Name: 多形性膠芽腫の並進同所性モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-02-17T13:40:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: 学ぶ多形性膠芽腫の並進同所性マウスモデル構築法。GEM由来細胞の脳内注入によりヒトの腫瘍特徴を再現し、治療戦略の評価に活用できる再現性の高い実験系を確立します。

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

優れた技術支援をしてくださったアラン・E・クラガ氏と、手術技術を洗練させてくれたミシェル・L・ガンプレヒトさんに感謝しています。病理分析のフィリップL.マーティン博士と、MRIスキャンのフレデリック国立研究所小動物画像プログラムのリリアイレバ氏とジョセフカレン博士に感謝します。
このプロジェクトは、契約番号HHSN261201500003Iに基づいて、国立衛生研究所の国立がん研究所からの連邦資金の全体または一部に資金提供されています。この出版物の内容は、必ずしも保健社会福祉省の見解や方針を反映しているわけではなく、商号、商品、または組織の言及は、米国政府による承認を意味するものでもありません。

ここに記載されている研究プロトコルは、フレデリック動物管理および使用委員会のNCIによって承認されました。NCI-フレデリックはAAALACインターナショナルの認定を受けており、実験動物の世話と使用に関する公衆衛生サービスポリシーに従っています。動物の世話は、「実験動物の世話と使用のためのガイド」(国立研究評議会、2011;全米アカデミーズプレス、ワシントンDC)。
1.注射用細胞の調製
注:このモデルに用いたマウス脳腫瘍初代細胞(MBR)は、El Meskiniらに記載されているように、もともとタモキシフェン誘導TRP GEMマウスから単離された5。細胞調製の詳細は、この参考文献に見出すことができる。
<ol><li>バイオセーフティキャビネットで滅菌技術を使用して次の手順を実行します。</li>
	<li>初代脳腫瘍細胞を指数関数的増殖期に達するまで in vitro で培養します。</li>
	<li>細胞を0.25%トリプシンで採取し、剥離したら増殖培地で希釈してトリプシンを不活性化します。</li>
	<li>400 x g の遠心分離により細胞をペレット化し、無血清培地で洗浄します。カウントする前に一度繰り返します。</li>
	<li>手動または自動セルカウンターを使用してセルをカウントします。細胞を5%滅菌メチルセルロースに1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に、2 μLの最終注入量に基づいて所望の濃度で再懸濁します。所望の細胞濃度は、細胞株および脳腫瘍モデルに基づいて変化し得る。GBM GEM TRP細胞の場合、25 x 106 細胞/ml溶液、または50,000細胞を2 μL注入します。</li>
</ol>2.マウス系統
<ol><li>脳腫瘍細胞の株背景に一致する適切なマウス系統を繁殖または購入する。TRP細胞については、9週齢のB6D2F1/Jマウス(C57BL/6J [B6]雌とDBA/2J [D2]雄の交配種由来)を腫瘍細胞レシピエントとして使用します。</li>
</ol>3.手術領域の設定
注意: すべての外科的ステップは、清潔で消毒された環境で無菌技術を使用して行われます。スクラブとマスクを含む個人用保護具は、外科医が着用する必要があります。手術器具は使用前に加熱滅菌する必要があります。
<ol><li>固定装置の下と作業面に表面プロテクターを置きます。</li>
	<li>麻酔器からのビニールチューブを固定装置のガス麻酔プラットフォームのINポートに取り付け、別のチューブをOUTポートに取り付けます。</li>
	<li>デジタルディスプレイを電源と装置に接続します。</li>
	<li>マイクロポンプコントローラ(図1A)を電源に接続し、マイクロポンプ(図1A)を装置のマニピュレータアームに取り付けます(製造元の指示も参照してください)。</li>
	<li>2,000 nLの容量注入では、マイクロポンプを5.6 nL/sに設定します。</li>
	<li>ホットビーズ滅菌器の電源を入れます。</li>
	<li>マウスの加熱パッドを温度コントローラーに接続し、電源に接続します。プレートをステージプラットフォームに置きます。プレート温度を37°Cに設定します。</li>
	<li>30 Gの精密シリンジをバックロードし、気泡が発生しないように注意してください。プランジャーを挿入し、針を取り付けます。針はハブのみでつかんでください。メチルセルロース細胞混合物の滴が針を通して分注されるまでプランジャーを押し下げます。針の側面を注意深く拭くか、滅菌ガーゼパッドを作業台に置いて吸い取り、70%アルコール調製パッドで針を洗浄します。針を曲げたり折ったりしないように注意してください。</li>
	<li>精密シリンジをマイクロポンプに取り付け、マニピュレーターアームをステージから離れるように回転させて、マウスをステージに置く前にシリンジと針の変位を防ぎます。</li>
</ol>4.手術のためのマウスの準備
<ol><li>マウスをイソフルラン気化器を2.5%に設定した誘導チャンバーに置くか、施設のガイドラインに従って麻酔します。ノーズコーンへのイソフルランの流れをオンにします。</li>
