Name: 造血サイトカインによる腫瘍ワクチン接種を用いた実験的黒色腫免疫療法モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-02-24T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 15 s
Description: 学ぶB16-F10黒色腫細胞を用いた腫瘍ワクチン接種プロトコル。Flt3L発現細胞の培養・照射・移植、およびフローサイトメトリーによる腫瘍内免疫細胞解析の手法を解説。免疫療法研究への応用価値を示す。

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B16-Flt3L細胞を提供してくださったStephen Schoenberger博士と、LJI動物およびフローサイトメトリー施設のスタッフに素晴らしいサポートを提供してくださったことに感謝します。

研究で使用されたすべてのマウスは、温度と湿度が制御された特定の病原体のない条件下で、ラホーヤ免疫学研究所(LJI)のビバリウムに維持および収容されました。動物実験は、LJI動物管理委員会によって承認されたガイドラインとプロトコルに従って、8〜14週齢の雌C57BL / 6マウスで実施されました。
1. 移植用培養腫瘍細胞の調製
<ol><li>B16-F10メラノーマ細胞を、10%熱不活化FBS、2 mMグルタミン、1 mMピルビン酸ナトリウム、1 mM MEM非必須アミノ酸、およびペニシリンとストレプトマイシンの各100 U/mLを含むIscoveの改変ダルベッコ培地(IMDM)で培養します。細胞株を5%CO2下で37°Cに維持する。</li>
	<li>175Tフラスコに1.5-2 x 106 B16-F10細胞を播種し、2日間培養する。細胞が75%〜80%コンフルエントになったら細胞を収穫します。</li>
	<li>培養液を取り出し、フラスコをPBSで1回洗浄します。PBSを吸引し、5 mLの0.25%トリプシン-EDTAを加えた後、培養フラスコの縁を強くたたきます。</li>
	<li>15 mLの培養液を加えてトリプシン-EDTAを中和し、フラスコの内容物を50 mLの遠沈管に注ぎます。皿の表面を10 mLのPBSで洗浄し、同じ50 mLのチューブに注ぎます。</li>
	<li>細胞を200 x gで5分間遠心分離します。上清を捨て、チューブの底を指で軽くたたくことで細胞ペレットを壊します。</li>
	<li>冷たい10 mLのPBSを加え、細胞懸濁液を穏やかにピペッティングします。次に、血球計算盤を使用して手動で細胞をカウントします。注射前に細胞を氷上に保管してください。</li>
</ol>2.腫瘍移植
<ol><li>ヒュームフード内で毎分1.0 Lのガス流量で5%イソフルランでマウスをガス麻酔します。マウスが完全に麻酔されたら、流量を2%イソフルランの維持用量に変更します。.このプロトコルでは、麻酔は、施設の動物の世話と使用のガイドラインに従って獣医によって行われました。</li>
	<li>マウスの左脇腹の毛を剃り、アルコールワイプを使用して注射部位を滅菌します。皮内(i.d.)30 G針を使用して、左脇腹の50 μLの冷たいPBSに5 x 105 細胞でB16-F10腫瘍細胞を移植します。 注:移植されたB16-F10腫瘍細胞の用量は、腫瘍の発生を成功させるために0.5〜5 x 105 細胞の範囲で調整する必要がある場合があります。</li>
	<li>移植後、電子デジタルノギスを使用して週に3回腫瘍の長さと幅を測定します。次の式を使用して腫瘍体積(mm3)を計算します。 腫瘍体積(mm3)=幅2 ×長さ×0.5 腫瘍が≥2mmのサイズに達したら、マウスを腫瘍ワクチンで治療する。 注:腫瘍は通常、5 x 105腫瘍細胞の移植後3日目に測定できます。より速いB16-F10腫瘍増殖速度は、雄のC57BL/6、Rag1-/-、またはRag2-/-γc-/-マウスで観察された。同様の観察が他の研究にも記載されています8。マウスの性別を一定に保つことをお勧めします。ただし、NIHは、生物医学研究における重要な生物学的変数として性別に重点を置いていることに注意してください。</li>
</ol>3. Flt3L発現B16-F10(B16-Flt3L)細胞のワクチン調製と注射
<ol><li>B16-Flt3L細胞を、8%熱不活化FBS、2 mMグルタミン、およびペニシリンとストレプトマイシンのそれぞれ100 U / mLを含むDMEMで、5%CO2下で37°Cに維持します。</li>
	<li>175Tフラスコに1 x 106 B16-Flt3L細胞を播種し、2日間培養する。ステップ1.3〜1.6に記載されているように、細胞が75%〜80%コンフルエントになったら細胞を回収し、1 mLの冷たいPBSに懸濁します。</li>
	<li>160 kV、25 mAのパラメータ設定でX線照射器を使用して、150 Gy線量のガンマ線を細胞に照射します。注射前にトリパンブルー染色により細胞生存率をカウントして確認する。</li>
	<li>前述のようにマウスをガス麻酔し、アルコールワイプを使用して注射部位を滅菌します。最初の細胞移植後3、6、および9日目に、原発腫瘍の部位から~1 cm離れた、元の腫瘍移植と同じ脇腹に、50 μLの冷たいPBSで1 x 106 照射されたB16-Flt3L細胞をマウスに皮内注射します。</li>
	<li>原発腫瘍と区別するために、ワクチン注射部位を色付きのペンでマークします。 注:0.5 x 105 B16-F10細胞を最初に移植する場合は、8、11、および14日目にワクチン治療を行うことをお勧めします。</li>
</ol>4. 腫瘍内免疫細胞単離
<ol><li>実験終了時(腫瘍移植後15日目;図1)。</li>
