に密着させます。プレートを慎重に反転させ、プレートの底に結露が蓄積していないことを確認し、反転プレートを37°Cおよび5%CO2のインキュベーターに入れます。</li>
		<li>15分後、プレートを裏返し、750 μLの室温HOGMYを各ウェルにピペットで入れます。 注:新しく形成された3D ECMベースのヒドロゲルドームを破壊しないように注意しながら、培地をウェルの側壁にゆっくりとピペットで入れます。</li>
		<li>すべてのウェルが培地で満たされたら、プレートをインキュベーターに入れ、750 μLのHOGMで3日ごとに培地を交換します。7〜10日ごとにエンテロイドを通過します。</li>
	</ol></li>
	<li>腸腸継代 注:以下のプロトコルは、NHPエンテロイドを1:2の分割速度で含む1枚の24ウェル培養プレート用です。<ol><li>エンテロイドを含むECMドームを破壊しないように注意しながら、各ウェルからエンテロイド培地を除去し、1,000 μLのピペットを使用して500 μLの氷冷細胞解離試薬を各ウェルに加え、室温で1分間インキュベートします。</li>
		<li>8〜12倍にピペッティングしてECMを手動で中断します。12ウェルの内容物を1本の15 mLコニカルチューブに移します。</li>
		<li>24ウェル培養プレートからすべての溶液を回収したら、250 μLの細胞破壊試薬を各ウェルに追加して、すべてのNHPエンテロイドが各ウェルから除去されたことを確認し、この最後のすすぎを既存の15 mLコニカルチューブに追加します。</li>
		<li>室温(20°C)で15分間、40rpmのロッキングプラットフォームに置きます。または、チューブを室温で15分間手動で振ってください。</li>
		<li>15分後、300 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 ペレットだけが残るまで、15 mLチューブから上清を取り除きます。</li>
		<li>8 mLの氷冷DMEM +広域抗生物質を1本の15 mLコニカルチューブに加え、ペレットが十分に破壊されていることを確認します。300 x g で4°Cで5分間遠心分離し、上清を廃棄します。</li>
		<li>600 μLのHOGMYを加え、1,000 μLのピペットで上下にピペッティングしてペレットを破壊します。溶液が氷のように冷えるまでチューブを氷の上に置きます。溶液が氷冷になったら、600 μLの氷冷ECMを加えて細胞ペレットを懸濁し、1,000 μLのピペットでよく混ぜます。手順 1.3.2.-1.3.7 を繰り返します。残りの12ウェル用。<ol><li>残りの手順については、手順 1.2.11.-1.2.16 を参照してください。</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>2. 腸状単分子膜および引っかき傷アッセイの確立
<ol><li>培地と治療の準備<ol><li>カルシウムまたはマグネシウムを含まないPBS5mLを氷冷するまで冷やします。</li>
		<li>500 mLのDMEM/F12(ダルベッコ改変イーグル培地/栄養ハム混合物F12 + 15 mM HEPESバッファー)に1 mLの広域抗生物質(100 μg/mL)を加えて、DMEM-F12洗浄バッファーを調製します。氷冷に保ちます。</li>
		<li>手順1.1.1で説明されているように、100 mLのHOGMYを準備し、ベンチトップで室温まで温めます。</li>
		<li>25 mLの0.25%トリプシン-エチレンジアミン四酢酸(EDTA)を37°Cの水浴中で温めます。</li>