	<li>マウスを定位固定装置に移し、上の歯をノーズコーンサポートに配置して、ノーズコーンに固定します(図1B、9)。ノーズコーンのノブを締めて固定します(図1B)。つま先をつまんで反射をチェックすることにより、適切なレベルの麻酔を確保します。<ol><li>耳、足、粘膜の色(ピンク)を監視して、適切な酸素供給を確保します。また、呼吸数を監視します(増減はイソフルランレベルを調整する必要があることを示している可能性があります)。</li>
	</ol></li>
	<li>イヤーバー(図1B)を両耳に挿入し、ノブを締めて頭を固定します。</li>
	<li>マウスが麻酔下にある間に目を滑らかにするために目の軟膏を塗ります。</li>
	<li>湾曲した鉗子を使用して、マウスの頭の毛を計画した切開よりも約150%大きい領域まで摘み取り、適切な無菌状態を確保します。</li>
	<li>0.5〜1 mg / kgのブプレノルフィンSR鎮痛を皮下注射するか、別のプロトコル承認鎮痛薬を使用します。.</li>
	<li>マウス直腸プローブを配置して、内部温度を監視し、麻酔による低体温を防ぎます。マウスの体温を36.5〜38.5°Cに保ちます。</li>
	<li>外向きの円を使用して手術野を消毒し、外科用スクラブとエタノールを3回交互に使用します。</li>
	<li>鉗子を使って皮膚をぴんと張って引っ張り、目の間からメスの刃で約1cmの切開を行います。ブレグマは切開を通して見えるはずです。 注意: 適切な滅菌技術を得るには、滅菌されたツールの先端でのみ手術部位に触れ、ツールチップを滅菌面(オートクレーブ滅菌されたツールパックの内側など)にのみ置きます。</li>
	<li>先端が綿のアプリケーターの木製の端を使用して余分な結合組織をこすり落とし、次に別のアプリケーターの綿の端を使用して乾燥させます。</li>
</ol>5.細胞注入
<ol><li>シリンジアタッチメントをマウスの上に取り付けた状態でマニピュレータアームを戻し、ノブを締めて固定します。水平面のXノブとYノブを使用して、シリンジマウントをブレグマの上に移動します。Zノブを使用して針を下げ、ブレグマの位置を確認します。デジタル読み出しコンソールをゼロに設定します。</li>
	<li>XノブとYノブ、および対応するデジタル読み出しを使用して、針を目的の位置に移動します。皮質皮質の位置については、適切な座標は、後方3 mm、ブレグマの外側右2 mm、硬膜から深さ2 mmです。Zノブを使用して、針を頭蓋骨の表面に移動します。</li>
	<li>25 Gの針が取り付けられた1 mLの注射器を使用して、頭蓋骨に穴を開けます。針のベベルを30 Gの精密シリンジと針に向けて置き、マニピュレーターアームを慎重に横に回転させます。親指と指を使用して、針先が頭蓋骨のキャップを突き刺すまで、穏やかな圧力で針をゆっくりと前後に転がします。</li>
	<li>先端が綿のアプリケーターを使用して、針穴から血液を軽くたたきます。マニピュレーターアームを適切な位置に交換し、穴の上に装填された精密シリンジ針を取り付けます。針の先端を穴に合わせ、Zノブを使用して針を脳硬膜まで下げ、デジタル読み出しコンソールをゼロに設定します。</li>
	<li>Zノブを使用して、針を1 mm下げてから、1分間待ちます。希望の深さ(示されているように2 mm)に達するまで繰り返します。 注:針は、周囲の脳組織へのさらなる損傷および細胞溶液の逆流を防ぐためにゆっくりと下げられる。</li>
	<li>マイクロポンプを起動し、2 μLが注入されたときにポンプが停止することを確認するために監視します。このプロセスには、指定された速度で約6分かかります。次に、針を動かす前に1分間待ちます。</li>
</ol>6.針の取り外しと創傷閉鎖
<ol><li>針を1 mm上げてから1分間待ちます。針が頭蓋骨から完全に外れるまで繰り返します。</li>
	<li>必要に応じて、先端が綿のアプリケーターを使用して、注射部位から血液を軽くたたきます。</li>
	<li>先端が綿のアプリケーターの木の端を使って、骨ワックスの小片(~1 mm)を取り、円錐形にします。頭蓋骨の開口部にそれを置き、ワックスを穴に押し込みます。</li>
	<li>ビーズ滅菌器を使用して鉗子を加熱し、それらを使用して頭蓋骨に残っているワックスを溶かし、滑らかにします。</li>
	<li>約2滴のブピバカイン(麻酔薬)溶液を切開部に入れ、鉗子を使用して皮膚の端を一緒に引っ張ります。</li>
	<li>皮膚をぴんと張って引っ張り、1つまたは2つの傷付きクリップを配置して皮膚を閉じます。</li>
	<li>ドラフトのない場所の加熱パッドの清潔な回復ケージにマウスを置き、マウスを注意深く観察します。マウスが麻酔から完全に目覚め、通常の活動を再開してから、通常のハウジングに戻します。</li>
	<li>外科的処置後に毎日マウスをチェックし、施設のガイドラインに従って疼痛管理を行います。<ol><li>ブプレノルフィンSR(ステップ4.6)が鎮痛に使用される場合、徐放性処方は72時間持続します。72時間後に目に見える痛みや不快感がある場合にのみ注射を繰り返します。正しく実施された場合、マウスは頭蓋内注射から十分に回復し、追加の鎮痛は必要ありません。</li>
		<li>手術後7〜10日でステープルを取り外します。</li>
	</ol></li>
	<li>生きた動物イメージング(MRI)によって腫瘍の成長を監視します。<ol><li>人道的なエンドポイントに達したとき(すなわち、動物が20%の体重を失うか、低体温になった場合)にマウスを安楽死させる。</li>
		<li>これらの脳腫瘍の浸潤性のために、不均一な歩行、部分的な麻痺、回転、または頭の傾きなどの神経学的症状についてマウスを観察します。進行した腫瘍増殖のこれらの臨床徴候のいずれかが観察された場合は、マウスを安楽死させます。</li>
	</ol></li>
</ol>

