Name: ペプチドポロキサミンナノ粒子を用いた培養細胞における in vitro 転写mRNAの効率的なトランスフェクション (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-08-17T14:20:00.000+00:00
Duration: 10 min 16 s
Description: 学ぶペプチドポロキサミンナノ粒子を用いた培養細胞へのin vitro転写mRNAトランスフェクション法。マイクロ流体混合装置でナノ粒子を調製し、気道上皮細胞で高効率な遺伝子導入を実現する技術です。

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この研究は、中国国家自然科学財団(NSFC、Grant No. 82041045 and 82173764)、中国科学技術部による病因形成および伝染病予防技術システムに関する研究(2021YFC2302500)、重慶才能:例外的な若い才能プロジェクト(CQYC202005027)、重慶自然科学財団(cstc2021jcyj-msxmX0136)の支援を受けた。著者らは、流体力学的直径(nm)と多分散度指数(PDI)を測定したXiaoyan Ding博士に感謝している。

1. 化学修飾mRNAの インビトロ 転写
注:RNaseは実験室の溶液、器具の表面、髪、皮膚、ほこりなどの環境に遍在しているため、ヌクレアーゼフリーのチューブ、試薬、ガラス製品、ピペットチップなどを使用する必要があります。使用前にベンチの表面とピペットを徹底的に清掃し、RNase汚染を避けるために手袋を着用してください。
<ol><li>DNAテンプレートの線形化を行います。<ol><li>T7ポリメラーゼプロモーター、5'非翻訳領域(UTR)、3'UTR、およびポリ(A)テールに挟まれたMetridia luciferase(MetLuc)のオープンリーディングフレーム(ORF)を合成し、細菌で発現されるPUC57ベクターにクローニングします( 材料表を参照)。 注:DNAテンプレートのコード配列は、 補足ファイル1に提供されています。</li>
		<li>細菌を培養し、細菌を溶解し、対応するカラムによりプラスミドDNAを精製する( 材料表のプラスミドDNA抽出キットを参照のこと)。</li>
		<li>2 μL の BamHI、2 μL の KpnI ( 材料表参照)、および 2 μg のプラスミド DNA を含む 50 μL の反応を 37 °C で 1 時間行い、DNA テンプレートの線形化を達成します。</li>
	</ol></li>
	<li> インビトロ転写を行い、キャップなし-IVT mRNAを生成します。<ol><li>T7転写キットとプソイドウリジン( 材料表参照)を用いて、10 μL (0.8-1 μg) の直鎖状化 DNA テンプレート、1.5 μL (150 mM) の ATP、擬似 UTP、GTP、および CTP の 2 μL、10 x 転写バッファー 2 μL、1 μL の T7 酵素、および 1 μL のヌクレアーゼフリー水 (NF-water) を使用して、1 μL の反応で mRNA 合成を行います。上記の成分を十分に混合し、37°Cで3時間インキュベートする。</li>
	</ol></li>
	<li>テンプレート DNA を削除します。<ol><li>転写処理後にDNase(RNase非含有)を1 μL(1 U)加え、37°Cで15分間インキュベートする。</li>
	</ol></li>
	<li>塩化リチウム沈殿を用いてキャップなし-IVT mRNA精製を行う。<ol><li>10 mM の作業濃度で塩化リチウム( 材料表を参照)を使用して、キャップされていない IVT mRNA を精製します。50 μL の 10 mM 塩化リチウムを 20 μL のキャップなし IVT mRNA 溶液に加えます。</li>
		<li>全量を十分に混合し、−20°Cで1時間冷やす。キャップなし IVT mRNA を 12,000 x g で 12 分間収集すると、各 20 μL 反応から 80 ~ 120 μg のキャップなし IVT mRNA が日常的に生成されます。</li>
	</ol></li>