		<li>カルシウムまたはマグネシウムを溶媒として使用しない滅菌PBSを使用して、細胞処理用に50 μg/mL、100 μg/mL、および200 μg/mLの濃度のHA35を調製します。HA35の最終希釈では、溶媒としてHOMGYを使用します。 注:HA35は5 mg / mLを超える濃度で溶液から出てくることが多いため、HA35製剤にはいくつかの希釈が必要になる場合があります。</li>
	</ol></li>
	<li>腸状単分子膜形成 注:次の手順では、腸状単層の24ウェルプレートを1枚生成するのに十分な容量が得られます。必要な単層数に合わせて音量を調整します。<ol><li>96 μLのECMベースのヒドロゲルBME(フェノールレッドフリー)を氷上で2〜8°Cで一晩解凍します。 ECMベースのヒドロゲルをカルシウムまたはマグネシウムを含まない氷冷PBSで1:50の比率で希釈します。24ウェル組織培養プレートの各ウェルに、200 μLの氷冷希釈ECMベースのヒドロゲルをコーティングします。</li>
		<li>ECMベースのヒドロゲルコーティングプレートを37°Cおよび5%CO2で最低1時間インキュベートします。単層用の3Dエンテロイドを含む24ウェル培養プレートから培地を吸引し、500 μLの細胞解離試薬/ウェルと交換します。</li>
		<li>ECMベースのヒドロゲルドームを8x〜12xピペッティングして手動で破壊し、12ウェルの内容物を15 mLのコニカルチューブに移します。</li>
		<li>12個の空のウェルを250 μLの細胞解離試薬で洗浄し、すべてのエンテロイドが除去されたことを確認し、内容物を15 mLのコニカルチューブに移します。手順 2.2.5 を繰り返します。およびステップ 2.2.6.残りの12ウェルについては、第2の15mLコニカルチューブを使用した。</li>
		<li>コニカルチューブを300 x g で4°Cで5分間遠心分離し、上清を廃棄します。10 mLの氷冷DMEM-F12洗浄バッファーを15 mLコニカルチューブに加え、チューブを反転させて腸内ペレットを懸濁します。300 x g で4°Cで5分間遠心分離します。</li>
		<li>上清を除去し、細胞ペレットを12 mLの37°Cトリプシン-EDTAに再懸濁した。チューブを37°Cの水浴に10分間、または細胞が溶解するまで入れます。3 mLのDMEM-F12洗浄バッファーを各チューブに加えてトリプシン-EDTAを希釈し、チューブを反転させて混合し、氷上に置きます。</li>
		<li>解離したエンテロイドを37 μMメッシュのセルストレーナーでろ過し、内容物をきれいな15 mLコニカルチューブに集めます。チューブを300 x g で4°Cで5分間遠心分離します。</li>
		<li>細胞が遠心分離機でペレット化している間に、ECMベースのヒドロゲルコーティングされたプレートをインキュベーターから取り出し、コーティングされた表面を傷つけたり、プレートを完全に乾燥させたりすることなく、余分なECMベースのヒドロゲル溶液を吸引します。</li>
		<li>コニカルチューブから上清を取り除き、細胞ペレットを6 mLのHOMGYで再懸濁します。合わせた12 mL HOMGY細胞懸濁液を、ECMベースのヒドロゲルでコーティングした24ウェルプレートの各ウェルに、約3 x 105 細胞/ウェルの播種密度で500 μL加えます。蓋をしてプレートを回転させ、ウェル内の細胞が均一に分布するようにします。</li>
		<li>プレートを37°Cおよび5%CO2でインキュベートし、 単層が&gt;90%コンフルエントに達するまで2日ごとにHOMGY培地を交換します。</li>
	</ol></li>
	<li>単層治療と引っかき傷アッセイ<ol><li>単層が&gt;90%のコンフルエントに達したら、培地を吸引して、付着していない細胞を除去します。細胞を500 μLのHA35(50 μg/mL、100 μg/mL、200 μg/mL)またはPBSで24時間処理します。</li>
