Name: 原子間力顕微鏡を用いた生きた植物器官の初代細胞壁の力学特性評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-05-18T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 52 s
Description: 学ぶ原子間力顕微鏡を用いた生きた植物器官の初代細胞壁の力学特性評価法。非固定・非脱水サンプルのヤング率測定により、植物の成長と形態形成における細胞壁バイオメカニクスの理解を深めます。

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ドミトリー・スースロフ博士(サンクトペテルブルク国立大学、ロシア、サンクトペテルブルク)とミラ・ポノマレワ教授(タタール科学研究所、FRC KazSC RAS、カザン、ロシア)にそれぞれトウモロコシとライ麦の種子を提供してくださったことに感謝します。提示された方法は、LKに授与されたロシア科学財団プロジェクト番号18-14-00168の枠組みの中で開発されました。作業の一部(提示された結果の入手)は、RASのFRCカザン科学センターへの政府の割り当ての財政的支援を受けてAPによって実行されました。

<ol><li>Zerzour, R., Kroeger, J., Geitmann, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polar+growth+in+pollen+tubes+is+associated+with+spatially+confined+dynamic+changes+in+cell+mechanical+properties%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Biology%22%5BJournal%5D)">Polar growth in pollen tubes is associated with spatially confined dynamic changes in cell mechanical properties.</a> Developmental Biology. 334 (2), 437-446 (2009).</li>
<li>Braybrook, S. A., Peaucelle, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechano-chemical+aspects+of+organ+formation+in+Arabidopsis+thaliana%3A+the+relationship+between+auxin+and+pectin%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Mechano-chemical aspects of organ formation in Arabidopsis thaliana: the relationship between auxin and pectin.</a> Plos One. 8 (3), 57813(2013).</li>
<li>Milani, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+analysis+of+local+wall+stiffness+at+the+shoot+apical+meristem+in+Arabidopsis+using+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Journal%22%5BJournal%5D)">In vivo analysis of local wall stiffness at the shoot apical meristem in Arabidopsis using atomic force microscopy.</a> Plant Journal. 67 (6), 1116-1123 (2011).</li>
<li>Daher, F. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anisotropic+growth+is+achieved+through+the+additive+mechanical+effect+of+material+anisotropy+and+elastic+asymmetry%5BTitle%5D)+AND+%22Elife%22%5BJournal%5D)">Anisotropic growth is achieved through the additive mechanical effect of material anisotropy and elastic asymmetry.</a> Elife. 7, 38161(2018).</li>
<li>Peaucelle, A., Wightman, R., Hofte, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+control+of+growth+symmetry+breaking+in+the+Arabidopsis+hypocotyl%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">The control of growth symmetry breaking in the Arabidopsis hypocotyl.</a> Current Biology. 25 (13), 1746-1752 (2015).</li>
<li>Petrova, A., Gorshkova, T., Kozlova, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gradients+of+cell+wall+nano-mechanical+properties+along+and+across+elongating+primary+roots+of+maize%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Gradients of cell wall nano-mechanical properties along and across elongating primary roots of maize.</a> Journal of Experimental Botany. 72 (5), 1764-1781 (2021).</li>
<li>Chiniquy, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three+novel+rice+genes+closely+related+to+the+Arabidopsis+IRX9%2C+IRX9L%2C+and+IRX14+genes+and+their+roles+in+xylan+biosynthesis%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Three novel rice genes closely related to the Arabidopsis IRX9, IRX9L, and IRX14 genes and their roles in xylan biosynthesis.</a> Frontiers in Plant Science. 4, 83(2013).</li>
<li>Majda, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanochemical+polarization+of+contiguous+cell+walls+shapes+plant+pavement+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+Cell%22%5BJournal%5D)">Mechanochemical polarization of contiguous cell walls shapes plant pavement cells.</a> Developmental Cell. 43 (3), 290-304 (2017).</li>
<li>Bidhendi, A. J., Geitmann, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+to+quantify+primary+plant+cell+wall+mechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Methods to quantify primary plant cell wall mechanics.</a> Journal of Experimental Botany. 70 (14), 3615-3648 (2019).</li>
<li>Peaucelle, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AFM-based+Mapping+of+the+elastic+properties+of+cell+walls%3A+at+tissue%2C+cellular%2C+and+subcellular+resolutions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">AFM-based Mapping of the elastic properties of cell walls: at tissue, cellular, and subcellular resolutions.</a> Journal of Visualized Experiments. (89), e51317(2014).</li>
<li>Peaucelle, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pectin-induced+changes+in+cell+wall+mechanics+underlie+organ+initiation+in+Arabidopsis%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Biology%22%5BJournal%5D)">Pectin-induced changes in cell wall mechanics underlie organ initiation in Arabidopsis.</a> Current Biology. 21 (20), 1720-1726 (2011).</li>