	<li>各マウスから皮膚を含む腫瘍を外科的に除去し、1 mL 10%FBS/RPMI-1640培地を含む24ウェルプレートに入れます。体重を量る前にペーパータオルを使用して腫瘍を乾かします。</li>
	<li>腫瘍を細かく切ります。2 mLの消化バッファー(RPMI-1640培地中の100 μg/mL TLリベラーゼおよび200 μg/mL DNase I)を加え、37°Cで25分間インキュベートします。</li>
	<li>10 mLの10%FBS/RPMI-1640培地を加えて消化を停止します。25 mLの血清学的ピペットを使用して細胞を移し、1 mLシリンジのプランジャーを使用して40 μmの細胞ストレーナーで組織を粉砕します。</li>
	<li>細胞を500 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 ペレットをPBS中の40%密度勾配特異的培地の5mLに再懸濁し、1倍濃度に希釈する)。</li>
	<li>PBSを含む80%密度勾配特異的培地5 mLの上に細胞懸濁液をゆっくりと加えます。室温(RT)で23分間、低ブレーキ設定で325 x g で細胞を遠心分離します。</li>
	<li>遠心分離後、40%と80%の密度勾配特異的培地の間の界面にある白血球層を注意深く収集し、40 μmの細胞ストレーナーに通します。細胞を500 x g で4°Cで5分間遠心分離します。</li>
	<li>ペレットを2 mLの赤血球(RBC)溶解バッファー中でRTで5分間インキュベートします。インキュベーション後、10 mLの10%FBS/RPMI-1640培地を加えて、RBC溶解バッファーをクエンチします。</li>
	<li>細胞を500 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 細胞を0.5 mLの10%FBS/RPMI-1640培地に再懸濁し、さらなる分析のために使用前に細胞の総数をカウントします。 注:フローサイトメトリー分析による免疫細胞サブセットのゲーティング戦略のためのコントロールとして脾臓またはdLNを収集します。上記の細胞単離方法に従いますが、次の変更を加えます:1 mLシリンジのプランジャーを使用して、70 μmメッシュフィルターで組織を粉砕します。10%FBS/RPMI-1640培地で組織を洗浄し、単一細胞懸濁液を取得します。説明されているようにRBCを溶解します。</li>
</ol>5. フローサイトメトリー解析
注:白血球層から採取された細胞には、免疫細胞と腫瘍細胞が含まれています。2枚の独立した染色パネルをお勧めします。
<ol><li>表面染色<ol><li>細胞を96ウェルのV字型底板に移します。細胞をPBSで洗浄し、細胞生存率色素(50-100 μL/ウェル)でRTで15分間染色します。</li>
		<li>細胞を500 x gで4°Cで5分間遠心分離します。 表面マーカーをFACSバッファー(1%FBSおよび0.05%NaN3 PBS中)の混合抗体(材料の表に記載されています)で氷上で30分間染色します(50-100 μL /ウェル)。</li>
		<li>細胞を500 x g で5分間遠心分離し、FACSバッファーで2回洗浄します。</li>
		<li>細胞固定バッファー(50-100 μL/ウェル)で細胞を氷上で35分間固定します。細胞を500 x g で5分間遠心分離し、FACSバッファーで2回洗浄します。</li>
		<li>サンプルを4°CのFACSバッファー(150-200 μL /チューブ)に保存し、光から保護します。フローサイトメーターでサンプルを取得します。DCおよびT細胞集団については、図 2B および 図3Aに示すゲーティング戦略に従ってください。 注:骨髄性DCの染色には、表面抗体のインキュベーション(ステップ5.1.2)の前に、FCブロッカー(ラット抗マウスCD16 / CD32)を氷上で15分間インキュベートすることをお勧めします。</li>
	</ol></li>
	<li>生体外再刺激時のサイトカイン分析<ol><li>細胞を完全培地(10%FBS、10 mM HEPES、pH 7.2-7.6、0.1 mM非必須アミノ酸、1 mMピルビン酸ナトリウム、各100 U/mLペニシリンおよびストレプトマイシン、50 μM 2-メルカプトエタノール、および2 mM L-グルタミンを添加したRPMI-1640)にプレートし、50 ng/mLのPMAと1 μMのイオノマイシンをタンパク質輸送阻害剤の存在下で5%CO2下で37°Cで4時間刺激します。</li>
		<li>上記のステップ5.1で説明したように、表面マーカーの表面染色を実行します。</li>
		<li>透過処理液(50-100 μL/ウェル)を加え、RTで5分間インキュベートして細胞内染色を行います。サイトカインまたは核タンパク質に特異的な抗体を含む細胞を透過処理溶液(50-100 μL/ウェル)中で、氷上で60分間、または4°Cで一晩インキュベートします。</li>