		<li>24時間後、単層の表面を乱さないように注意しながら、メディアを取り外します。200 μLのピペットチップを使用して、単層が乾かないように注意しながら、各ウェルの単層の全面直径全体に直線状の引っかき傷を作ります。</li>
		<li>傷のある単層を500 μLの1x PBSで1回洗浄します。HOMGYに溶解したHA35(50 μg/mL、100 μg/mL、200 μg/mL)またはPBSを500 μL加え、プレートを37°Cおよび5%CO2インキュベーター内の生細胞分析装置(材料表)に移します。</li>
		<li>生細胞解析ソフトウェア(材料表)のスケジュールアイコンの下で、新しい船舶の追加ウィザードの起動アイコンをクリックし、スケジュールに従ってスキャンするスキャン頻度を設定します。スキャンタイプで新しいホールウェル容器を作成し、スキャン設定(つまり、画像チャンネルのフェーズと対物レンズの4倍)を指定して、[次へ]をクリックします。</li>
		<li>表示されたリストからプレートの製造元とカタログ番号を選択します。 [スケジュール] アイコンの下で、生細胞分析装置内でプレートを配置するプラス記号を選択します。目的の スキャンパターンを選択し、プレートレイアウトページで「+」を選択してプレートマップを作成します。 分析を後で延期するを選択し、4時間ごとに24時間スキャン スケジュール を設定し、 船舶ウィザードの概要 ページで取得設定を確認します。最後に、[スケジュールに追加] を選択します。</li>
		<li>24アッセイが完了したら、 Viewアイコンの下で容器 名をダブルクリックし、画像と動画をエクスポートします。ウェルと一連の画像を選択して表示し、JPEG として書き出します。ステップ2.4に従って、ImageJ21の創傷治癒サイズプラグインを使用して、創傷治癒率について画像を分析します。以下に。</li>
	</ol></li>
	<li>引っかき傷解析<ol><li>ImageJソフトウェアを開きます。引っ掻き傷アッセイ画像をアップロードします(.TIFF または .JPG)。</li>
		<li>画像を 24 ビット RGB から 8 ビットに変更するには 、[イメージ&gt;タイプ] &gt; [8 ビット ] を選択します。 [プラグイン] &gt; [マクロ] &gt;を選択して [創傷治癒サイズプラグインをインストールする] を選択して&gt;創傷治癒サイズプラグインをインストールします。</li>
		<li>スクラッチが垂直になるように画像を回転させ、創傷治癒サイズツールプラグインを初期化します。</li>
		<li>ダイアログボックスでプラグインパラメータを選択して、傷傷に最もフィットします。創傷治癒サイズオプションのパラメータの値を次のように設定します:分散ウィンドウ半径を20、「しきい値」を100、「飽和ピクセルの割合」を0.001に設定し、「スケールグローバルを設定」で「はい」を選択します。[OK]ボタンをクリックして選択を確定します。選択した領域が創傷領域であるかどうかを確認します。上記のパラメータは、ラボ間で標準化が必要な場合があります。</li>
		<li>手順 2.4.2.-2.4.4 を繰り返します。各スクラッチの残りの時間ポイント。</li>
		<li>以下のように、24時間にわたる遊走または増殖細胞の創傷治癒の引っかき傷領域創傷治癒の割合を計算する: %創傷治癒= <img alt="Equation 1" src="/files/ftp_upload/63758/63758eq01.jpg" style="margin: auto;"> ここで、T 0 = 時間 0 時間の面積 %、および Tc = 0 時間、4 時間、12 時間、または 24 時間の面積の割合。</li>
	</ol></li>
</ol>