	<li>IVT mRNAキャッピングを行う。<ol><li>キャップ1キャッピングシステムを使用してIVT mRNAキャッピングを実行します( 材料表を参照)。簡単に説明すると、65°Cで10分間加熱することによって50 μgの非キャップIVT mRNAの二次構造を除去し、次いで、2.5 μLのs-アデノシルメチオニン(SAM)(20 mM)および4 μLの2'-O-メチルトランスフェラーゼ(100 U)を用いてm7Gキャップ構造を修飾することによって調製されたキャップ1と、37°Cで30〜60分間100μLの反応で切断されたキャップ1と連結する。</li>
		<li>250 μL の 10 mM 塩化リチウムを使用して 100 μL のキャップ付き IVT mRNA を精製し、50 μL の NF 水で希釈します。</li>
	</ol></li>
	<li>キャップ付きIVT mRNAの純度と分子サイズを決定します。<ol><li>キャップ付きIVT mRNAの濃度を紫外可視分光光度計で測定します。RNAマーカー( 材料表参照)を用いて、18%ホルムアルデヒドを含む1%ホルムアルデヒド変性アガロースゲル(電圧は120V)中のキャップ付きIVT mRNAの分子サイズを分析します。キャップなし IVT mRNA およびキャップ付き IVT mRNA が -80 °C で保存されていることを確認します。 注:IVT mRNAは、A 260/A280比が1.8-2.1、A260/A230比が2.0またはわずかに高い純度で良好であると考えられた。</li>
	</ol></li>
</ol>2. IVT mRNA/PP-sNp の生成
<ol><li>T704( 材料表参照)をNF水に可溶化することによりポロキサミン704(T704)原液を調製し、10mg/mL原液を得た。調製した溶液を4°Cで保存する。 注:T704は、ポリ(プロピレンオキシド)(PPO)ブロックおよびポリ(エチレンオキシド)(PEO)ブロック24の4つの鎖に結合したエチレンジアミン中心基からなるX字型構造を含む。T704の分子量(Mw)は5500である。</li>
	<li>合成ペプチド(sPep、 材料表参照)を可溶化することにより原液を調製し、sPepを可溶化することにより(配列:KETWWETWWTEWKKKRRRRRKKKACSE RSMNFCG)をNF水中に投入し、4°Cで保存して2mg/mLの原液を得た。</li>
	<li>IVT mRNAを氷上で解凍し(ステップ1)、チューブを開く前に室温で300 x g で3秒間短時間遠心分離することにより、IVT mRNA溶液を調製する。IVT mRNA溶液をNF水で0.04 μg/μLに希釈します。 注:IVT mRNAを使用して、可能な限りバイオセーフティキャビネットで作業することをお勧めします。</li>
	<li>NF水でsPep溶液を0.555 μg/μLに、T704溶液を8 μg/μLに希釈して、T704とsPep混合溶液を調製します。さらに使用する前に、混合溶液を室温で15分間インキュベートする。 メモ: 必要な N/P 比に基づいて、必要な sPep 成分を計算します。N/P比は、IVT mRNA内の負に荷電したリン酸基(P)の総数に対するsPep内の窒素残基(N)の総数である。T704とIVT mRNAの間の重量/重量(w/w)比に基づいて、必要なT704を計算します。N/P比が5、w/w比が100であることが必要です。</li>
	<li>以下の手順に従ってIVT mRNA/PP-sNp製剤を調製する。<ol><li>IVT mRNA溶液(ステップ3)を1mLシリンジに引き出し、シリンジ先端にエアギャップや気泡がないことを確認します。シリンジをカートリッジの片側の回転ブロックの隣にセットします。</li>
		<li>1mLシリンジにT704とsPepミックス溶液を充填します(ステップ4)。シリンジ先端の気泡やエアギャップをすべて取り除き、シリンジをポンプのもう一方の入口に入れます( 材料表を参照)。</li>
		<li>ポンプの流量比は1:1、総流量は4~10mL/minに設定してください。 注:6mL/分の総流量は、ここで提示された研究において最適である。</li>
		<li>10mLのRNaseフリー円錐管( 材料表参照)を置き、混合装置の流路の端部に混合IVT-mRNA/PP-sNp溶液を回収する。</li>