		<li>細胞を500 x g で5分間遠心分離し、FACSバッファーで2回洗浄します。サンプルは4°Cで保管し、光から保護してください。フローサイトメーターでサンプルを取得します。 注:最適な染色を行うには、必要に応じて抗体希釈を調整する必要がある場合があります。</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Zhang, Y., Zhang, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+history+and+advances+in+cancer+immunotherapy%3A+understanding+the+characteristics+of+tumor-infiltrating+immune+cells+and+their+therapeutic+implications%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+%26+Molecular+Immunology%22%5BJournal%5D)">The history and advances in cancer immunotherapy: understanding the characteristics of tumor-infiltrating immune cells and their therapeutic implications.</a> Cell & Molecular Immunology. 17 (8), 807-821 (2020).</li>
<li>Banchereau, J., Steinman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+cells+and+the+control+of+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dendritic cells and the control of immunity.</a> Nature. 392 (6673), 245-252 (1998).</li>
<li>Banchereau, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunobiology+of+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Immunology%22%5BJournal%5D)">Immunobiology of dendritic cells.</a> Annual Review of Immunology. 18, 767-811 (2000).</li>
<li>Martinez-Lostao, L., Anel, A., Pardo, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+do+cytotoxic+lymphocytes+kill+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">How do cytotoxic lymphocytes kill cancer cells.</a> Clinical Cancer Research. 21 (22), 5047-5056 (2015).</li>
<li>Maraskovsky, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dramatic+increase+in+the+numbers+of+functionally+mature+dendritic+cells+in+Flt3+ligand-treated+mice%3A+multiple+dendritic+cell+subpopulations+identified%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Experimental+Medicine%22%5BJournal%5D)">Dramatic increase in the numbers of functionally mature dendritic cells in Flt3 ligand-treated mice: multiple dendritic cell subpopulations identified.</a> Journal of Experimental Medicine. 184 (5), 1953-1962 (1996).</li>
<li>Talmadge, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intratumoral%2C+injection+of+adenoviral+Flt3+ligand+has+therapeutic+activity+in+association+with+increased+intratumoral+levels+of+T+cells+but+not+dendritic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Intratumoral, injection of adenoviral Flt3 ligand has therapeutic activity in association with increased intratumoral levels of T cells but not dendritic cells.</a> Blood. 104 (11), 5280(2004).</li>
<li>Curran, M. A., Allison, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+vaccines+expressing+flt3+ligand+synergize+with+ctla-4+blockade+to+reject+preimplanted+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22American+Association+for+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Tumor vaccines expressing flt3 ligand synergize with ctla-4 blockade to reject preimplanted tumors.</a> American Association for Cancer Research. 69 (19), 7747-7755 (2009).</li>