<ol><li>Tamimi, A. F., Juweid, M. Epidemiology and Outcome of Glioblastoma. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTamimi%2C+AF+%22Glioblastoma%22">Glioblastoma</a>. , (2017).</li>
<li>Robertson, F. L., Marques-Torrejon, M. A., Morrison, G. M., Pollard, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+models+and+tools+to+tackle+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">Experimental models and tools to tackle glioblastoma.</a> Disease Models & Mechanisms. 12 (9), (2019).</li>
<li>Wen, P. Y., Kesari, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Malignant+gliomas+in+adults%5BTitle%5D)+AND+%22The+New+England+Journal+of+Medicine%22%5BJournal%5D)">Malignant gliomas in adults.</a> The New England Journal of Medicine. 359 (5), 492-507 (2008).</li>
<li>Haddad, A. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+models+of+glioblastoma+for+the+evaluation+of+novel+therapeutic+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Neuro-Oncology+Advances%22%5BJournal%5D)">Mouse models of glioblastoma for the evaluation of novel therapeutic strategies.</a> Neuro-Oncology Advances. 3 (1), (2021).</li>
<li>El Meskini, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+preclinical+orthotopic+model+for+glioblastoma+recapitulates+key+features+of+human+tumors+and+demonstrates+sensitivity+to+a+combination+of+MEK+and+PI3K+pathway+inhibitors%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">A preclinical orthotopic model for glioblastoma recapitulates key features of human tumors and demonstrates sensitivity to a combination of MEK and PI3K pathway inhibitors.</a> Disease Models & Mechanisms. 8 (1), 45-56 (2015).</li>
<li>Song, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolutionary+etiology+of+high-grade+astrocytomas%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Evolutionary etiology of high-grade astrocytomas.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 110 (44), 17933-17938 (2013).</li>
<li>Cancer Genome Atlas Research Network. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+genomic+characterization+defines+human+glioblastoma+genes+and+core+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Comprehensive genomic characterization defines human glioblastoma genes and core pathways.</a> Nature. 455 (7216), 1061-1068 (2008).</li>
<li>Motomura, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunohistochemical+analysis-based+proteomic+subclassification+of+newly+diagnosed+glioblastomas%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Science%22%5BJournal%5D)">Immunohistochemical analysis-based proteomic subclassification of newly diagnosed glioblastomas.</a> Cancer Science. 103 (10), 1871-1879 (2012).</li>
<li>Choyke, P. L., Dwyer, A. J., Knopp, M. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+tumor+imaging+with+dynamic+contrast-enhanced+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Magnetic+Resonance+Imaging%22%5BJournal%5D)">Functional tumor imaging with dynamic contrast-enhanced magnetic resonance imaging.</a> Journal of Magnetic Resonance Imaging. 17 (5), 509-520 (2003).</li>
<li>Raza, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+necrosis-associated+genes+in+glioblastoma+by+cDNA+microarray+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Clinical+Cancer+Research%22%5BJournal%5D)">Identification of necrosis-associated genes in glioblastoma by cDNA microarray analysis.</a> Clinical Cancer Research. 10, 212-221 (2004).</li>
<li>Raza, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Necrosis+and+glioblastoma%3A+a+friend+or+a+foe%3F+A+review+and+a+hypothesis%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">Necrosis and glioblastoma: a friend or a foe? A review and a hypothesis.</a> Neurosurgery. 51 (1), 2-12 (2002).</li>
<li>Hambardzumyan, D., Bergers, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glioblastoma%3A+defining+tumor+niches%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Cancer%22%5BJournal%5D)">Glioblastoma: defining tumor niches.</a> Trends in Cancer. 1 (4), 252-265 (2015).</li>
<li>Kijima, N., Kanemura, Y. Glioblastoma. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKijima%2C+N+%22Mouse+Models+of+Glioblastoma%22">Mouse Models of Glioblastoma</a>. , Exon Publications. (2017).</li>
<li>Casanova, F., Carney, P. R., Sarntinoranont, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effect+of+needle+insertion+speed+on+tissue+injury%2C+stress%2C+and+backflow+distribution+for+convection-enhanced+delivery+in+the+rat+brain%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Effect of needle insertion speed on tissue injury, stress, and backflow distribution for convection-enhanced delivery in the rat brain.</a> PloS One. 9 (4), 94919(2014).</li>
<li>Jin, F., Jin-Lee, H. J., Johnson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mouse+Models+of+Experimental+Glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Gliomas%22%5BJournal%5D)">Mouse Models of Experimental Glioblastoma.</a> Gliomas. , Exon Publications. (2021).</li>
<li>Zalles, M., Towner, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-Clinical+Models+and+Potential+Novel+Therapies+for+Glioblastomas%5BTitle%5D)+AND+%22Gliomas%22%5BJournal%5D)">Pre-Clinical Models and Potential Novel Therapies for Glioblastomas.</a> Gliomas. , Exon Publications. 1-13 (2021).</li>
<li>Wierzbicki, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+and+therapeutic+monitoring+of+H3K27M-mutant+glioma%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Oncology+Reports%22%5BJournal%5D)">Targeting and therapeutic monitoring of H3K27M-mutant glioma.</a> Current Oncology Reports. 22 (2), 19(2020).</li>
</ol>