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著者は開示するものはなく、利益相反もありません。

早産児の胃腸管は、嚥下障害、炎症性細菌代謝物および毒素、および断続的低酸素症に関連する環境侮辱への繰り返し曝露による継続的な再生圧力下にあります23,24。残念ながら、早産児の腸上皮は機能的完全性を迅速に確立することができず23、バリア機能障害、腸透過性の増加、そして重症の場合、横行する腸の炎症とNECの発症をもたらします。
グリコサミノグリカン(GAG)は、母乳に多く見られる多糖類の一種であり、NEC15,16の発症から保護する可能性のある生理活性因子です。HAは、ヒアルロン酸合成酵素によって産生されるグルクロン酸とN-アセチルグルコサミン25,26の繰り返し二糖類の直鎖状ポリマーです...

壊死性腸炎(NEC)は、早産児の最も一般的な胃腸緊急事態の1つです1。この疾患は、腸壊死、敗血症、および潜在的に死に至る可能性のある重度の腸の炎症を特徴としています。病因は不明ですが、証拠はNECが多因子性であり、摂食、異常な細菌コロニー形成、および未熟な腸上皮の複雑な相互作用の結果であることを示唆しています2,3。早産児は、腸透過性の増加、異常な細菌コロニー形成、および低い腸細胞再生能力4,5を有し、腸管バリア機能障害、細菌転座、およびNEC発症のリスクを高めます。したがって、腸上皮の成熟を促進し、腸上皮の再生または治癒を促進するための戦略または介入を特定することは、この致命的な病気を予防する上で重要です。
研究によると、母乳(HM)は早産児のNECに対して保護的であることが示されています6、7、8、9、10、11。ヒトと動物の両方の研究は、ウシベースの処方が腸透過性を増加させ、腸上皮細胞に直接毒性があることを示しました2,12。完全には解明されていませんが、HMの保護効果は、ラクトフェリン、免疫グロブリンA(IgA)、HMオリゴ糖などの生理活性成分を介して媒介されることを示唆する証拠があります13。HMはまた、D-グルクロン酸とN-アセチル-D-グルコサミン二糖を繰り返す独特の非硫酸化グリコサミノグリカンであるヒアルロナン(HA)も豊富です14,15。重要なことに、マウスNEC様腸損傷モデルにおいて、HM HA模倣体である経口35 kDaHA(HA35)が腸損傷の重症度を減弱させ、細菌の転座を防ぎ、死亡率を低下させることを示した16,17。
ここでは、in vitroでの腸の治癒と再生に対するHA35の効果をさらに調査します。現在、腸の創傷および修復のために最も広く使用されているin vitroアッセイは、結腸直腸癌(CRC)細胞単層において行われる引っかき傷アッセイである。CRC細胞の創傷修復は、幹細胞駆動の修復プロセスではなく、癌細胞の高度に増殖する性質に大きく依存しているため、早産児腸に対するそのようなモデルの生理学的関連性は限られています18。この制限を克服するために、早産の非ヒト霊長類(NHP)から初代幹細胞由来の小腸エンテロイドを単離および維持する手順を含む、2D腸介スクラッチ創傷モデルの確立をここで説明する。早産NECが遠位小腸で最も頻繁に報告されていることを考えると、腸の損傷と修復のモデルにおける初代上皮細胞オルガノイドの使用は、従来の結腸直腸単分子膜を利用する既存のモデルと比較して、より生理学的に翻訳可能なin vitroモデルを提供します18,19。

<table><tbody><tr><td>10 mL Serological Pipet</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-675-49</td><td></td></tr><tr><td>100x21mm ディッシュ、Nunclon Delta</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>172931</td><td></td></tr><tr><td>15 mL コニカルチューブ</td><td>VWR</td><td>89039-666</td><td></td></tr><tr><td>24-well, TC-Treated, Flat Bottom Plate</td><td>Corning</td><td>3524</td><td></td></tr><tr><td>37 & micro;M 可逆細胞ストレーナー</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>27215</td><td></td></tr><tr><td>50 mL コニカルチューブ</td><td>VWR</td><td>89039-658</td><td></td></tr><tr><td>70 &micro;m 滅菌細胞ストレーナー</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>FB22-363-548</td><td></td></tr><tr><td>アルブミン、ウシ (BSA)</td><td>VWR</td><td>0332-100G</td><td></td></tr><tr><td>CellTiter-Glo 3D 細胞生存率アッセイ</td><td>Promega</td><td>G9681</td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコの改良イーグルス培地/栄養ハムの混合物 F-12 (DMEM-F12) with 15 mM HEPES バッファー</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>36254</td><td></td></tr><tr><td>ジェントルセル セル解離試薬</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>100-0485</td><td></td></tr><tr><td>ImageJ</td><td>NIH</td><td>imagej.nih.gov/ij/</td><td></td></tr> <tr><td>Incucyte S3 Live-Cell Analysis Instrument</td><td>Sartorius</td><td>4647</td><td></td></tr><tr><td>Incucyte Scratch Wound Analysis Software Module</td><td>Sartorius</td><td>9600-0012</td><td></td></tr><tr><td>IntestiCult Organoid Growth Medium (Human)</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>06010</td><td>これはHOGMYですが、Y-27632や抗生物質は含まれていません。HOGMのベースとしても使用されますが、抗生物質が不足しているだけです。</td></tr><tr><td>大腸菌O111:B4由来のリポ多糖類、ゲルろ過クロマトグラフィーにより精製</td><td>Millipore Sigma</td><td>L3012-10MG</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix, Phenol Red-Free</td><td>Corning</td><td>356231</td><td></td></tr><tr><td>Nunc MicroWell 96-Well, Nunclon Delta-Treated, Flat-Bottom Microplate</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>136101</td><td></td></tr><tr><td>PBS(リン酸緩衝生理食塩水)、1X [-]カルシウム、マグネシウム、pH 7.4</td><td>コーニング</td><td>21-040-CM</td><td></td></tr><tr><td>プリモシン</td><td>Invivogen</td><td>ant-pm-1</td><td>これは広域抗生物質です</td></tr><tr><td>ヒアルロン酸ナトリウム、研究グレード、HA20K</td><td>Lifecore Biomedical</td><td>HA20K-1</td><td></td></tr><tr><td>TC20 自動セルカウンター</td><td>会社: バイオ・ラッド</td><td>1450102</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA 1X、0.25% トリプシン</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>MT25053CI</td><td></td></tr><tr><td>Y-27632</td><td>STEMCELLテクノロジー</td><td>ズ72302</td><td></td></tr></tbody></table>