		<li>ポンプを実行してミキシングを開始し、パラメータが正しく入力されていることを確認します。ポンプが6秒間稼働し終わったら、円錐管からIVT-mRNA/PP-sNpサンプルを採取します。 注:PP-sNpは、マイクロ流体ミキサーを使用して生成しました(補足図1)。この装置は、定流量ポンプ、リンク装置、チップ、および固定装置を備える。混合プロセスでは、チップに接続された定流量ポンプが、予め設定された流量に従ってチップに液体を送達する。接続された定流量ポンプは、単一の出力チャネルでチップの複数の入力チャネルに接続することができます。チップを含むデバイスのコンポーネントは、市販のソースから入手し、合理的に組み立てられました( 材料表を参照)。IVT mRNA溶液およびT704-sPep混合溶液の流量および体積などのパラメータは、何らかの異なるセットアップが使用される場合、現在のプロトコルに表示されているものと異なる可能性があり、それに応じて最適化する必要があります。</li>
	</ol></li>
</ol>3. IVT-mRNA/PP-sNpの流体力学的直径と多分散度の測定
<ol><li>IVT mRNA/PP-sNp 溶液のアリコートを NF-水で希釈し (ステップ 2)、最終容量 1 mL を得ます。</li>
	<li>セミマイクロキュベット25を用いて流体力学的サイズおよび多分散度指数(PDI)を測定する。IVT mRNA/PP-sNp溶液をキュベットに加え、粒径計に入れます( 材料表を参照)。標準操作手順を設定し、[ 開始 ]をクリックしてデータ集録を開始します。</li>
</ol>4. トランスフェクション用細胞の調製
<ol><li>ヒト気管支上皮細胞(16HBE)および樹状細胞株(DC2.4)を、トランスフェクションの24時間前に3.5 x104 細胞/ウェルの密度で96ウェルプレートにプレートします。10%の熱不活化ウシ胎児血清と1%のペニシリン/ストレプトマイシンを添加した培養液で細胞を成長させる。 注:細胞は市販の供給源から入手した( 材料表を参照)。</li>
	<li>細胞をインキュベーター(37°Cおよび5%CO2雰囲気)で24 時間インキュベートし、トランスフェクションの前に細胞が60%~80%コンフルエントであることを確認します。</li>
</ol>5. 培養細胞のトランスフェクション
<ol><li>増殖培地を除去した後、播種した細胞を0.2mL/ウェル1x PBSで洗浄する。</li>
	<li>播種した細胞培養物を含む各ウェルに無血清培養液を170 μL加える。</li>
	<li>0.4 μg の MetLuc mRNA (ステップ 2 で調製) を含む IVT mRNA/PP-sNp 製剤を 30 μL/ウェルの量で滴下します。</li>
	<li>IVT mRNA/PP-sNp製剤と共に、加湿した5%CO2富化雰囲気中で37°Cで細胞を4時間インキュベートします。</li>
	<li>トランスフェクション培地を、10%の熱不活化ウシ胎児血清および1%(v/v)ペニシリン/ストレプトマイシンを添加した0.2mLの新鮮な培地と交換します。 注:ウシ胎児血清を不活性化のために56°Cで30分間加熱した。</li>
	<li>トランスフェクトした細胞を37°Cおよび5%CO2富化雰囲気中で24時間インキュベートし、各ウェルから検出される上清を回収する。</li>
</ol>6. メトリジア・ルシフェラーゼ(MetLuc)アッセイを用いた細胞トランスフェクションの有効性の解析
<ol><li>以下のステップに従って、セレンテラジン基質(材料表を参照)を用いて、各ウェルからの上清 をMetLuc活性についてアッセイする。<ol><li>セレンテラジン基質に1x PBSを添加して新鮮なアッセイ溶液を調製する(セレンテラジンの濃度は15mMである)。</li>
		<li>徹底的な混合のためにセレンテラジン溶液を10秒間ボルテックスする。</li>
		<li>50 μLの上清(ステップ5で回収)を96ウェルプレートに加えます。</li>
		<li>マイクロプレートリーダー( 材料表を参照)を1,000 msの読み取り時間でセットアップしてから、30 μLのセレンテラジン溶液(15 mM)を手動または自動注射で各ウェルに添加します。</li>
		<li>開始をクリックして、上清にセレンテラジン溶液を加えた直後に発光シグナルを測定します。 メモ:ルミネッセンス信号はマイクロプレートリーダーを使用して測定され、その活性は相対的な光単位で表されます。PBSトランスフェクトウェルから得られた値は、ブランクコントロールとして使用されます。</li>
	</ol></li>
</ol>