<li>Simon, S. R., Ershler, W. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hormonal+influences+on+growth+of+B16+murine+melanoma%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+National+Cancer+Institute%22%5BJournal%5D)">Hormonal influences on growth of B16 murine melanoma.</a> Journal of the National Cancer Institute. 74 (5), 1085-1088 (1985).</li>
<li>Broz, M. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissecting+the+tumor+myeloid+compartment+reveals+rare+activating+antigen-presenting+cells+critical+for+T+cell+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Dissecting the tumor myeloid compartment reveals rare activating antigen-presenting cells critical for T cell immunity.</a> Cancer Cell. 26 (6), 938(2014).</li>
<li>Salmon, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expansion+and+activation+of+CD103%28%2B%29+dendritic+cell+progenitors+at+the+tumor+site+enhances+tumor+responses+to+therapeutic+PD-L1+and+BRAF+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22Immunity%22%5BJournal%5D)">Expansion and activation of CD103(+) dendritic cell progenitors at the tumor site enhances tumor responses to therapeutic PD-L1 and BRAF inhibition.</a> Immunity. 44 (4), 924-938 (2016).</li>
<li>Liu, H. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Leveraging+the+Treg-intrinsic+CTLA4-PKCeta+signaling+pathway+for+cancer+immunotherapy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+for+Immunotherapy+Cancer%22%5BJournal%5D)">Leveraging the Treg-intrinsic CTLA4-PKCeta signaling pathway for cancer immunotherapy.</a> Journal for Immunotherapy Cancer. 9 (9), 002792(2021).</li>
<li>Kong, K. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+kinase+C-eta+controls+CTLA-4-mediated+regulatory+T+cell+function%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Immunology%22%5BJournal%5D)">Protein kinase C-eta controls CTLA-4-mediated regulatory T cell function.</a> Nature Immunology. 15 (5), 465-472 (2014).</li>
</ol>

著者は開示するものは何もありません。

ここで説明するプロトコルは、アリソンのグループによる研究に基づいています。その結果、B16-Flt3LワクチンとCTLA-4遮断の組み合わせは生存率と腫瘍増殖に相乗効果を示したが、B16-Flt3Lワクチンまたは抗CTLA-4抗体治療のみを受けたマウスでは腫瘍増殖の減少は見られなかったことが示された7。最近の研究では、Treg11の接触依存的な抑制活性の調節に重要な役割を果たす新しいTreg-固有のCTLA4-PKCηシグナル伝達経路が明らかになりました。B16-Flt3Lワクチン単独治療またはTreg特異的PKCη欠失とのワクチン併用は、アリソンの研究(1 x 104)細胞よりもB16-F10メラノーマ細胞の数が多い(0.5-5 x 105)場合、腫瘍の増殖を有意に減少させました。メラノーマ細胞またはマウスの供給源の微妙な違いがこの違いを説明する可能性があります。したがって、移植された腫瘍細胞の数を滴定することをお勧めします。原発腫瘍におけるCD8+ T細胞の浸潤の増加は、以...