著者は利益相反を宣言しません。

前臨床モデルは、多形性神経膠芽腫における新しい治療標的および新規治療戦略の評価に不可欠である。GBMの遺伝子改変マウスモデルは、自生部位に腫瘍が発生するという利点がありますが、多くの場合、潜伏期間が長く、腫瘍の成長が予測できません13。GEMモデル腫瘍は4〜5か月の潜伏期を示し、イメージング、リクルートメント、および治療の理想的な時間枠は個々のマウス間で異なります。同所性モデルは、4〜5週間の十分に確立された扱いやすい成長と治療のタイムラインを持ち、腫瘍は移植後のMRIによって確実に検出されます。GEM由来の同所性モデルを使用することで、周囲の脳微小環境の利点を維持しながら、各マウスの正確な位置に腫瘍を配置し、腫瘍の成長開始を時間的に制御することができます。TRP同所性モデルでは、活性化されたRTK、PTEN、およびRB経路により、ヒトGBMの組織学的特徴を再現する腫瘍モデルが生成されます。ヒトGBMと同様に、同所性TRP GBM腫瘍は、偽パリサド腫瘍細胞および新生血管形成に囲まれた壊死病巣などの積極的な増殖の特徴を示す。腫瘍はまた、周囲の脳実質に浸潤性である。したがって、患者における腫瘍...

