Name: マウス由来骨髄由来マクロファージの単離と培養 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-06-23T14:10:00.000+00:00
Duration: 7 min 12 s
Description: 学ぶマウス骨髄由来マクロファージの単離と培養法。無菌操作とL929上清を用いて、1匹から約2×10⁷個の未刺激マクロファージを高収率で取得できます。細胞生物学や免疫学研究に有用です。

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この研究は、Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de Minas Gerais (FAPEMIG)、Rede de Pesquisa em Doenças Infecciosas Humanas e Animais do Estado de Minas Gerais (RED-00313-16)、Rede Mineira de Engenharia de Tecidos e Terapia Celular - REMETTEC (RED-00570-16)、ブラジル国立科学技術開発評議会 (CNPq) からの助成金によって支援されました。

この議定書は、全米動物実験管理評議会(Concea)および動物倫理および使用委員会(CEUA)の承認を得て実施されました。C57BL/6マウスは、ブラジルのベロオリゾンテにあるミナスジェライス連邦大学(UFMG)のBiotério Centralから購入しました。このプロトコルに記載されているすべてのステップで、白衣、手袋、目の保護具などの個人用保護具(PPE)を使用する必要があります。
1. M-CSF源としての線維芽細胞L-929系統上清の調製
<ol><li>L-929線維芽細胞系譜細胞(American Type Culture Collection Certified Cell Line-ATCC CCL1)を解凍し、生存率を維持するために直ちに培養プロセスを開始します。</li>
	<li>層流バイオセーフティキャビネット内で、1,000 μLピペットを使用して、L-929線維芽細胞系統細胞をバイアルから50 mLの滅菌遠心チューブに移します。</li>
	<li>血清学的ピペットを使用して、カルシウムとマグネシウムを含まない50 mLの滅菌リン酸緩衝生理食塩水(PBS)を追加します。</li>
	<li>300 x g、4°Cで10分間遠心分離します。上清を捨てます。</li>
	<li>血清学的ピペットを使用して、10%ウシ胎児血清(FBS)と1mLのペニシリン/ストレプトマイシン(P/S)(DMEM/F12-10)を添加した20 mLのダルベッコ改変イーグル培地F12にペレットを再懸濁します。</li>
	<li>再懸濁した細胞をT75細胞培養フラスコに移します。</li>
	<li>37°C、5%CO2 インキュベーターで完全にコンフルエントするまでインキュベートします。 注意: フラスコを操作するときは、汚染の原因となる可能性があるため、カバーを溶液で濡らさないように注意してください。都合の良い量の上清を得るためには、細胞が細胞培養フラスコの全表面を覆った後に細胞を複製する必要があります。L-929細胞は接触によって阻害されます。トリプシン/エチレンジアミン四酢酸(EDTA)溶液、DMEM/F12-10、PBSを37°Cまで滅菌して、以下の手順で説明するように細胞培養の増殖を開始します。</li>
	<li>完全な合流点に達したら、上清を細胞培養フラスコから、層流バイオセーフティキャビネット内に捨てます。</li>
	<li>細胞培養フラスコを血清学的ピペットを使用して20 mLの滅菌PBSで洗浄し、溶液を廃棄します。</li>
	<li>10 mLのトリプシン/EDTA(0.05%溶液)を、接着した細胞を含む細胞培養フラスコに加えます。</li>
	<li>細胞培養フラスコを層流から37°C、5%CO2 インキュベーターに移し、3分間インキュベートします。</li>
	<li>細胞培養フラスコを振って培養フラスコの表面から細胞を解離させ、顕微鏡を使用してすべての細胞が解離したことを確認します。</li>
	<li>トリプシン/ EDTA(0.05%溶液)を10 mLのDMEM / F12-10培地で不活化します。.</li>
	<li>血清学的ピペットを使用して溶液を50 mLの滅菌遠心チューブに移します。</li>
	<li>300 x g 、4°Cで10分間遠心分離します。上清を捨てます。</li>
	<li>ペレットを10 mLのDMEM/F12-10培地に再懸濁します。</li>
	<li>細胞懸濁液1 mLをT175細胞培養フラスコ(1:10培養)に加えます。</li>
	<li>この手順を繰り返して、T175細胞培養フラスコを10個入手します。</li>
	<li>各細胞培養フラスコに50 mLのDMEM/F12-10を加えます。</li>
	<li>37°C、5%CO2 インキュベーターで完全にコンフルエントするまでインキュベートします。 注:これらのステップは、500mLのL-929細胞上清を保証するものです。5日目に、細胞がT175細胞培養フラスコ表面を覆った後、上清はM-CSFのために濃縮され、収集されなければなりません14。</li>
	<li>接触阻害後5日目にインキュベーターから細胞培養フラスコを取り出します。</li>
	<li>培地を50 mLの滅菌遠心チューブに移します。</li>
	<li>3,200 x gで4°Cで10分間遠心分離します。</li>
	<li>M-CSFが豊富な上清を回収し、溶液を50 mLの滅菌遠心チューブに移します。-20°Cの冷凍庫で保存してください。 注:遠心分離は、上清から細胞や破片を除去するために非常に重要です。</li>