がん免疫療法は、毒性の低い副作用とより耐久性のある反応に基づいて、有望な治療戦略として認識されています。腫瘍溶解性ウイルス療法、癌ワクチン、サイトカイン療法、モノクローナル抗体、養子細胞移植(CAR-T細胞またはCAR-NK)、免疫チェックポイント遮断など、いくつかのタイプの免疫療法が開発されています1。
がんワクチンの場合、全細胞ベースのワクチン、タンパク質またはペプチドワクチン、RNAまたはDNAワクチンなど、さまざまな形態の治療用ワクチンがあります。ワクチン接種は、抗原提示細胞(APC)が腫瘍特異的抗原を含む腫瘍抗原を処理し、それらを免疫原性の形でT細胞に提示する能力に依存しています。樹状細胞(DC)は最も強力なAPCであることが知られており、抗腫瘍免疫に重要な役割を果たすと考えられています2,3。これらの細胞は腫瘍抗原を取り込んで処理した後、ドレナージュリンパ節(dLN)に移動して、T細胞受容体(TCR)と共刺激分子の関与を介して腫瘍特異的Tエフェクター(Teff)細胞をプライミングおよび活性化します。これにより、腫瘍特異的な細胞傷害性T細胞(CTL)が分化および増殖し、腫瘍に浸潤して腫瘍細胞を死滅させます4。したがって、DCの活性化と成熟は、腫瘍抗原に対する免疫を刺激するための魅力的な戦略を表しています。
Flt3Lは、MHCクラスII、CD11c、DEC205、およびCD86タンパク質を発現する機能的に成熟したDCの成熟と拡大を促進することが知られています5。静脈内ではなく腫瘍内、 Flt3L 遺伝子を組み込んだアデノウイルスベクター(Adv-Flt3L)の投与は、オルトピー腫瘍に対する免疫治療活性を促進することが示されている6。Flt3Lは、DCによる腫瘍抗原のクロスプレゼンテーションを増強し、抗腫瘍応答を増加させる方法として、レトロウイルス形質導入Flt3Lを安定的に発現する照射B16-F10細胞からなる腫瘍細胞ベースのワクチンにも使用されています。ここで説明するB16-Flt3L腫瘍ワクチン接種のプロトコルは、ジェームズ・アリソン博士のグループ7によって発表された研究に基づいています。この論文では、CTLA-4遮断と組み合わせたB16-Flt3Lワクチンが相乗的に確立された黒色腫の拒絶反応を誘発し、生存期間が延びることを報告しました。
このプロトコルの目標は、黒色腫の前臨床免疫療法モデルを提供することです。ここでは、腫瘍ワクチンの調製方法や移植方法、固形腫瘍由来の腫瘍内免疫細胞の組成や機能を解析する方法の詳細な手順について説明する。

<table><tbody><tr><td>0.25%トリプシン-EDTA&nbsp;</td><td>Gibco</td><td>25200-056</td><td></td></tr><tr><td>10% 熱不活化 FBS</td><td>オメガ サイエンティフィック</td><td>FB-02&nbsp;</td><td>ロット# 209018</td></tr><tr><td>30G ニードル</td><td>BD Biosciences</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>96 ウェル V 字型底板</td><td>SARSTEDT</td><td>83.3926.500</td><td></td></tr><tr><td>B16 細胞株 発現 Fms-like tyrosine kinase 3 ligand (B16-Flt3L)</td><td>Stephen Schoenberger 博士の贈り物、LJI&nbsp;</td><td></td><td>Flt3L cDNAは、参照5、補足図1</td></tr><tr><td>B16-F10細胞株</td><td>ATCC</td><td>CRL-6475</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge 5810R</td><td>Eppendorf</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cytofix固定バッファー&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>BDB554655</td><td>細胞固定バッファー(4.2% PFA)&nbsp;</td></tr><tr><td>Cytofix/Cytopermキット&nbsp;</td><td>BD Biosciences</td><td>554714</td><td>固定/透過化ソリューションキット</td></tr><tr><td>DNase I</td><td>Sigma</td><td>11284932001</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium&nbsp;(DMEM)&nbsp;</td><td>Corning</td><td>10013CV</td><td></td></tr><tr><td>電子デジタルキャリパー</td><td>Fisherbrand</td><td>14-648-17</td><td></td></tr><tr><td>FlowJo ソフトウェア&nbsp;</td><td>Tree Star</td><td></td><td>Flow cytometer data analysis</td></tr><tr><td>GolgiStop (protein transport