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著者らには開示するものは何もありません。

ここで説明するプロトコルは、定義された特性を有するIVT mRNAワクチン製剤の費用対効果が高く迅速な製造を可能にするだけでなく、遺伝子治療などの特定の治療目的に応じてPP-sNp製剤をカスタマイズする可能性も提供する。IVT mRNA/PP-sNpの生成を確実に成功させるために、いくつかの重要なステップに特別な注意を払うことが推奨されます。mRNAを扱うときは、IVT mRNAが化学修飾で調製されていても、IVT mRNAはRNaseによる分解に関して非常に敏感であるため、RNaseを含まない条件をプロセス全体を通して維持する必要があることを常に覚えておいてください。一方、製剤を保存する際には、RNaseフリーの環境も確保する必要があります。IVT mRNA/PP-sNp を 2 ~ 8 °C で最大 1 週間保存することをお勧めします。提示された結果は、ヌクレアーゼフリーの水が高いトランスフェクション効率でPP-sNpを首尾よく形成するのに有効であることを実証する。他の緩衝液、例えばPBS、生理食塩水、OptiMEMなどは、必要に応じて使用され得る。培養細胞の生存率を確保するために、OptiMEM培地中でIVT mRNA/PP-sN...

ワクチン接種は、感染症によって引き起こされる罹患率および死亡率を低下させるための最も効率的な医学的介入の1つとして予告されている1。ワクチンの重要性は、2019年のコロナウイルス病(COVID-19)の発生以来実証されています。不活化または弱毒化生病原体を注入するという従来の概念とは対照的に、核酸ベースのワクチンなどの最先端のワクチンアプローチは、従来の全微生物ウイルスまたは細菌ベースのワクチンに関連する潜在的な安全性の問題を回避しながら、標的病原体の免疫刺激特性を維持することに集中します。DNAおよびRNA(すなわち、 インビトロ転写 メッセンジャーRNA、IVT mRNA)ベースのワクチンは、感染症および癌を含む様々な疾患に対して予防的〜治療的可能性を示す2、3。原則として、核酸ベースのワクチンの可能性は、その生産、有効性、および安全性に関連しています4。これらのワクチンは、費用対効果が高く、スケーラブルで、迅速な生産を可能にするために、無細胞で製造することができます。
単一の核酸ベースのワクチンは、複数の抗原をコードすることができ、接種回数を減らして多数のウイルス変異体または細菌の標的を可能にし、弾力性病原体に対する免疫応答を強化する5,6。さらに、核酸ベースのワクチンは、ウイルスまたは細菌感染の自然な侵入プロセスを模倣し、B細胞およびT細胞媒介性免疫応答の両方をもたらす可能性がある。一部のウイルスまたはDNAベースのワクチンとは異なり、IVT mRNAベースのワクチンは安全性の面で大きな利点を提供します。それらは、細胞質ゾル中で所望の抗原を迅速に発現することができ、宿主ゲノムに組み込まれていないため、挿入突然変異誘発に関する懸念を排除する7。IVT-mRNAは翻訳が成功すると自動的に分解されるため、そのタンパク質発現動態は容易に制御できます8,9。重症急性呼吸器症候群コロナウイルス2(SARS-CoV-2)のパンデミックに触媒され、世界中の企業/機関からの努力により、多くの種類のワクチンが市場にリリースされました。IVT mRNAベースのワクチン技術は大きな可能性を示し、その迅速な設計と数ヶ月以内にあらゆる標的抗原に適応する柔軟な能力により、初めて以前に期待されていた成功を実証しました。臨床応用におけるCOVID-19に対するIVT mRNAワクチンの成功は、IVT mRNAワクチンの研究開発の新時代を開いただけでなく、感染症の発生に対処するための効果的なワクチンの迅速な開発のための貴重な経験を蓄積しました10,11。
IVT mRNAワクチンの有望な可能性にもかかわらず、作用部位(すなわち、細胞質)へのIVT mRNAの効率的な細胞内送達は、特に気道を介して投与されるものに対して、引き続き大きなハードル12を提起している4。IVT mRNAは本質的に非常に短い半減期(〜7時間)13を持つ不安定な分子であり、IVT mRNAはユビキタスRNase14によって分解されやすい。自然免疫系のリンパ球は、in vivo適用の場合に認識されたIVT mRNAを飲み込む傾向がある。さらに、IVT mRNAの高い負電荷密度および大きな分子量(1 x104−1 x106Da)は、細胞膜15のアニオン性脂質二重層全体にわたるその効果的な透過を損なう。したがって、IVT mRNA分子の分解を阻害し、細胞の取り込みを促進するために、特定の生体機能材料を含む送達系が必要である16。
裸のIVT mRNAがインビボ調査に直接利用されたいくつかの例外的なケースを除いて、IVT mRNAを治療的作用部位に運ぶために様々な送達系が使用される17,18。以前の研究は、送達系の助けなしに細胞質ゾルにおいて検出されるIVT mRNAがごくわずかであることが明らかにされている19。RNA送達を改善するために、プロタミン縮合から脂質封入まで、この分野での継続的な努力により、数多くの戦略が開発されています20。脂質ナノ粒子(LNP)は、臨床使用のために承認されたすべてのmRNA COVID-19ワクチンがLNPベースの送達システムを採用しているという事実によって証明されるように、mRNA送達ビヒクルの中で最も臨床的に進歩している21。しかしながら、LNPは、製剤が呼吸経路22を介して送達される場合、効果的なmRNAトランスフェクションを媒介することができず、粘膜免疫応答を誘導すること、または嚢胞性線維症またはα1-アンチトリプシン欠乏症などの肺関連疾患に対処する際のこれらの製剤の適用を著しく制限する。したがって、気道関連細胞におけるIVT mRNAの効率的な送達およびトランスフェクションを容易にする新規送達システムの開発は、この満たされていない必要性を解決するために必要とされる。
ペプチドポロキサミン自己組織化ナノ粒子(PP−sNp)送達系が、マウス23の気道における核酸の効率的なトランスフェクションを媒介し得ることが確認されている。PP-sNpは、多機能モジュラー設計アプローチを採用しており、異なる機能モジュールをナノ粒子に統合して迅速なスクリーニングと最適化を行うことができます23。PP−sNp内の合成ペプチドおよび電気的に中性な両親媒性ブロックコポリマー(ポロキサミン)は、IVT mRNAと自発的に相互作用して、コンパクトな構造および平滑な表面を有する均一に分布したナノ粒子を生成することができる23。PP-sNpは、マウス23の培養細胞および気道におけるIVT mRNA分子の遺伝子導入効果を向上させることができる。本研究は、メトリジア・ルシフェラーゼ(MetLuc−mRNA)をコードするIVT mRNAを含むPP−sNpを生成するためのプロトコールを記載する(図1)。千鳥ヘリンボーン混合設計を採用したマイクロ流体混合装置 を介した 制御された迅速な混合は、このプロトコルで利用されています。この手順は実行が簡単で、より均一なサイズのPP-sNpを生成できます。マイクロ流体ミキサーを使用したPP-sNp生産の一般的な目標は、mRNA複合体形成のためのPP-sNpを十分に制御された方法で作成し、 インビトロでの効率的で再現性のある細胞トランスフェクションを可能にすることです。本プロトコールは、MetLuc−mRNAを含むPP−sNpの調製、組み立て、および特性評価を記載する。