エンテロイド由来単分子膜を用いた早産小腸障害および治癒の in vitro モデルに対するヒアルロン酸35 kdaの効果

Effect of Hyaluronic Acid 35 kDa on an In Vitro Model of Preterm Small Intestinal Injury and Healing Using Enteroid-Derived Monolayers

in vitro 引っ掻き傷創傷アッセイは、さまざまな組織タイプにおける上皮治癒のメカニズムと特性を調査するために一般的に使用されます。ここでは、回腸末端の腸管陰窩に由来する3次元(3D)非ヒト霊長類エンテロイドから2次元(2D)単層を生成するプロトコルを記載する。次に、これらのエンテロイド由来の単分子膜を in vitro スクラッチ創傷アッセイで利用して、母乳HA模倣体であるヒアルロナン35 kDa(HA35)が上皮創傷縁に沿った細胞移動と増殖を促進する能力をテストしました。単層をコンフルエントに成長させた後、手動で引っ掻き、HA35(50 μg/mL、100 μg/mL、200 μg/mL)またはコントロール(PBS)で処理しました。ギャップへの細胞移動および増殖は、生細胞イメージング用に装備された透過光顕微鏡を用いてイメージングした。創傷閉鎖は、ImageJの創傷治癒サイズプラグインを使用して創傷治癒率として定量化された。スクラッチ領域および細胞移動速度および創傷閉鎖の割合を24時間にわたって測定した。 in vitro でのHA35は、おそらく創傷端での細胞増殖および創傷領域への移動の組み合わせを通じて、小腸腸単層の創傷治癒を促進する。これらの方法は、早産のヒト小腸における腸管再生を探索するためのモデルとして潜在的に使用することができる。

さまざまな組織や臓器の組織修復と創傷治癒に対するHAの影響は十分に文書化されています。ただし、胎児または新生児の小腸の治癒と再生に対する分子量35 kDaのHAの具体的な影響は現在不明です。.胎児または新生児の小腸のモデルでHA35が創傷治癒を促進する能力をテストするために、NHP回腸組織から3D腸管エンテロイドを生成し、さらにこの組織を単一細胞に解離させて2Dエンテロイド由来の単分子膜を作成しました(図1A、B)。単層をコンフルエントに成長させ、P200ピペットチップを使用して手動で引っ掻きました(図1B、C)。次に、単層をHA35(50 μg/mL、100 μg/mL、200 μg/mL)またはコントロール(PBS)で処理しました。間隙への細胞遊走および増殖は、生細胞イメージング用に装備された透過光顕微鏡を用いて、合計24時間にわたって4時間毎に画像化された22。細胞遊走速度の尺度である創傷閉鎖速度を...

このプロトコルは、非ヒト霊長類回腸から単離された3次元(3D)エンテロイドに由来する2次元(2D)単層上で引っかき傷アッセイを確立して実行する方法を記載する。

エンテロイド由来単分子膜を用いた早産小腸障害および治癒の in vitro モデルに対するヒアルロン酸35 kDaの効果

In vitro scratch wound assays are commonly used to investigate the mechanisms and characteristics of epithelial healing in a variety of tissue types. ...