inhibitor)</td><td>BD Biosciences</td><td>554724</td><td>1:1500 dilution</td></tr><tr><td>HEPES (1M)</td><td>Gibco</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>Ionomycin</td><td>Sigma</td><td>I0634</td><td></td></tr><tr><td>Iscove'の修正ダルベッコ'Thermo</td> <td>Fisher</td><td>12440053</td><td></td></tr><tr><td>LSR-II サイトメーター&nbsp;</td><td>BD Biosciences、</td><td></td><td>フローサイトメーター</td></tr>、<tr><td>MEM、非必須アミノ酸、</td><td>Gibco</td><td>11140-050</td><td></td></tr>、<tr><td>ペニシリン、ストレプトマイシン&nbsp;</td><td>ギブコ</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>パーコレクション&nbsp;</td><td>GEヘルスケアライフサイエンス</td><td>GE17-0891-02</td><td>密度勾配特異的培地</td></tr><tr><td>PMA</td><td>Sigma</td><td>P1585</td><td></td></tr><tr><td>赤血球溶解バッファー Hybri-Max液体</td><td>Sigma</td><td>R7757-100ML</td><td></td></tr><tr><td>RPMI 1640 培地</td><td>コーニング</td><td>10-040-CV</td><td></td></tr><tr><td>RS2000 X線照射器</td><td>Rad Source Technologies</td><td></td><td></td></tr> ピル<tr><td>ビン酸ナトリウム</td><td>Gibco</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>滅菌セルストレーナー 40 &mu;m</td><td>フィッシャーブランド</td><td>22-363-547</td><td></td></tr><tr><td>滅菌セルストレーナー 70 &mu;m</td><td>Fisherbrand</td><td>22-363-548</td><td></td></tr><tr><td>TL Liberase</td><td>Roche</td><td>477530</td><td></td></tr><tr><td>Zombie Aqua fixable viability kit</td><td>BioLegend</td><td>423101</td><td></td></tr><tr><td>抗体</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>抗 mCD45</td><td>BioLegend</td><td>103135</td><td>クローン: 30-F11 蛍光色素: BV570 希釈: 1:200</td></tr><tr><td>抗 mCD3&epsilon;</td><td>BioLegend</td><td>100327</td><td>クローン:145-2C11 蛍光色素:PerCP-Cy5.5 希釈率:1:200</td></tr><tr><td>抗mCD8</td><td>BioLegend</td><td>100730 100724</td><td>クローン:53-6.7 蛍光色素:Alexa Fluor 700、Alexa Fluor 647 希釈:1:200</td></tr><tr><td>抗mCD4</td><td>BioLegend</td><td>100414</td><td>クローン:GK1.5 蛍光色素:APC-Cy7 希釈:1:200</td></tr><tr><td>抗mFoxP3</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>11577382</td><td>クローン:FJK-16s 蛍光色素分子:FITC 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>Anti-m/hGzmB</td><td>BioLegend</td><td>372208</td><td>クローン:QA16A02 蛍光色素分子:PE 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>抗 mIFNg</td><td>BioLegend</td><td>505826</td><td>クローン:XMG1.2 蛍光色素分子:PE-Cy7 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>Anti-mCD19</td><td>BioLegend</td><td>115543</td><td>クローン:6D5 蛍光色素分子:BV785 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>抗mGr1</td><td>BioLegend</td><td>108423</td><td>クローン:RB6-8C5 