<table><tbody><tr><td>BamHI</td><td>宝</td><td>1010</td><td></td></tr><tr><td>キャップ 1 キャッピングシステム</td><td>済南</td><td>M082</td><td></td></tr><tr><td>樹状細胞株</td><td>Sigma</td><td>SCC142</td><td></td></tr><tr><td>DNA 配列</td><td>Genescript</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ヒト気管支上皮細胞</td><td>Σ</td><td>SCC150</td><td></td></tr><tr><td>KpnI</td><td>宝</td><td>1068</td><td></td></tr><tr><td>LP</td><td>Beyotime</td><td>C0533</td><td></td></tr><tr><td>塩化リチウム</td><td>APEXBio</td><td>B6083</td><td></td></tr><tr><td>Malvern Zetasizer Nano ZS90</td><td>Malvern</td><td>NB007605</td><td></td></tr><tr><td>Microfluidic chip</td><td>ZHONGXINQIHENG</td><td>Standard PDMS chip</td><td></td></tr><tr><td>Microplate readers ThermoFisher</td><td></td><td>Varioskan lux</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop One</td><td>ThermoFisher</td><td>ND-ONE-W (A30221)</td><td></td></tr><tr><td>ヌクレアーゼフリー水</td><td>ThermoFisher</td><td>AM9932</td><td></td></tr><tr><td>OptiMEM</td><td>Gibco</td><td>31985070</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin-streptomycin</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>Pseudouridine</td><td>APE&times;Bio</td><td>B7972</td><td></td></tr><tr><td>QIAprep スピン Miniprep Kit</td><td>Qiagen</td><td>27106</td><td></td></tr><tr><td>Quanti-Luc</td><td>InvivoGen</td><td>Rep-qlc2</td><td></td></tr><tr><td>RiboRuler High Range RNA Ladder</td><td>ThermoFisher</td><td>SM1821</td><td></td></tr><tr><td>RNase-free conical tube</td><td>Biosharp</td><td>BS-100-M</td><td></td></tr><tr><td>RPMI Medium 1640</td><td>ThermoFisher</td><td>C11875500BT</td><td></td></tr><tr><td>シリンジポンプ</td><td>Chemyx</td><td>Fusion 101</td><td></td></tr><tr><td>T7転写キット</td><td>済南</td><td>E131</td><td></td></tr></tbody></table>

ペプチドポロキサミンナノ粒子を用いた培養細胞における in vitro 転写mrnaの効率的なトランスフェクション

Efficient Transfection of In vitro Transcribed mRNA in Cultured Cells Using Peptide-Poloxamine Nanoparticles