<li>Beauzamy, L., Derr, J., Boudaoud, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantifying+hydrostatic+pressure+in+plant+cells+by+using+indentation+with+an+atomic+force+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Quantifying hydrostatic pressure in plant cells by using indentation with an atomic force microscope.</a> Biophysical Journal. 108 (10), 2448-2456 (2015).</li>
<li>Radotic, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+force+microscopy+stiffness+tomography+on+living+Arabidopsis+thaliana+cells+reveals+the+mechanical+properties+of+surface+and+deep+cell-wall+layers+during+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Biophysical+Journal%22%5BJournal%5D)">Atomic force microscopy stiffness tomography on living Arabidopsis thaliana cells reveals the mechanical properties of surface and deep cell-wall layers during growth.</a> Biophysical Journal. 103 (3), 386-394 (2012).</li>
<li>Yakubov, G. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mapping+nano-scale+mechanical+heterogeneity+of+primary+plant+cell+walls%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Mapping nano-scale mechanical heterogeneity of primary plant cell walls.</a> Journal of Experimental Botany. 67 (9), 2799-2816 (2016).</li>
<li>Zdunek, A., Kurenda, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+the+elastic+properties+of+tomato+fruit+cells+with+an+atomic+force+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors%22%5BJournal%5D)">Determination of the elastic properties of tomato fruit cells with an atomic force microscope.</a> Sensors. 13 (9), 12175-12191 (2013).</li>
<li>Evered, C., Majevadia, B., Thompson, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+wall+water+content+has+a+direct+effect+on+extensibility+in+growing+hypocotyls+of+sunflower+%28Helianthus+annuus+L%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Botany%22%5BJournal%5D)">Cell wall water content has a direct effect on extensibility in growing hypocotyls of sunflower (Helianthus annuus L).</a> Journal of Experimental Botany. 58 (12), 3361-3371 (2007).</li>
<li>Torode, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Branched+pectic+galactan+in+phloem-sieve-element+cell+walls%3A+implications+for+cell+mechanics%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Branched pectic galactan in phloem-sieve-element cell walls: implications for cell mechanics.</a> Plant Physiology. 176 (2), 1547-1558 (2018).</li>
<li>Garcia, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nanomechanical+mapping+of+soft+materials+with+the+atomic+force+microscope%3A+methods%2C+theory+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Chemical+Society+Reviews%22%5BJournal%5D)">Nanomechanical mapping of soft materials with the atomic force microscope: methods, theory and applications.</a> Chemical Society Reviews. 49 (16), 5850-5884 (2020).</li>
<li>Kozlova, L., Petrova, A., Ananchenko, B., Gorshkova, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+primary+cell+wall+nanomechanical+properties+in+internal+cells+of+non-fixed+maize+roots%5BTitle%5D)+AND+%22Plants-Basel%22%5BJournal%5D)">Assessment of primary cell wall nanomechanical properties in internal cells of non-fixed maize roots.</a> Plants-Basel. 8 (6), 172(2019).</li>
<li>Bovio, S., Long, Y. C., Moneger, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+atomic+force+microscopy+to+measure+mechanical+properties+and+turgor+pressure+of+plant+cells+and+plant+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Use of atomic force microscopy to measure mechanical properties and turgor pressure of plant cells and plant tissues.</a> Journal of Visualized Experiments. (149), e59674(2019).</li>
<li>Krieg, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Atomic+force+microscopy-based+mechanobiology%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews+Physics%22%5BJournal%5D)">Atomic force microscopy-based mechanobiology.</a> Nature Reviews Physics. 1 (1), 41-57 (2019).</li>
<li>Braunsmann, C., Schaffer, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Note%3A+Artificial+neural+networks+for+the+automated+analysis+of+force+map+data+in+atomic+force+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Review+of+Scientific+Instruments%22%5BJournal%5D)">Note: Artificial neural networks for the automated analysis of force map data in atomic force microscopy.</a> Review of Scientific Instruments. 85 (5), 056104(2014).</li>
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著者には利益相反はありません。