蛍光色素分子:APC/Cy7 希釈率:1:200</td></tr><tr><td>抗mCD11b</td><td>BioLegend</td><td>101223</td><td>クローン:M1/70 蛍光色素:パシフィックブルー 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>抗mF4/80</td><td>BioLegend</td><td>123114</td><td>クローン:BM8 蛍光色素分子:PECy7 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>抗mCD11c</td><td>BioLegend</td><td>117328</td><td>クローン:N418 蛍光色素分子:PerCP Cy5.5 希釈率:1:100</td></tr><tr><td>抗mMHCII</td><td>BioLegend</td><td>107622</td><td>クローン:M5/114.15.2 蛍光色素分子:AF700 希釈率:1:400</td></tr><tr><td>抗mCD103</td><td>BioLegend</td><td>121410</td><td>クローン:2E7 蛍光色素:Alexa Fluor 647 希釈率:1:200</td></tr><tr><td>抗mCD86</td><td>BioLegend</td><td>105007</td><td>クローン:GL-1 蛍光色素:PE 希釈率:1:200</td></tr><tr><td>FC-blocker(ラット抗マウスCD16/CD32)</td><td>BD Biosciences</td><td>553141</td><td>クローン:2.4G2 希釈:1:200</td></tr></tbody></table>

造血サイトカインによる腫瘍ワクチン接種を用いた実験的黒色腫免疫療法モデル

Experimental Melanoma Immunotherapy Model Using Tumor Vaccination with a Hematopoietic Cytokine

Fms様チロシンキナーゼ3リガンド(Flt3L)は、樹状細胞(DC)の生存および分化を促進する造血サイトカインである。自然免疫を活性化し、抗腫瘍反応を高めるために腫瘍ワクチンに使用されています。このプロトコルは、Flt3L発現B16-F10メラノーマ細胞からなる細胞ベースの腫瘍ワクチンを使用した治療モデルと、腫瘍微小環境(TME)における免疫細胞の表現型および機能分析を示しています。培養腫瘍細胞の調製、腫瘍移植、細胞照射、腫瘍サイズ測定、腫瘍内免疫細胞単離、およびフローサイトメトリー分析の手順について説明します。このプロトコルの全体的な目標は、前臨床固形腫瘍免疫療法モデルと、腫瘍細胞と浸潤免疫細胞との関係を研究するための研究プラットフォームを提供することです。ここで説明する免疫療法プロトコルは、黒色腫の癌治療効果を改善するために、免疫チェックポイント遮断(抗CTLA-4、抗PD-1、抗PD-L1抗体)または化学療法などの他の治療法と組み合わせることができます。

移植されたB16-F10細胞の目に見える黒い点は、通常、腫瘍移植後~3日後に皮膚表面に観察されます。マウスは、腫瘍結節が≥2mmのサイズに達してから3、6、および9日後に腫瘍ワクチンで治療されます。ワクチン接種マウス群~腫瘍移植後2週間で腫瘍増殖の有意な減少が観察されました(図1)。実験の最後に、腫瘍内免疫細胞を単離し、それらの数と細胞表面マーカー発現、および上記のように短時間のin vitro刺激後のサイトカイン産生を分析しました。白血球層から採取された細胞は依然として多くの腫瘍細胞を含み、リンパ球集団を容易に定義することはやや困難である。したがって、フローサイトメトリー解析における腫瘍内免疫細胞サブセットの適切なゲーティングのために、脾細胞を並行して使用することが推奨されます(図2A)。ここでは、CD103+CD11c+DC、CD8+、CD4+、およびTregのゲーティング戦略を補償マトリックス(表1および<strong...

このプロトコルは、Flt3L発現B16-F10黒色腫を伴う細胞ベースの腫瘍ワクチン接種を使用した癌免疫療法モデルを提示します。このプロトコルは、培養腫瘍細胞の調製、腫瘍移植、細胞照射、腫瘍増殖の測定、腫瘍内免疫細胞の分離、フローサイトメトリー分析などの手順を示しています。

Fms-like tyrosine kinase 3 ligand (Flt3L) is a hematopoietic cytokine that promotes the survival and differentiation of dendritic cells (DCs). It has been ...