膠芽腫(GBM;グレードIV神経膠腫)は最も一般的で悪性の脳腫瘍であり、現在の治療法は効果がなく、生存期間の中央値は15か月です1。脳腫瘍の成長と病因に関与する複雑なシグナル伝達経路を表す信頼性の高い正確な前臨床モデルは、GBMの新しい治療レジメンの評価の進歩を促進するために不可欠です。ヒト脳腫瘍細胞株を免疫不全マウスの皮下に移植したマウスモデルは、脳腫瘍の本来の免疫環境を反映しておらず、血液脳関門を通過する治療薬の能力を評価するためにも使用できません2。理想的には、前臨床マウスモデルはまた、周囲の実質3への高レベルの侵襲性を含むヒトGBM組織病理学を密接に再現すべきである。遺伝子改変マウス(GEM)モデルは、無傷の免疫系の状況で腫瘍を発症しますが、複雑な育種スキームが必要になることが多く、腫瘍はゆっくりと一貫性のない状態で発生する可能性があります4。GEM由来の同種移植片モデルは、担がんマウスの大規模なコホートがより短い時間枠で必要とされる前臨床治療研究に適しています。
以前の報告では、GEM腫瘍から直接誘導された同所性GBMマウスモデルについて説明しました。GEMにおける腫瘍形成は、グリア線維性酸性タンパク質(GFAP)を発現する細胞集団(主に星状細胞)における遺伝的事象によって開始され、その結果、GBMに進行する。これらのTRP GEMは、GFAP駆動Creリコンビナーゼへの曝露後にT121を発現するTgGZT121導入遺伝子(T)を保有しています。T121タンパク質発現は、Rb(Rb1、p107、およびp103)タンパク質活性の抑制をもたらす。GFAP駆動型Cre導入遺伝子(GFAP-CreERT2)の共発現は、タモキシフェンによる誘導後の成体星状細胞への発現を標的とする。TRPマウスはまた、Cre依存性変異Kras(KrasG12D;R)対立遺伝子は、受容体チロシンキナーゼ経路の活性化を表すため、Pten(P)5,6の喪失に対してヘテロ接合性である。受容体チロシンキナーゼ(RTK)、PI3K、およびRBネットワークにおける同時遺伝子異常は、GBM病因の74%に関与しています7。したがって、ヒトGBMで変化した一次シグナル伝達経路は、TRPマウス、特にGTKの共有下流標的が活性化されるGBM腫瘍における操作された突然変異によって表されます5。
GEM由来の同系同所性モデルは、GBMの異常な経路を標的とするがん治療薬を評価するためのプラットフォームとして使用するために、浸潤性やサブタイプバイオマーカーの存在など、ヒト脳腫瘍の特徴を再現するモデルとして検証されました。TRP脳から採取した腫瘍から細胞を培養し、皮質に頭蓋内注射するための定位装置を用いて、系統適合マウスの脳に再移植した。この前臨床同所性マウスモデルは、細胞性が高く、浸潤性で、有糸分裂率が高く、ヒトGBMで観察されたように、腫瘍細胞による壊死の線状病巣と密な血管新生を示すGBM腫瘍を発症しました。腫瘍体積および成長は、 in vivo 磁気共鳴画像法(MRI)によって測定した。
本報告では、初代GBM細胞または細胞株を野生型マウス脳に頭蓋内注射するための最適な手法について、TRP腫瘍を例に説明する。同じプロトコルを、免疫無防備状態のマウスおよび他のGBM細胞株に適合させることができる。最適ではない細胞調製や注入部位での細胞漏出などの一般的な落とし穴を回避し、定位装置を正しく使用してモデルの再現性と信頼性を確保するための重要なヒントを提供します。翻訳目的で、生きた動物の脳腫瘍増殖のMRI検出、組織学的特性評価、および担癌マウスでの治療例によってモデルを検証します。