インビトロ転写 メッセンジャーRNA(mRNA)ワクチンは、コロナウイルス病2019(COVID-19)パンデミックとの戦いにおいて大きな可能性を示しています。mRNAの脆弱な特性のために、効率的で安全な送達システムをmRNAワクチンに含める必要があります。自己組織化ペプチドポロキサミンナノ粒子(PP-sNp)遺伝子送達システムは、核酸の肺送達のために特別に設計されており、成功したmRNAトランスフェクションを媒介する有望な能力を示す。ここでは、PP-sNpを調製するための改良された方法が記載されており、PP-sNpがメトリジアルシフェラーゼ(MetLuc)mRNAをカプセル化し、培養細胞をトランスフェクトする方法について詳述する。MetLuc-mRNAは、線状DNAテンプレートからの インビトロ 転写プロセスによって得られる。PP-sNpは、マイクロ流体ミキサーを用いて合成ペプチド/ポロキサミンとmRNA溶液を混合することにより製造され、PP-sNpの自己組織化を可能にする。PP−sNpの電荷は、その後、ゼータ電位を測定することによって評価される。一方、PP−sNpナノ粒子の多分散性および流体力学的サイズは、動的光散乱を用いて測定される。mRNA/PP-sNpナノ粒子を培養細胞にトランスフェクトし、培養細胞の上清をルシフェラーゼ活性についてアッセイする。代表的な結果は、 インビトロ トランスフェクションに対するそれらの能力を実証する。このプロトコルは、次世代mRNAワクチン送達システムの開発に光を当てる可能性があります。

組換えプラスミドを消化し、直鎖状DNA鋳型を作製した(図2A)。記載されたプロトコルを使用して、T7 in vitro 転写キットは、20 μL反応あたり最大80〜120μgのキャップなしMetLuc-mRNA、および100μL反応あたり50〜60μgのキャップ付きMetLuc-mRNAを製造することができる。電気泳動で分析した場合、高品質のインタクトなMetLuc-mRNAは、 図2Bに示すように、単一の明確なバンドを示すはずです。DNAテンプレートから反応に導入された汚染物質は、RNA分解およびより低い収率をもたらす可能性がある。
メトルーク-mRNA(メトラック-mRNA/PP-sNp)を含むPP-sNpは、マイクロ流体混合法を用いて調製した(図1)。 表1 に、例としてMetLuc-mRNA/PP-sNpの物理化学的特性評価に関するデータを示す。...

自己組織化ペプチドポロキサミンナノ粒子(PP-sNp)は、イン ビトロ転写 メッセンジャーRNAをカプセル化および送達するためにマイクロ流体混合装置を使用して開発される。記載されたmRNA/PP-sNpは、 インビトロで培養細胞を効率的にトランスフェクトすることができた。

ペプチドポロキサミンナノ粒子を用いた培養細胞における in vitro 転写mRNAの効率的なトランスフェクション

In vitro transcribed messenger RNA (mRNA) vaccines have displayed enormous potential in fighting against the coronavirus disease 2019 (COVID-19) pandemic. ...