このプロトコルは、小腸のすべての主要な細胞型を表すエンテロイド由来単層を用いた再生研究に使用される非常に一般的な引っかき傷アッセイを拡張します。この技術により、腸管再生の早産2D腸管単層モデルにおける創傷閉鎖のリアルタイム視覚化が可能になります。私たちの技術は、形質転換された結腸直腸癌細胞株を使用したモデリングが不十分な早産哺乳類の腸の研究に適用できます。まず、96マイクロリットルの細胞外マトリックスまたはECMベースのヒドロゲルBMEを、摂氏2〜8度の氷上で一晩解凍します。ECMベースのヒドロゲルとカルシウムまたはマグネシウムを含まない氷冷PBSを1対50の比率で希釈します。24ウェル組織培養プレートの各ウェルに200マイクロリットルの氷冷希釈ECMベースのヒドロゲルをコーティングし、コーティングプレートを摂氏37度および5%の二酸化炭素で最低1時間インキュベートします。次に、単層用の3Dエンテロイドを含む24ウェル培養プレートから培地を吸引し、ウェルあたり500マイクロリットルの細胞解離試薬と交換します。ECMベースのヒドロゲルドームを手動で破壊するには、8〜12回ピペッティングし、12ウェルの内容物を15ミリリットルのコニカルチューブに移します。12個の空のウェルを250マイクロリットルの細胞解離試薬で洗浄し、すべてのエンテロイドが除去されたことを確認し、内容物を15ミリリットルの円錐形チューブに移します。コニカルチューブを300gで摂氏4度で5分間遠心分離し、上清を廃棄します。10ミリリットルの氷冷DMEM/F-12洗浄バッファーを円錐形チューブに加え、チューブを反転させて腸内ペレットを懸濁します。300gで4°Cで5分間遠心分離し、上清を除去する。細胞ペレットを12ミリリットルの摂氏37度のトリプシン-EDTAに再懸濁し、チューブを摂氏37度の水浴に10分間、または細胞が可溶になるまで置きます。3ミリリットルのDMEM/F-12洗浄バッファーを各チューブに加え、トリプシン-EDTAを希釈します。チューブを反転させて混合し、氷の上に置きます。解離したエンテロイドを37マイクロメートルのメッシュセルストレーナーでろ過します。内容物をきれいな15ミリリットルの円錐形のチューブに集め、300gで摂氏4度で5分間遠心分離します。コニカルチューブから上清を取り除き、細胞ペレットを6ミリリットルのHOMGYで再懸濁します。次に、ECMベースのヒドロゲルコーティングプレートをインキュベーターから取り出し、コーティングされた表面を傷つけたり、プレートを完全に乾燥させたりすることなく、余分なECMベースのヒドロゲル溶液を吸引します。合わせた12ミリリットルのHOMGY細胞懸濁液を、ECMベースのヒドロゲルでコーティングした24ウェルプレートの各ウェルに500マイクロリットル加えます。蓋をした状態でプレートを回転させて、ウェル内の細胞が均一に分布するようにします。プレートを摂氏37度と5%の二酸化炭素でインキュベートし、単層が90%コンフルエンシーを超えるまで2日ごとにHOMGY培地を交換します。単層が90%コンフルエンシーを超えたら、培地を吸引して、付着していない細胞を取り除きます。HOMGYに溶解した500マイクロリットルのHA35またはPBSで細胞を24時間処理します。その後、単層の表面を乱さずにメディアを取り外します。200マイクロリットルのピペットチップを使用して、単層が乾かないように注意しながら、各ウェルの単層の全面直径全体に直線的な傷を付けます。傷のある単分子膜を500マイクロリットルの1X PBSで1回洗浄し、HOMGYに溶解した500マイクロリットルのHA35またはPBSを加えます。プレートを摂氏37度、二酸化炭素5%のインキュベーター内の生細胞分析装置に移します。ライブセル解析ソフトウェアのスケジュールアイコンの下で、新しい船舶の追加ウィザードの起動アイコンをクリックします。[スケジュールに従ってスキャン]を選択し、[次へ]をクリックします。