<table><tbody><tr><td>1X PBSの5%メチルセルロース、オートクレーブ滅菌ミリ</td><td>ポアシグマ</td><td>M7027</td><td></td></tr><tr><td>1mLツベルクリンシリンジ、スリップチップ</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>6インチコットンチップアプリケーター</td><td>ピューリタン</td><td>S-18991</td><td></td></tr>調整可能な<tr><td>ステージプラットフォーム</td><td>デビッドコップフインスツル</td><td>モデル901</td><td></td></tr><tr><td>エアロゾルバリアチップ</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>02-707-33</td><td></td></tr><tr><td>アルコール調製パッド滅菌、大 - 2.5 x 3 インチ</td><td>PDI</td><td>C69900</td><td></td></tr><tr><td>B6D2&nbsp; マウス株 (C57BL/6J x DBA/2J)</td><td>ジャクソン研究所</td><td>ジャックス #10006</td><td></td></tr><tr><td>ボーンワックス</td><td>外科専門</td><td>901</td><td></td></tr><tr><td>ブピバカイン 0.25%</td> <td>ヘンリー・シャイン</td><td>6023287</td><td></td></tr><tr><td>ブプレノルフィンSR</td><td>ZooPharm</td><td>n/a</td><td></td></tr><tr><td>透明ビニールチューブ 1/8ID X 3/16OD</td><td>UDP</td><td>T10004001</td><td></td></tr><tr><td>CVS 潤滑剤 眼軟膏</td><td>CVS 薬局</td><td>247881</td><td></td></tr><tr><td>使い捨てメス、#10 ブレード</td><td>メス ミルテック</td>ス <td>16-63810</td><td></td></tr><tr><td>酸素フックアップと麻酔ボックスを備えたガス麻酔器</td><td>ソムニ サイエンティフィック</td><td>n/a</td><td>治験責任医師は facility 標準装備</td></tr><tr><td>ガスを使用できますマウス用麻酔プラットフォーム</td><td>David Kopf Instruments</td><td>Model 923-B</td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prism</td><td>Graphpad</td><td>Prism&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;9&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;バージョン9.4.1</td><td></td></tr><tr><td>ハミルトン30 g針、&frac12; "、小さなハブ、ポイントpst 3</td>ハ<td>ミルトン</td><td>特別注文</td><td></td></tr><tr><td>ハミルトン精密マイクロリットルシリンジ、1701 RN、針なし10 &micro;L</td><td>Hamilton</td><td>7653-01</td><td></td></tr><tr><td>Hot bead Sterilizer with beads</td><td>Fine Science Tools</td><td>18000-45</td><td></td></tr><tr><td>Invitrogen Countess 3 Automated Cell Counter</td><td>Fisher Scientific</td><td>Specialty AMQAX2000</td><td></td></tr><tr><td>IsoFlurane</td><td>Piramal Critical Care</td><td>29404</td><td></td></tr><tr><td>Isopropyl Alcohol Prep Pads</td><td>PDI</td><td>C69900</td><td></td></tr><tr><td>ITK_SNAP (Version 36.X, 2011-現在)</td><td>ペンシルベニア大学のペン画像コンピューティング科学研究所(PICSL)、およびユタ</td><td></td><td></td>大学の科学計算およびイメージング研究所(SCI)</tr><tr><td>デジタル読み出しコンソール付き小動物定位固定装置</td>デ<td>ビッド・コップフ機器</td><td>モデル940</td><td></td></tr><tr><td>Masterflexフィッティング、PVDF、ストレート、ホースバーブレデューサー、1/4 "ID×1/8" ID</td><td>Masterflex</td><td>HV-30616-16</td><td></td></tr><tr><td>マウスヒーティングプレート</td><td>David Kopf Instruments</td><td>PH HP-4M</td><td></td></tr><tr><td>マウス直腸プローブ</td><td>David Kopf Instruments</td><td>PH RET-3-ISO</td><td></td></tr><tr><td>Nalgene Super Versi-Dry Surface Protectors</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>74000-00</td><td></td></tr><tr><td>P20 ピペット</td><td>Gilson</td><td>F123600</td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Surgical Scrub</td><td>Dynarex</td><td>1415</td><td></td></tr><tr><td>反射 9 mm 傷口クリップ アプリケーター</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>12031-09</td><td></td></tr><tr><td>反射 9 mm 傷口クリップ リムーバー</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>12033-00</td><td></td></tr><tr><td>反射 9 mm 傷口</td>クリップ <td>ファイン サイエンス ツール</td><td>12032-09</td><td></td></tr><tr><td>セムケン鉗子、湾曲</td><td>ファイン サイエンス ツール</td><td>11009-13</td><td></td></tr><tr><td>温度コントローラー</td><td>デビッド・コップフ・インスツルメンツ</td><td>PH TCAT-2LV</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン-EDTA(0.25%)</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>ツベルクリンシリンジ(25g針付き)、スリップチップ</td><td>BD 309626</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UltraMicroPump 3(Micro2Tコントローラー付き</td>) <td>World Precision Instruments</td><td>Model UMP3T</td><td></td></tr></tbody></table>

多形性膠芽腫の並進同所性モデル

Translational Orthotopic Models of Glioblastoma Multiforme

ヒト多形性膠芽腫(GBM)の遺伝子改変マウス(GEM)モデルは、脳腫瘍の発生と進行を理解するために重要です。異種移植腫瘍とは異なり、GEMでは、腫瘍は免疫適格マウスの天然微小環境で発生します。しかし、前臨床治療研究におけるGBM GEMの使用は、腫瘍潜伏期間が長く、新生物頻度の不均一性、および進行性度の腫瘍発生のタイミングのために困難である。頭蓋内同所性注射 によって 誘導されたマウスは、前臨床試験にとってより扱いやすく、GEM腫瘍の特徴を保持しています。Rb、Kras、p53異常(TRP)を有するGEMモデルから派生した同所性脳腫瘍モデルを作成し、腫瘍細胞による線状壊死病巣を示すGBM腫瘍と、ヒトGBMに類似した高密度血管新生を発症した。GEM GBM腫瘍に由来する細胞は、野生型の系統が一致したレシピエントマウスに頭蓋内注射され、グレードIV腫瘍を再現するため、GEMマウスの長い腫瘍潜伏期間を回避し、前臨床試験用の大規模で再現性のあるコホートの作成を可能にします。GBMのTRP GEMモデルの高度に増殖性、浸潤性、および血管の特徴は、同所性腫瘍で再現され、組織病理学マーカーはヒトGBMサブグループを反映しています。腫瘍の成長は、連続MRIスキャンによって監視されます。免疫適格モデルにおける頭蓋内腫瘍の浸潤性のため、ここで概説した注射手順に注意深く従うことは、頭蓋外腫瘍の成長を防ぐために不可欠です。