一次細胞壁の機械的性質は、植物細胞の成長の方向と速度、したがって植物の将来のサイズと形状を決定します。ここで紹介するAFMベースの方法は、植物細胞壁の特性を研究するために使用される既存の技術を補完します。それは植物の内部組織に属する細胞壁の弾力性を調査することを可能にする。提示された方法を用いて、成長するトウモロコシの根の異なる組織における細胞壁の機械的性質をマッピングし、これらの特性に基づいて数理モデルを構築した6。模擬根は、線形サイズの変化によって膨圧を模倣した圧力の適用に応答した。これらの変化は、プラスモライジング培地6で摘出したばかりの根によって示されたものと同じ範囲および反対方向であった。
サンプル調製は、このプロトコルにとって重要です。サンプルの乾燥は、準備全体を通して避ける必要があります。切片化する植物材料の正しい配置は重要な問題です。セル壁は、将来のスキャン面に対して厳密に垂直に向ける必要があります。そうしないと、セル壁が曲がったり座屈したりしたために、不十分な力-変形曲...

植物細胞壁の機械的性質は、細胞の形状およびその成長能力を決定する。例えば、花粉管の成長先端は、同じ管1の非成長部分よりも柔らかい。シロイヌナズナ分裂組織上の原基形成は、将来の原基2,3の部位における細胞壁剛性の局所的な減少によって先行される。シロイヌナズナの胚軸の細胞壁は、主成長軸に平行で成長が速く、この軸に垂直で成長が遅い細胞壁よりも柔らかくなっています4,5。トウモロコシの根では、分裂から伸長への細胞の移行は、根のすべての組織における弾性率の低下を伴っていた。弾性率は伸長帯では低いままであり、後期伸長帯6で増加した。
様々な方法が利用可能であるにもかかわらず、毎年得られる細胞壁生物学に関する生化学的および遺伝学的情報の大規模な配列は、細胞壁の機械的特性と比較されることはめったにありません。例えば、細胞壁関連遺伝子上の変異体は、しばしば成長および発達を変化させるが4,7,8、バイオメカニクスの観点から記述されることはめったにない。その理由の1つは、細胞レベルおよび細胞内レベルでの測定を行うことの難しさです。原子間力顕微鏡(AFM)は現在、そのような分析の主要なアプローチです9。
近年、植物細胞壁のバイオメカニクスに関するAFMベースの研究が数多く行われています。シロイヌナズナ2,3,4,5,10,11およびタマネギ12の外側組織、ならびに培養細胞13,14,15の細胞壁の機械的性質が調べられている。しかしながら、植物の表在細胞は、内部組織のそれらとは異なる機械的性質を有する細胞壁を有し得る6。さらに、植物細胞は膨圧によって加圧され、植物細胞をより硬くします。turgor圧の影響を取り除くために、研究者はプラスモライザー溶液2,3,4,5,10,11を使用するか、得られた値をturgorと細胞壁の寄与に分解する必要があります12。第1のアプローチは、試料の脱水をもたらし、細胞壁16の厚さおよび特性を変化させるが、第2のアプローチは、追加の測定および複雑な数学を必要とし、比較的単純な形状の細胞にのみ適用される12。内部組織の細胞壁特性は、凍結切片17または樹脂8を含浸させた植物材料の切片で評価することができる。ただし、どちらの方法でもサンプルの脱水や含浸が必要であり、必然的に特性が変化します。単離または培養された細胞の特性は、植物全体の生理機能に関連付けることは困難です。植物細胞の培養と単離の両方が、それらの細胞壁の機械的性質に影響を与える可能性があります。
ここで紹介する方法は、前述のアプローチを補完するものです。それを使用して、あらゆる組織の一次細胞壁および植物発生のあらゆる段階で調べることができる。切片作製およびAFM観察は、サンプルの脱水を回避する液体中で行った。細胞が切断されるにつれて、turgorの問題は解決されました。プロトコルはトウモロコシとライ麦の根での作業について説明していますが、他のサンプルは、ビブラトームの切片化に適しているかどうかを調べることができます。
ここで説明するAFM研究は、力-体積技術を使用して実行されました。このメソッドには、異なる機器が異なる名前を使用します。ただし、基本原則は同じです。試料の力−体積マップは、カンチレバー(または試料)の正弦波または三角形の運動によって得られ、カンチレバーのたわみ18を記録しながら、分析された各点で特定の荷重力を達成する。結果は、サーフェスの地形図と力-距離曲線の配列を組み合わせたものです。各曲線は、特定のポイントでの変形、剛性、ヤング率、接着力、およびエネルギー散逸を計算するために使用されます。同様のデータは、接触モード19でスキャンした後のポイントバイポイントフォース分光法によって得ることができるが、それはより時間がかかる。