このプロトコルは、臨床固形腫瘍免疫療法モデルと、腫瘍細胞と浸潤免疫細胞との関係を研究するための研究プラットフォームを提供します。この細胞ベースの腫瘍ワクチンは、便利で使いやすく、チェックポイント遮断などの他の治療法と組み合わせて、より強力で高い腫瘍免疫をもたらすことができる相加的または相乗的な効果を達成することができます。手順のデモンストレーションを手伝うのは、私の研究室の研究技術者であるアン・バランシオです。まず、B16-F10メラノーマ細胞をIMDMで培養し、10%熱不活性FBS、2ミリモルグルタミン、1ミリモルピルビン酸ナトリウム、1ミリモルMEM非必須アミノ酸、およびペニシリンとストレプトマイシンのそれぞれ1ミリリットルあたり100単位を含みます。細胞株を5%二酸化炭素で摂氏37度に維持します。B16-F10細胞を、本文に記載されているように播種して収穫します。培養液を取り出し、フラスコをPBSで1回洗浄します。PBSを吸引し、5ミリリットルの0.25%トリプシン-EDTAを加え、続いて培養フラスコの縁を強くたたきます。15ミリリットルの培養液を加えてトリプシン-EDTAを中和し、フラスコの内容物を50ミリリットルの遠沈管に注ぎます。皿の表面を10ミリリットルのPBSで洗い、同じ50ミリリットルの遠沈管に注ぎます。細胞を200 RCFで5分間遠心分離します。上清を捨て、チューブの底を指で軽くたたくことで細胞ペレットを壊します。冷たい10ミリリットルのPBSを加え、細胞懸濁液を静かにピペットで固めます。次に、血球計算盤を使用して手動で細胞をカウントします。注射前に細胞を氷上に保管してください。30ゲージ針を用いて、左脇腹の50マイクロリットルの冷たいPBSに500,000個の細胞B16-F10腫瘍細胞を皮内移植した。移植されたB16-F10腫瘍細胞の用量は、腫瘍発生を成功させるために50, 000〜500, 000細胞の範囲で調整する必要があるかもしれません。実施後、電子デジタルキャリパーを使用して週に3回腫瘍の長さと幅を測定します。腫瘍体積を計算し、テキスト原稿に記載されているように腫瘍が2ミリメートルのサイズに達したときに腫瘍ワクチンでマウスを治療します。160キロボルト、25ミリアンペアに設定したX線照射器を用いて、150グレイ線量のガンマ線を細胞に照射する。注射前にトリパンブルー染色により細胞生存率をカウントして確認する。100万個の照射B16-Flt3L細胞を50マイクロリットルの冷たいPBSにマウスに皮内注射し、元の腫瘍移植と同じ脇腹に注入します。最初の細胞移植後3、6、および9日目の原発腫瘍の部位から約1センチメートル。ワクチン注射部位を色付きのペンでマークして、原発腫瘍と区別します。50, 000個のB16-F10細胞が最初に移植された場合、8、11、14日目にワクチン治療を行うことが推奨されます。各安楽死マウスから皮膚を有する腫瘍を外科的に除去し、それを1ミリリットルの10%FBS RPMI 1640培地を含む24ウェルプレートに入れた。腫瘍を2ミリリットルの消化バッファーで細かく切り、摂氏37度で25分間インキュベートします。10ミリリットルの10%FBS RPMI 1640培地を加えて消化を停止します。25ミリリットルの血清学的ピペットを使用して、細胞を40マイクロメートルのセルストレーナーに移します。次に、1ミリリットルの注射器のプランジャーを使用して組織を粉砕します。細胞を500 RCFで摂氏4度で5分間遠心分離します。ペレットを1倍濃度に希釈したPBS中の5ミリリットルの40%濃度勾配特異的培地に再懸濁します。PBSを含む5ミリリットルの80%密度勾配特異的培地の上に細胞懸濁液をゆっくりと加えます。室温で23分間、低ブレーキ設定で325 RCFでセルに遠心分離します。遠心分離後、40%と80%の密度勾配特異的培地の間の界面にある白血球層を注意深く収集し、40マイクロメートルの細胞ストレーナーに通します。細胞を500 RCFで摂氏4度で5分間遠心分離します。ペレットを2ミリリットルの赤血球溶解バッファー中で室温で5分間インキュベートします。インキュベーション後、10ミリリットルの10%FBS RPMI 1640培地を加えて、RBC溶解バッファーをクエンチします。細胞を400 RCFで摂氏4度で5分間遠心分離します。細胞を0.5ミリリットルの10%FBS RPMI 1640培地に再懸濁し、さらなる分析のために使用前に細胞の総数を数えます。フローサイトメトリー分析による免疫細胞サブセットのゲーティング戦略のコントロールとして、脾臓または排液リンパ節を収集します。本文に記載されている細胞単離方法に従ってください。移植されたB16-F10細胞の目に見える黒い点は、通常、腫瘍移植の約3日後に皮膚表面に観察されました。マウスは、腫瘍結節が2ミリメートルのサイズに達するか超えてから3、6、および9日後に腫瘍ワクチンで治療されました。腫瘍移植後約2週間でワクチン接種マウス群において有意な腫瘍増殖減少が観察された。白血球層から採取した細胞は腫瘍細胞を多く含んでいるため、リンパ球集団を容易に定義することは困難であった。したがって、フローサイトメトリー分析における腫瘍内免疫細胞サブセットの適切なゲーティングのために、脾細胞を並行して使用しました。CD103陽性、CD11C陽性DC、CD8陽性、CD4陽性、およびTregのゲーティング戦略を補償マトリックスとともにプロットしました。取得したアカウントの代表的なデータと各母集団の頻度も提供されました。ワクチン接種マウスからの腫瘍内CD103陽性、CD11C陽性DCは、共刺激性リガンドCD86の有意に上昇した発現を示した。ワクチン接種マウスはまた、CD8陽性およびCD4陽性、Foxp3陰性細胞、ならびにCD8陽性グランザイムB陽性およびインターフェロンガンマ陽性CTLにおける腫瘍浸潤の増加を示した。原発腫瘍と腫瘍ワクチンとの間に十分な距離を保ってください。この物理的分離は、2つの腫瘍インプラント間の潜在的な融合を回避するために重要です。

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