脳腫瘍細胞を注射したマウスは、発作、運動失調、体重減少などの腫瘍増殖の兆候がないか毎日監視する必要があります。脳腫瘍の成長は、定期的にMRIスキャンによって監視することもできます。毎週のMRIスキャンにより、脳内の腫瘍量の増加と腫瘍体積の測定を視覚化できます(図1C)。特にTRP腫瘍は積極的な増殖を示し、3D腫瘍体積は頭蓋内注射後2〜3週間以内にMRIで測定可能です(平均体積は30〜40 mm3)。ある代表的な研究では、脳腫瘍担持マウスのコホートを対照と放射線療法の2つのグループに分けました。MRI腫瘍体積測定では、放射線治療後の腫瘍増殖抑制の欠如が明らかになり(図2A)、治療されたマウスの生存率の増加は得られませんでした(図2B)。
剖検時には、腫瘍は腫れた右半球内の脳の黒い斑点として現れることがあります(図3A、中央のパ...

ここでは、遺伝子操作されたモデルマウス腫瘍に由来する細胞の頭蓋内注射によって樹立されたGBMの前臨床同所性マウスモデルについて述べる。このモデルは、ヒトGBMの疾患の特徴を示しています。トランスレーショナル研究のために、マウス脳腫瘍は in vivoMRI および組織病理学によって追跡される。

Genetically engineered mouse (GEM) models for human glioblastoma multiforme (GBM) are critical to understanding the development and progression of brain ...

GEM由来の膠芽腫細胞を免疫適格マウス脳に頭蓋内注射し、ヒト膠芽腫の重要な特徴を再現する腫瘍を作成するための最適な技術について説明します。GEM由来TRP細胞の同所性注入のためのこの技術は、皮質に由来する腫瘍に対して再現性が高く、スケーラブルで一貫した結果をもたらしますが、GEM腫瘍の浸潤性を維持します。マウス膠芽腫脳腫瘍は積極的な増殖を示し、周囲の脳実質に浸潤します。したがって、患者の腫瘍浸潤および遊走を抑制する可能性のある治療法を評価するために使用することができる。このプロトコルは、他の脳腫瘍モデル、ウイルス、治療薬用にカスタマイズすることも、定位固定装置座標の調整により異なる脳領域への注射に適合させることもできます。手順を実演するのは、私の研究室の研究員であるデボン・アトキンソンです。はじめに、固定装置の下と作業面に表面プロテクターを置きます。麻酔器からのビニールチューブを脳定位固定装置のガス麻酔プラットフォームのインポートに接続し、別のチューブをそのアウトポートに接続します。デジタルディスプレイを電源と装置に接続します。次に、マイクロポンプコントローラを電源に接続した後、装置のマニピュレータアームにマイクロポンプを取り付ける。マイクロポンプを毎秒5.6ナノリットルに設定します。マウスの加熱パッドを温度コントローラーと電源に接続します。気泡を避けて、メチルメチルセルロース細胞混合物を含む30ゲージ精密シリンジをバックロードします。プランジャーを挿入した後、針を取り付け、装填されたセル混合物が針を通って落ちるまでプランジャーを押し下げます。70%アルコール調製パッドで針をきれいにします。精密シリンジをマイクロポンプに取り付けたら、マウスを置く前にマニピュレーターアームをステージから離して回転させ、シリンジの針がずれないようにします。麻酔をかけたマウスを固定装置に移し、上歯をノーズコーンサポートに置いてノーズコーンに固定します。ノーズコーンをノブで締めた後、つま先をつまんで反射神経を確認し、適切な麻酔を確認します。次に、イヤーバーを挿入し、ノブを締めて頭を固定します。麻酔条件下で眼軟膏を塗布して眼を滑らかにする。ブプレノルフィンSR鎮痛薬を皮下注射し、直腸マウスプローブを配置して内部温度を監視します。外向きの円を使用して、外科用スクラブとエタノールを3回交互に使用して手術野を滅菌します。ピンと張った皮膚を鉗子で引っ張り、メスの刃を使って目の間に長さ約1センチの切開を入れます。細胞注入の場合は、シリンジをマウスに取り付けた状態でマニピュレーターアームを戻します。ノブを締めた後、水平面のXノブとYノブを使用してシリンジを動かし、ブレグマに取り付けます。Zノブを使用して針を下げてブレグマの位置を確認し、デジタル読み出しコンソールをゼロに設定します。次に、原稿に記

translational-orthotopic-models-of-glioblastoma-multiforme

Research

JoVE Journal

Cancer Research

がん研究

この記事の目的は、放射線研究のための同所性神経膠芽腫モデルの使用を記述することです。この資料では、注入、セル処理かかわらず移動して、頭蓋モデルを用いてマウスの放射線治療になります。...