ペプチド-ポロキサミンナノ粒子は、潜在的な肺mRNA送達システムの1つです。私たちのプロトコルは、ペプチドポロキサミンナノ粒子をより高い生産性と効率で作成し、粘膜mRNAワクチンの開発を容易にします。この技術に必要な材料は低コストであり、プロトコルは短時間で完了することができます。ペプチドポロキサミンナノ粒子は、効率的なmRNAトランスフェクションを媒介する能力を有する。ペプチドポロキサミンナノ粒子は、ヒト気管支上皮細胞におけるmRNAトランスフェクションに成功し、粘膜COVID-19ワクチン、肺がんの治療、嚢胞性線維症遺伝子治療への追加応用が示唆されました。私は、個人が実験を開始する前に、関連分野、プロトコル、および多くの技術に関する基本的な知識を持っていることを期待しています。メトリディア・ルシフェラーゼのオープンリーディングフレームを合成し、pUC57ベクターにクローニングした後、BamHIとKpnIを使用して摂氏37度で1時間、線状化DNAテンプレートを調製します。原稿に記載されているように、T7転写キットとシュードウリジンを使用して、mRNA合成のために20マイクロリットル容量の反応を準備します。成分を完全に混合し、摂氏37度で3時間インキュベートします。次に、50マイクログラムのキャップされていないIVT mRNAの二次構造を摂氏65度で10分間加熱して除去します。IVT mRNAキャッピングにはCap 1キャッピングシステムを使用し、S-アデノシルメチオニンと2'O-メチルトランスフェラーゼを使用して摂氏37度で30〜60分間、7-メチルグアノシンキャップ構造を修飾してキャップ1を調製します。キャップされたIVT mRNAの濃度を紫外可視分光光度計で測定します。RNAマーカーを使用して、18%ホルムアルデヒドを含む1%ホルムアルデヒド変性アガロースゲル中のキャップされたIVT mRNAの分子サイズを分析します。T704をヌクレアーゼフリーの水に可溶化することにより、ポロキサミン704の1ミリリットルあたり10ミリグラムのストック溶液を調製します。ペプチドをヌクレアーゼフリーの水に可溶化することにより、ペプチドの1ミリリットルあたり2ミリグラムのストック溶液を調製します。調製した溶液を摂氏4度で保管する。IVT mRNAを氷上で解凍します。チューブを開く前に、チューブを300倍Gで室温で3秒間遠心分離し、IVT mRNA溶液をヌクレアーゼフリー水で希釈します。T704溶液を8マイクログラム/マイクロリットル濃度に、合成ペプチド溶液を0.555マイクログラム/マイクロリットル濃度に希釈し、T704および合成ペプチド混合溶液をそれぞれヌクレアーゼフリー水で調製する。さらに使用する前に、混合溶液を室温で15分間インキュベートします。IVT mRNA溶液を1ミリリットルのシリンジに引き込み、シリンジ先端のエアギャップや気泡を避けます。回転ブロックの横にあるカートリッジの片側にシリンジをロードします。次に、1ミリリットルのシリンジにT704と合成ペプチドミックス溶液を満たし、シリンジ先端の気泡やエアギャップを取り除きます。シリンジをポンプのもう一方の入口に配置し、ポンプの総流量を毎分4〜10ミリリットルに設定します。10ミリリットルのRNaseフリーコニカルチューブを配置して、混合IVT mRNA/PP-sNp溶液を混合装置の流路の端に収集します。ポンプを運転して混合を開始し、パラメータが正しく入力されていることを確認します。ポンプを6秒間運転した後、円錐管からIVT mRNA/PP-sNpサンプルを採取します。ヒト気管支上皮細胞および樹状細胞株をトランスフェクションの24時間前に96ウェルプレートにプレート化します。10%熱不活化ウシ胎児血清と1%ペニシリンストレプトマイシンを添加した培地で細胞を増殖させます。増殖培地を除去した後、播種した細胞をウェル当たり0.2ミリリットルのPBSで洗浄する。播種した細胞培養物を含む各ウェルに170マイクロリットルの無血清培養液を追加します。次に、0.4マイクログラムのメトリジウムルシフェラーゼmRNAを含む30マイクロリットルのIVT mRNA/PP-sNp製剤を各ウェルに滴下します。IVT mRNA/PP-sNp 製剤を含む細胞を、加湿した 5% 二酸化炭素富化雰囲気中、摂氏 37 度で 4 時間インキュベートします。トランスフェクション培地を吸引し、10%熱不活化ウシ胎児血清と1%ペニシリンストレプトマイシンを添加した0.2ミリリットルの新鮮な培養培地を加えます。前に示したように、トランスフェクトした細胞を24時間インキュベートし、各ウェルから検出する上清を収集します。セレンテラジン基質にPBSを添加して、新しいアッセイ溶液を調製する。10秒間ボルテックスして溶液を完全に混合します。採取した上清50マイクロリットルを96ウェルプレートに加える。1, 000ミリ秒の読み取り時間でマイクロプレートリーダーをセットアップし、手動または自動注入によって各ウェルに30マイクロリットルのセレンテラジン溶液を追加します。上清にセレンテラジン溶液を加えた直後に、[開始]をクリックして発光シグナルを測定します。組換えプラスミドを単離し、消化して、直鎖化DNA鋳型を生成した。インビトロ転写は、アップキャップおよびキャップされたMetLuc mRNAを産生した。メトリジウム・ルシフェラーゼmRNA/PP-sNpを導入した細胞は、市販の脂質ベースのトランスフェクション試薬、裸のメトリジウム・ルシフェラーゼmRNA、PBS、またはT7044合成ペプチド、ヒト気管支上皮細胞の混合溶液、16 HBE、および樹状細胞株DC2.4でトランスフェクトした細胞と比較して、ルシフェラーゼの発現が有意に高かった。 MetLuc mRNAを分解から保護し、外因性メトリジウムルシフェラーゼmRNAのトランスフェクション効率を促進します。キャップされていないMet-mRNAの合成構造が正常に除去されていることを確認してください。Met-mRNA T704とペプチド化合物を慎重に計算してダウンロードし、ポロキサミンナノ粒子を調製して圧縮します。透過型電子顕微鏡法は、ペプチドポロキサミンナノ粒子の形態を観察するために行うことができる。この技術は、研究者が粘膜mRNAワクチンを開発し、関連するすべての細胞の遺伝子治療製剤のハイスループットスクリーニングを可能にするのに役立ちます。

efficient-transfection-vitro-transcribed-mrna-cultured-cells-using

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

免疫学と感染症

タイプBゼラチンベースの設計nanovectorsシステム（GENS）が膵臓癌の治療における全身遺伝子デリバリーとトランスフェクションのために開発されました。上皮成長因子受容体（EGFR）nanparticlesの表面上の特定のペプチドによる修飾により、彼らは、EGFR受容体をターゲットに可能性があり、そのような高い細胞内のグルタチオン濃度として、環境を還元条件下でプラスミド離します。...