<table><tbody><tr><td>アガロース、低融点</td><td>Helicon</td><td>B-5000-0.1</td><td>サンプル固定用</td></tr><tr><td>ブラシ</td><td>-</td><td>-</td><td>セクション移動用</td></tr><tr><td>カンチレバー</td><td>NanoTools, ドイツ</td><td>NT_B150_v0020-5</td><td>モデル: 生物圏 B150-FM</td></tr><tr><td>カンチレバー</td><td>NT-MDT, ロシア</td><td>FMG01/50</td><td>モデル: FMG01</td></tr><tr><td>シアノアクリレート接着剤</td><td></td><td>--</td><td>用ビブラトミー</td></tr><tr><td>ガラススライド</td><td>ハインツ・ヘレンツ</td><td>1042000</td><td>ビブラトミーおよびAFMキャリブレーション用</td></tr><tr><td>ImageAnalysis P9ソフトウェア</td><td>NT-MDT、ロシア</td><td>-</td><td>データ分析用</td></tr><tr><td>ライカDM1000落射蛍光顕微鏡</td><td>ライカバイオシステムズ、ドイツ</td><td>11591301</td><td>セクションチェック</td></tr><tr><td>NaOCl</td><td>-</td><td></td><td>-種子滅菌用</td></tr><tr><td>Nova PX 3.4.1 ソフトウェア</td><td>NT-MDT、ロシア</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>HDコントローラー付きNTEGRA Prima顕微鏡</td>を実施する実験用 <td>NT-MDT、ロシア</td><td>-</td><td>AFMおよびデータ収集用</td></tr><tr><td>ペトリ皿 サンプル固定用35 mm</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>の153066</td><td></td></tr><tr><td>チップピペット 1000 & マイクロ;L</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>4642092</td><td></td></tr><tr><td>チップピペット 2-20 & マイクロ;L</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>サイ</td><td></td></tr>エンティフィック 4642062-<tr><td>-超純水</td><td>-</td><td>-</td><td></td></tr><tr><td>-Vibratome Leica VT 1000S</td><td>Leica Biosystems, Germany</td><td>1404723512</td><td>for sample sectioning</td></tr></tbody></table>

原子間力顕微鏡を用いた生きた植物器官の初代細胞壁の力学特性評価

Characterizing Mechanical Properties of Primary Cell Wall in Living Plant Organs Using Atomic Force Microscopy

一次細胞壁の機械的性質は、植物細胞の成長の方向と速度、したがって植物の将来のサイズと形状を決定します。これらの特性を測定するために、多くの高度な技術が開発されています。ただし、原子間力顕微鏡(AFM)は、細胞レベルで細胞壁の弾力性を研究するのに最も便利です。この技術の最も重要な制限の1つは、表面的または単離された生細胞しか研究できないことでした。ここでは、植物体の内部組織に属する初代細胞壁の機械的性質を調べるための原子間力顕微鏡の使用が提示される。このプロトコルは、根の細胞壁の見かけのヤング率の測定を記述しますが、この方法は他の植物器官にも適用できます。測定は、液体セル内の植物材料のビブラトーム由来の切片に対して行われるため、(i)プラスモライザー溶液の使用やワックスや樹脂の試料含浸の回避、(ii)実験の迅速化、(iii)試料の脱水防止が可能です。標本の切片化方法に応じて、背斜細胞壁と臆細胞壁の両方を研究することができます。異なる組織の機械的特性の違いは、単一のセクションで調査することができます。このプロトコルでは、研究計画の原則、試験片の準備と測定に関する問題、および得られた弾性率の値に対するトポグラフィーの影響を回避するための力変形曲線の選択方法について説明します。この方法はサンプルサイズによって制限されませんが、細胞サイズに敏感です(すなわち、大きな内腔を有する細胞は検査が困難である)。