同所性マウス脳腫瘍モデルのコンビネーション放射線治療

私たちは、ヌードマウスとその後シリアルの脳に人間の多形性膠芽腫細胞の正確な、定位注入のための統合方法を説​​明...

定位頭蓋内注入と<emインビボ&gt;</em多形性膠芽腫のマウスモデル系における腫瘍異種移植片の&gt;生物発光イメージング

悪性神経膠腫は、臨床的および分子的特徴が異なる非常に浸透性の高いグリア新生物の不均一なグループを構成する。原発性異形移植片は、前臨床動物モデルにおける悪性神経膠腫サブタイプの組織病理学的および分子的特徴を再現する。...

原発性異形性神経膠腫は浸潤性の増殖とイソクエンテインゲナーゼI突然変異

我々は、腫瘍の成長の間の遊びで、通常の生物物理学的な制約を再現生体2光子顕微鏡用マウスにおける皮質同所神経膠芽腫モデルを確立している。腫瘍の上に頭蓋骨を交換慢性ガラス窓は、2光子顕微鏡による経時的な腫瘍進行のフォローアップを可能にします。...

同所神経膠芽腫モデルマウスは、脳実質細胞の物理的制約を維持し、生体内二光子顕微鏡に適し

表現型の野生型アストロサイトと神経幹細胞は、floxed、条件付き発癌性対立遺伝子で操作され、ウイルスCre媒介組換えを介して形質転換されたマウスから採取され、同系で免疫能力のある同腹仔の脳に形質転換細胞を同所性注射することにより、in vitroおよびin...

モデル星細胞腫発症機序体外とインビボ皮質アストロサイトまたは条件付き、遺伝子改変マウスから神経幹細胞を使用した

ここでは、新生児マウスの心室に注入されたトランスポゾンDNAを使用して、新規神経膠芽腫(GBM)を誘導、監視、分析するための効率的で汎用性の高いプロトコルについて説明します。プラスミドを取り込む脳室内領域の細胞は、ヒトGBMの組織病理学的特性を有する腫瘍を形質転換、増殖および生成する。...

新生児マウスの脳室下帯へのプラスミドDNAのトランスポゾン媒介統合は、神経膠芽腫の新規モデルを生成する

GL261神経膠腫細胞は、神経膠芽腫の有用な免疫適格動物モデルを提供します。このプロトコルの目標は、in vivo 生物発光イメージングを使用して頭蓋内腫瘍の成長を監視するための適切な技術を実証し、腫瘍免疫学および神経膠芽腫を治療するための免疫療法アプローチを研究するためのルシフェラーゼ修飾 GL261...

神経膠芽腫のための免疫担当動物モデルの生物発光イメージング

同所性同種人間原発性脳腫瘍を運ぶ免疫不全マウスにおける準備と同種の人間のリンパ球の脳定位固定装置の管理のためのプロトコルを紹介します。本研究は、実現可能性と intrabrain...

同所性同種人間神経膠腫異種移植片のマウスモデルの細胞傷害性免疫細胞の定位の養子転送

このプロトコルの目的は、研究者に頭蓋内移植のための再現性の高い技術を提供することです。...

マウスにおける膠芽腫患者由来異種移植細胞株の立体定位頭蓋内移植

新たに診断され再発した腫瘍から生成された患者由来の磁気膠腫を用いて、3次元膠芽腫移動モデルを提示します。このプラットフォームは、患者特有の移動動態の可視化と治療効果の評価を可能にします。このアッセイは移動後に多重化され、タンパク質の局在化や発現パターンを評価することができます。...

磁気ナノ粒子媒介の球状定在を用いた低酸素条件下での再現可能な3D膠芽腫移動アッセイ

学ぶ多形性膠芽腫の並進同所性マウスモデル構築法。GEM由来細胞の脳内注入によりヒトの腫瘍特徴を再現し、治療戦略の評価に活用できる再現性の高い実験系を確立します。

多形性膠芽腫の並進同所性モデル

さらに動画を探す