[容器の作成]で[新規]を選択し、[次へ]をクリックしてから、[スキャンタイプ]で[ウェル全体]を選択して、[次へ]をクリックします。画像チャンネルにはフェーズを選択し、対物レンズには4xを選択します。表示されたリストからプレートの製造元とカタログ番号を選択し、[次へ]をクリックします。空の容器位置を選択し、その後に目的のスキャンパターンを選択します。[名前] にプレート名を入力し、プラス を選択してプレート レイアウトを作成します。小さいプラス記号を選択して、処理名を作成します。短い名前を入力し、[OK] を入力します。その処理に対応するプレートウェルを強調表示し、大きなプラスを押して、その処理のあるウェルを指定します。化合物濃度を入力し、[OK]をクリックします。プレートが完了したら、[OK]、[次へ] の順に選択します。[分析を後で延期する] を選択し、[4 時間間隔でスキャンして新しいスケジュールを作成する] を選択します。1 日、0 時間でスキャンを停止します。概要が正しいことを確認し、スケジュールに追加します。ライブセル解析ソフトウェアで、画面上部の[表示]を選択します。[船舶名]メニューから、完了した24時間のスキャンに移動し、船舶名をダブルクリックします。左側の[画像とムービーのエクスポート]アイコンを選択してから、[表示時]オプションを選択します。関心のあるウェルをハイライト表示し、[対象タイム ポイント] と [表示される一連のイメージ] を選択します。シーケンスタイプとスキャンが正しいことを確認します。目的のターゲットフォルダの場所を選択します。ドロップダウンメニューから[JPEG]を選択し、[エクスポート]を選択します。ImageJソフトウェアを開き、引っかき傷アッセイ画像をアップロードします。「イメージ」を選択し、「8-bit」と入力して、イメージを 24 ビット RGB から変更します。プラグイン、マクロ、インストール、Wound_healing_sizeプラグインを選択して、創傷治癒サイズプラグインをインストールします。その後、分散ウィンドウの半径を20、しきい値を100、飽和ピクセルの割合を0.001に設定します。[スケールをグローバルに設定] で [はい] を選択し、[OK] をクリックします。輪郭が線で囲まれた領域であることを確認し、追加の引っかき傷についても繰り返します。最後に、画面上に示される式を用いて、24時間にわたる遊走または増殖細胞の創傷治癒の引っ掻き領域の割合を計算する。ここで、T0は時刻0時の面積であり、TCは0時間、4時間、12時間、または24時間の面積である。腸内生成およびエンテロイド由来単層創傷治癒アッセイ手順がこれらの画像に示されている。三次元の非ヒト霊長類腸管エンテロイドの培養物は、2次元単層に解離するために使用されます。単層を24ウェルプレートで90%を超えるコンフルエントまで成長させた後、HA35またはPBSで24時間処理しました。次に、単層をP200ピペットチップで引っ掻きました。ここに示されているのは、非ヒト霊長類腸質単層の対照治療におけるHA35の代表的な画像です。画像は、P200ピペットチップでスクラッチを行ってから0時間、4時間、12時間、および24時間後に取得されました。創傷治癒および様体単層に対するHA35の効果をここに示す。腸質単層における経時的な創傷治癒の変化は、HA35治療濃度に依存する。HA35は、対照と比較して、1ミリリットルあたり100マイクログラムおよび1ミリリットルあたり200マイクログラムで、4時間および12時間後の創傷治癒を有意に増加させたが、治癒率は24時間までに治療間で収束した。この手順で覚えておくべき最も重要なことの1つは、腸腸単層は短命であるということです。したがって、それらが90%コンフルイドになったら、調査員はそれらを迅速に使用することを検討する必要があります。この技術は、特に炎症性損傷ではなく機械的損傷に関心がある場合、in vitroでの早産腸再生の頼りになるモデルになっています。