上皮成長因子受容体をターゲットとしたゼラチンベースのエンジニアNanovectorsを使用してヒト膵臓癌細胞における遺伝子デリバリーとトランスフェクション

既存の植物改変の方法は適用性が限られています。ここで提案されている新しいペプチド由来の技術は、無傷の植物の目的の細胞内コンパートメントへの外因性タンパク質または遺伝子の導入における簡便性と効率性の両方を約束します。...

植物の細胞や細胞小器官の壁を越え遺伝子やタンパク質を輸送するために、ペプチド由来方法

この原稿は、PEI / MNPベクター及びその磁化により内皮細胞へのmiRの効率的な、非ウイルス送達を記載しています。このように、遺伝的改変に加えて、このアプローチは、磁気細胞ガイダンスやMRIの検出能が可能になります。技術は、治療用細胞製品の特性を改善するために使用することができます。...

準備と<em&gt;インビトロ</em磁化のmiR修飾内皮細胞の&gt;キャラクタリゼーション

このプロトコルは、CD133 を変更する安全で効率的な手順を示しています+造血幹細胞。提示された非ウイルス性、磁気 polyplex...

成人骨髄由来造血幹細胞が細胞工学磁気ターゲッティングと結合を有効にするにマイクロ Rna の転送のためのプロトコル

ここでカチオン性 nanoliposomes、ドライ フィルム法に基づいており、安全のため使用することができますの生成のためのプロトコルについて述べるし、体外の効率的な配信は、メッセンジャー RNA...

体外の効率的な配信のカチオン性 Nanoliposomes の生成は、メッセンジャー RNA を転写

ポリエチレンイミン (PEI) を使用しての方法を述べる-siRNA 株マクロファージの超常磁性酸化鉄ナノ粒子をコーティングします。これらのナノ粒子は効率的に大食細胞の体外および体内と沈黙のターゲット遺伝子の発現を siRNA...

小さい干渉の RNA のマクロファージへの配信のための車両としてポリエチレンイミン被覆された酸化鉄ナノ粒子の in VitroとIn Vivo

マクロファージ、特に一次マクロファージは、非自己起源の分子の検出に特化しているため、トランスフェクトに挑戦しています。プラスミドなどのDNAテンプレートから生成されたmRNAを用いた一次マクロファージの高効率トランスフェクションを可能にするプロトコルについて説明する。...

インビトロ転写mRNAによる一次マクロファージの高効率トランスフェクション

ここでは、ポリ(βアミノエステル)ポリマーに基づいてmRNAナノ粒子を製造するための簡単なプロトコルが提示され、カプセル化されたmRNAを変更することによって容易に調整できる。また、ポリマー、ナノ粒子、およびそれらの インビトロ...

mRNAを含んだポリ(ベータアミノエステル)ナノ粒子のワクチン接種目的での合成と特性評価

低コストのカチオン性ポリマーポリエチレンイミン(PEI)を用いて、H9ヒト胚性幹細胞(hESC)およびH9由来神経前駆細胞(NPC)においてshRNAを安定的に発現させるレンチウイルス粒子を高効率で製造しました。...

低コストカチオン性ポリマーポリエチレンイミン(PEI)を用いたhESCおよびNPCへのshRNAのレンチウイルス媒介送達

本プロトコルは、2iおよびLIF培地による培養中のマウス胚性幹細胞の逆ポリトランスフェクションの方法を記述する。この分析法は、従来のフォワードトランスフェクションプロトコルよりも高い生存率と効率をもたらすと同時に、プラスミド比のワンポット最適化も可能にします。...

核酸比の迅速な探索のための最適化されたマウス胚性幹細胞ベースのリバースポリトランスフェクション技術(英語)

学ぶペプチドポロキサミンナノ粒子を用いた培養細胞へのin vitro転写mRNAトランスフェクション法。マイクロ流体混合装置でナノ粒子を調製し、気道上皮細胞で高効率な遺伝子導入を実現する技術です。

ペプチドポロキサミンナノ粒子を用いた培養細胞における in vitro 転写mRNAの効率的なトランスフェクション

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