典型的な弾性率とDFLマップ、および記載された方法でライムギとトウモロコシの根で得られた力曲線を 図2に示します。 図2A は、ライムギ一次根の横断面で得られた弾性率およびDFLマップを示す。弾性率マップの白い領域(図2A、左)は、スキャナーがz方向の限界に達したことによるヤング率の誤った過大評価に対応しています。この画像は、満足のいく力曲線をさらに選択するための外部マップとして使用するのは便利ではありません。右側(図2A)に示すDFL信号マップ(偏向/エラーマップ)は、この目的により適しています。
トウモロコシの根の横方向および縦方向の断面の弾性率マップを図2B,Cに示します。サンプルの底に到達しようとしている間にスキャナーを完全に伸ばすと、誤った測定...

細胞壁バイオメカニクスの研究は、植物の成長と形態形成を理解するために不可欠です。原子間力顕微鏡を用いて、若い植物器官の内部組織における薄い一次細胞壁を調べるために、以下のプロトコルが提案されている。

The mechanical properties of the primary cell walls determine the direction and rate of plant cell growth and, therefore, the future size and shape of the ...

植物細胞の成長は、それらの細胞壁の機械的性質によって制御される。したがって、植物のさまざまな臓器や組織でこれらの特性を知ることが重要です。ここに提示された方法は、若い植物の内部組織における非固定および非脱水細胞壁の生体力学的特徴付けを可能にする。ビブラトーム切片作成用の溶液とサンプルの調製から始めます。ペトリ皿の底に4ミリメートルの溶かした3%アガロースの層を注ぎ、サンプルへの熱損傷を防ぐために少し冷まします。長さ約5ミリメートルの植物器官の3つまたは4つの部分をアガロースの上に水平に置きます。約30〜60秒後、最初のアガロース層の上に薄い半固体フィルムが現れます。次に、慎重に2番目の層を上に注ぎます。アガロースが完全に固まったら、検体を含むブロックを切り取ります。ブロックを六角形の切頭ピラミッドに成形して、さらなる断面作成中の安定性を確保します。ビブラトームでサンプル切片作成を開始する前に、シアノアクリレート接着剤でブロックをビブラトームステージに接着します。ピラミッドの角の1つがビブラトームの刃に面するようにステージをビブラトームに配置し、ビブラトームバスに水を注ぎます。断面の厚さ、ブレード速度、振動周波数などの切断パラメータを設定し、サンプルを切断します。細いブラシを使用して、セクションを水浴からスライドガラスに移動し、セクションに水滴を置き、乾燥を防ぎます。光学顕微鏡で切片の品質を確認した後、断面平面に垂直な細胞壁を有する適切な切片を選択する。次に、ピペットを使用してペトリ皿キャップの底に1%溶融アガロースの1ミリリットルの層を注ぐことにより、原子間力顕微鏡測定用の切片を固定化します。アガロースが固まったら、ろ紙を端に近づけて、セクションから余分な水分を取り除きます。ブラシを使用して、スライドからペトリ皿キャップの中央にセクションを慎重に移します。次に、20マイクロリットルのピペットを使用して切片の周りに1%アガロースを慎重に添加し、原子間力顕微鏡用の水またはその他の溶液を固定化した切片のあるペトリ皿キャップに注ぎます。光学顕微鏡を使用して原子間力顕微鏡カンチレバーの下でサンプルをガイドします。アプローチボタンをクリックしてからランディングボタンをクリックして、1ナノアンペアの設定値で接触モードでサンプルにアプローチします。[スキャン]ボタンをクリックしてから、[領域]ボタンをクリックします。スキャンする領域サイズを 50 マイクロメートル x 50 マイクロメートルから選択します。[プローブの移動]ボタンをクリックし、スキャナーをその上に移動し、スキャナーの突出の程度に基づいて最高点を見つけて、スキャン領域全体を確認します。[アプローチ] タブを開きます。次に、[削除]ボタンをクリックして、サンプルから撤回します。最高点をターゲットとして使用し、[ランディング]ボタンをクリックしてサンプルに再度アプローチします。次に、[プローブの移動]ボタンをクリックし、スキャナーをその上に移動して、表面をもう一度確認します。スキャンレートを0.5ヘルツに設定し、スキャンサイズを50マイクロメートル×50マイクロメートル、スキャンポイントを64×64に設定します。[実行]ボタンをクリックしてスキャンし、サンプルの表面を確認し、アガロースによる汚染の可能性があります。