effect-hyaluronic-acid-35-kda-on-an-vitro-model-preterm-small

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

このビデオは、リポ多糖類治療によって誘発されるヒト由来の新生児腸内モデルにおける壊死性腸炎疾患の発症を示しています。このモデルは、腸の病態生理学を研究するのに役立ちます。...

ヒト上皮腸質モデルにおける壊死性腸炎の誘発

このプロトコルは、蛍光顕微鏡を用いたヒトの腸オルガノイドのリアルタイム次の薬理学的治療における上皮バリア透過性の測定について説明し、細胞顕微鏡検査をライブします。...

人間の腸 Organoids 上皮関門の透過性のリアルタイム計測

Enteroids 人間の病気の研究に新たなモデルとして浮上しています。プロトコルでは、新生児の組織から生成された enteroids のリポ多糖 (LPS) 治療を使用して人間の壊死性腸炎の enteroid モデルをシミュレートする方法について説明します。収集した enteroids...

壊死性腸炎新規ヒト上皮 Enteroid モデル

ヒトが誘導した多能性幹細胞 (hiPSC) 由来の腸管オルガノイドは、インビトロで腸内疾患をモデル化する刺激的な機会を提供する。我々は、腸管オルガノイド (iHOs) への hiPSCs の分化、サイトカインによるこれらの iHOs の刺激、およびサルモネラサルモネラの iHO 内腔への微量注入を示し、これによって上皮浸潤の研究を可能にする病原...

サルモネラおよび他の病原体に対する上皮細胞保護を研究・修飾するためのヒト誘導多能性幹細胞由来腸管オルガノイドの使用

ここでは、腸管バリア機能、透過性、および輸送を研究するためのヒトオルガノイド由来腸上皮単層の調製について述べる。オルガノイドは外部刺激に対する元の上皮組織応答を表すので、これらのモデルは細胞株の拡張性の利点と初代組織の関連性と複雑さを兼ね備えています。...

オルガノイド由来の上皮単分子膜:腸管バリア機能のための臨床的に関連するインビトロモデル

このプロトコルは、極性が逆の小腸炎を利用し、頂端表面へのアクセスを可能にする頂端外壊死性腸炎(NEC)-in-a-dishモデルを記述する。NEC関連上皮破壊を検出するための免疫蛍光染色プロトコールと、NECインディッシュプロトコルに供するアピカルアウトエンテロイドの生存率を決定する方法を提供します。...

インビトロ 壊死性腸炎の頂端外腸炎モデル

このプロトコルは、胎児の腸組織からの3次元腸モデルであるエンテロイドの確立を詳述しています。上皮バイオマーカーの免疫蛍光イメージングをモデルの特性評価に使用しました。細菌性エンドトキシンであるリポ多糖の頂端曝露は、マイクロインジェクション技術を用いて、蛍光デキストランの漏出によって測定される用量依存的に上皮透過性を誘導した。...

胎児組織由来エンテロイドの上皮透過性の試験

ここでは、基本的な3次元(3D)腸細胞株モデルシステムの構築と、固定された腸当等物の光学顕微鏡的評価のためのパラフィン包埋プロトコルについて説明します。選択したタンパク質を染色することで、1回の実験で複数の視覚的パラメータを解析し、前臨床薬物スクリーニング研究に活用することができます。...

免疫成分を用いた基本的な3次元(3D)腸管モデルシステム

このプロトコルは病気の病因に機構の調査に使用することができる壊死性腸炎(NEC)の 生体外の モデルを記述する。ヒト新生児の腸、内皮細胞、および重度のNECの新生児の腸内細菌叢に由来する腸内エンテロイドをシードしたマイクロ流体チップを特徴としています。...

ヒト新生児腸管内腸内細菌叢と腸内細菌叢異常体を組み込んだ壊死性腸炎のマイクロ流体モデル

このプロトコールは、免疫染色による細胞接着、オルガノイド形態、および遺伝子発現のための生体機能的自己組織化ペプチドを評価することを目的としています。結腸直腸癌細胞株を使用して、集中的なテストのためのオルガノイドを取得する費用対効果の高い方法を提供します。...

超短自己組織化ペプチドマトリックス中のSW1222細胞株由来結腸直腸癌オルガノイドの作製とキャラクタリゼーション

この研究は、オルガノイドからウシ腸の2D単分子膜を生成するためのプロトコルを提示し、宿主と病原体の相互作用を研究するためのアクセスを改善します。これには、膜の完全性と機能性を評価する方法が含まれており、牛の胃腸生理機能を模倣した in vitro...

小腸および大腸単分子膜界面を用いたウシオルガノイド技術の進歩

学ぶエンテロイド由来単分子膜を用いたスクラッチ創傷アッセイによる早産小腸再生の可視化法。ヒアルロン酸35kDaの効果をリアルタイムで観察し、腸管治癒メカニズムを解明する生理学的モデルを提供します。

エンテロイド由来単分子膜を用いた早産小腸障害および治癒の in vitro モデルに対するヒアルロン酸35 kDaの効果

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