[オン]ボタンをクリックした後、プログラムのメインウィンドウのドロップダウンメニューでHDPlusモードを選択し、メインプログラムウィンドウで設定値を0.1ナノアンペアに設定します。HDウィンドウのメインタブで、調査対象のサンプルに適したスキャンパラメータを設定します。次に、HDウィンドウの[ノイズ]タブを開き、カンチレバーの共振周波数を入力します。HDウィンドウの[クォント]タブを開き、IOS、カンチレバー剛性、先端半径、角度を入力します。先端形状に応じて計算に使用される接触モデルを選択します。この後、HDウィンドウの[スキャン]タブを開き、信号と信号が記録される方向を選択します。[フォースボリューム]ボックスにチェックマークを付けてすべてのフォースカーブの記録を取得し、メインプログラムウィンドウの上部にある[オフ]ボタンをクリックしてフィードバックループをオンにしますメインHDウィンドウのフェーズコアボタンをクリックして、光学システムの感度を修正します。メインHDウィンドウの対時間タブには、DFL信号対時間の機能がリアルタイムで表示されます。ベースライン水準の決定に使用するこの関数の部品を選択し、さらなる計算のために接触モデルを適合させます。次に、プログラムのメインウィンドウでスキャンポイントの値を256 x 256に設定します。次に、スキャンレートを0.2ヘルツに設定し、[実行]ボタンをクリックしてサンプルをスキャンします。スキャンが停止したら、メインウィンドウの上部にある[オン]ボタンをクリックして、フィードバックループをオフにします。ドロップダウンメニューで[コンタクトモード]を選択し、[アプローチ]タブを開き、[削除]ボタンをクリックしてサンプルから撤回します。[データ]ボタンをクリックして分析ソフトウェアを開き、出力を保存します。保存したファイルを解析ソフトで開きます。HDフォースボリュームフレームを選択します。Ctrlキーを押しながら、同じスキャン方向で取得したビジュアルフレームを1つ選択します。[外部マップの読み込み]ボタンをクリックして、セル壁がどこにあるかを確認します。メインタブでInvOptSensとカンチレバー剛性の値を確認します。[追加]タブを開き、チップパラメータと接触モデルを確認します。ビジュアルフレーム上のセル壁上のさまざまな点をクリックし、モデルによって適切に記述された曲線のみを選択します。弾性率マップの白い領域は、スキャナーがZ方向の限界に達したことによるヤング率の誤った過大評価に対応しています。この画像は、満足のいく力曲線をさらに選択するための外部マップとして使用するのは便利ではありません。ただし、右側に示されているDFL信号マップは、ここではより適しています。異なる計測器は、DFL信号を偏向信号またはエラー信号と呼ぶ場合があります。サンプルの底に到達しようとしている間に完全に拡張されたスキャナーは、誤った測定やスキャンの中断につながる可能性があります。アガロースの存在は、接触モードで最初のスキャンを取得しながら、細胞壁といくつかの細胞底部がそのようなスキャンで見えるようにチェックすることができます。ただし、不正確な固定化の場合、表面がアガロースで覆われ、サンプルのトポグラフィーがマスクされる可能性があります。同じ細胞壁の異なる点で記録された4つの異なる力曲線のうち、0.1で記録された曲線はベースラインを示さず、カンチレバーの先端が細胞壁から分離されていないことを意味します。0.3で記録された曲線は、細胞壁の曲がりを示す接近部分の肩を示しています。ポイント2と4は、同様の弾性率値を持つ満足のいく力曲線を示しています。サンプルの準備と検査には練習が必要ですが、習得することはできます。このプロトコルの重要な部分は、結果の曲線をフィルタリングすることです。自動的に計算されたモジュライに頼らないでください。同じ手法を使用して、接着力またはエネルギー散逸を測定できます。また、一部の材料のビスコースまたは粘弾性挙動の説明にも重要です。

characterizing-mechanical-properties-primary-cell-wall-living-plant

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

本論文では、培養中の生細胞の機械的刺激のための統合された原子間力光学イメージング顕微鏡の操作で、リーダーに指示することを目指しています。ステップバイステップのプロトコルが表示されます。機械的な刺激に生細胞の応答を示す代表的なデータセットが表示されます。...

集積光と原子間力顕微鏡による研究機械的刺激に対する細胞応答を生きる

本論文では、原子間力顕微鏡（AFM）を用いて、microindentationにより、生きた細胞の機械的性質を特徴づけるためのプロトコルを示しています。...

原子間力顕微鏡を用いた生細胞の機械的特性を測定する

原子間力顕微鏡(AFM)を使用して植物組織の機械的特性をマッピングする方法を記述します。私たちは、広視野メソスケールで植物の発生過程で細胞壁に起こる力学的変化をいかに記録し、これらの変化を成長や形態形成と相関させるかに焦点を当てています。...

細胞壁の弾性特性のAFMベースのマッピング：ティッシュ、携帯電話、および細胞内の解像度で

結晶性セルロースは、植物の細胞壁の重要な構成要素です。しかし、細胞分解能での定量化は技術的に困難です。...

結晶セルロース蓄積中の高解像度の定量化<em&gt;シロイヌナズナ</em&gt;ルーツは、組織特異的な細胞壁の変更を監視します

ここでは、細胞や組織に対してナノ・マイクロインデントツールとして動作する原子力顕微鏡(AFM)を紹介する。器械はサンプルの3D表面の地形および細胞壁ヤングの係数およびターゴール圧力を含む機械特性の同時獲得を可能にする。...

原子間力顕微鏡を用いて植物細胞と植物組織の機械的特性とターゴール圧を測定

ここでは、細胞内の細胞骨格を撮影する上皮状の微小管細胞骨格を生細胞イメージングするためのプロトコルを説明し、物理的な力の変化に対する応答を監視する。...

ミクロチューブ細胞骨格の生細胞イメージングと シロイヌナズナの 微小機械的操作

原子間力顕微鏡インデンテーションプロトコルは、正常または制約された成長中(すなわち、水不足下)の組織または器官の特定の細胞の細胞壁の物理的特性の役割を解剖する可能性を提供する。...

生きた シロイヌナ ズナ根の表皮細胞の物性を調べる原子間力顕微鏡

原子間力顕微鏡(AFM)プローブチップが試料表面に与える接触面積と力を定量化することで、ナノスケールの機械的特性測定が可能になります。弾性率やその他のナノ機械的特性を測定するために、柔らかいサンプルと硬いサンプルの空気または流体にAFMカンチレバーベースのナノインデンテーションを実装するためのベストプラクティスについて説明します。...

原子間力顕微鏡カンチレバーを用いたナノインデンテーション:空気および流体中のナノスケールでの機械的特性測定

ショウジョウバエ、キイロショウジョウバエ、開発の初期段階はよくイメージングアプローチに適している細胞の形状の変更の数によって特徴付けられる。この記事では、ショウジョウバエの胚のライブ共焦点イメージングに必要な基本的なツールと方法を説明します、そして細胞化と呼ばれる細胞の形状変化に焦点を当てます。...

リビングでのイメージング、細胞の形状の変更ショウジョウバエ胚

細胞外マトリックスの剛性が強く、接着細胞の複数の動作に影響を与えます。マトリックスの剛性は、組織全体に空間的に変化し、様々な疾患状態の修正を受ける。ここでは、原子間力顕微鏡のmicroindentationを使用して、通常と線維化マウスの肺組織における剛性の空間的な変動を特徴付けるための方法を開発する。...

原子間力顕微鏡を用いた肺組織のマイクロメカニカル特性

学ぶ原子間力顕微鏡を用いた生きた植物器官の初代細胞壁の力学特性評価法。非固定・非脱水サンプルのヤング率測定により、植物の成長と形態形成における細胞壁バイオメカニクスの理解を深めます。

原子間力顕微鏡を用いた生きた植物器官の初代細胞壁の力学特性評価

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