	<li>L-929上清は、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)の便利で安価な供給源であり、通常、5〜10 ng/mLのM-CSF8を含んでいます。これらの上清には、微量の他のサイトカインや成長因子も含まれているが、マクロファージの生理機能には大きな影響を与えない15。ただし、精製されたM-CSFを購入して、1〜2 ng / mLの濃度でL-929上清の代替品として使用できます8。</li>
</ol>2.大腿骨と脛骨の除去
<ol><li>全米動物実験評議会(Concea)の規範的決議番号18に従い、動物倫理および使用委員会(CEUA)の承認を得て、二酸化炭素窒息後の子宮頸部脱臼による生後8週齢のC57BL-6野生型雄マウス安楽死を続行します。</li>
	<li>マウスを70%エタノール溶液に浸し、滅菌ハサミを使用して腹部に沿って1cmの切開を行います。</li>
	<li>後ろ足の筋肉が完全に露出するまで皮膚をはがします。</li>
	<li>大腿骨と脛骨を壊さないように注意しながら、腰の高さで後ろ足を取り外します。</li>
	<li>後肢を70%エタノール溶液を入れた円錐形の遠心分離チューブに入れます。 注:常に病原体を含まないマウスを使用してください。より多くのセルを達成するために、必ず両方の脚を収集してください。ステップ2は、非滅菌環境(ベンチトップ)で実行されます。したがって、細菌汚染を避けるために、大腿骨と脛骨を慎重に取り除き、無傷のままでいることが重要です。この手順の残りのステップは、層流バイオセーフティキャビネットで実行されます。脚を70%エタノール溶液にさらす時間は10分に制限する必要があります。時間が長いと、骨髄前駆細胞が影響を受ける可能性があります。</li>
</ol>3.脛骨と大腿骨の内腔から骨髄前駆細胞を取得します
<ol><li>70%エタノール溶液から脚を取り出し、滅菌PBSに移します。</li>
	<li>鉗子と消毒用ワイプを使用して、すべての筋肉と筋膜を取り除きます。このステップの後、骨はきれいになるはずです。</li>
	<li>滅菌済みの外科用メスの刃を使用して、両端の骨端を切断し、骨髄を露出させます。</li>
	<li>20 mLシリンジに2%ペニシリン/ストレプトマイシン溶液を補充した10 mLの滅菌PBSを入れ、26 Gの針を接続します。</li>
	<li>片方の手で解剖学的解剖鉗子を使用して骨を保持し、もう一方の手で針を骨腔に挿入します。鉗子で骨を潰さないように注意してください。</li>
	<li>PBSで骨の内側を洗い流し、骨髄を滅菌済みの円錐形遠心チューブに集めます。この手順の後、骨腔は白く見えるはずです。</li>
	<li>収集した細胞を300 x g 、4°Cで10分間遠心分離します。</li>
	<li>上清を捨て、細胞ペレットを1 mLのDMEM/F12-10に再懸濁します。</li>
	<li>ホモジナイズしてさらに9 mLのDMEM/F12-10培地を添加し、細胞を合計10 mLにします。</li>
</ol>4. マクロファージ培養
<ol><li>100 mm x 20 mmの丸いプラスチック製ペトリ皿(合計10皿)のそれぞれに1 mLの細胞前駆細胞を加え、ピペットで細胞をプレート全体に広げて均一に分布させます。ティッシュカルチャー処理した皿は使用しないでください。</li>
	<li>L-929細胞上清の20%を添加したDMEM/F12-10を各ディッシュに9mL加えます。</li>
	<li>37°C、5%CO2 インキュベーターでインキュベートします。</li>
	<li>3日目に 、L-929細胞の上清20%を補充したDMEM/F12-10培地10mLを各ディッシュに加えます。このようにして、培養皿には合計20 mLの培地が備わっており、成熟が終了するまで細胞を増殖させるのに十分です。 注:マクロファージは、表面との強い相互作用によって特徴付けられる天然の接着細胞として、後でディッシュから容易に解離しないため、組織培養処理済みディッシュは使用しないでください。通常、1匹のマウス(2つの大腿骨)の細胞前駆細胞を10個の培養皿に播種することができます。細胞前駆細胞はマクロファージに形質転換し、インキュベーション7日目から10日目まで使用できます。成熟確認は、マクロファージの形態の変化によって識別されます。成熟したマクロファージは接着性があり、不均一な形態を示し、さまざまな方向への偽足の放出によって説明されます。これらの成熟細胞の例を代表的な結果に示します。</li>
</ol>5. マクロファージの採取
<ol><li>すべての培養皿から上清を捨てます。</li>
	<li>各培養皿を10 mLの温かい(37°C)滅菌Mg2+ およびCa2+ 遊離PBSで洗浄します。</li>
	<li>各皿から溶液を捨てます。</li>
	<li>非酵素的細胞解離溶液を37°Cに予温し、各皿に3 mLを加えます。37°C、5%CO2 インキュベーターで10分間インキュベートします。倒立顕微鏡を使用して、マクロファージが培養皿から解離しているかどうかを視覚化します。 注:非組織培養処理されたプラスチックプレートを使用すると、細胞の解離が容易になり、プレートから細胞をこすり落とす必要がなくなります。</li>
	<li>非酵素的細胞解離溶液で血清学的ピペットを使用して皿を何度も洗い、円を描くように動かして、すべてのマクロファージが皿から解離していることを確認します。</li>
	<li>すべての培養皿の溶液を円錐形の50 mL遠心分離チューブに集めます。</li>
	<li>10 mLの滅菌済み温温済みPBSを空の培養皿に加え、ステップ5.4と同様に進めます。この手順は、ステップ5.4の繰り返しであり、すべてのマクロファージが収集されることを保証することを目的としています。</li>
	<li>300 x g、4°Cで10分間遠心分離します。</li>
	<li>上清を捨て、ペレットを1 mLのDMEM/F12-10で再懸濁します。ピペットを使用してゆっくりと慎重に上下に均質化し、細胞の損傷を防ぎます。</li>
	<li>10 μL の Trypan Blue で希釈した 10 μL のマクロファージ溶液を調製し、血球計算盤を使用して細胞をカウントします。 注:7日目には、各ディッシュは約2 x 106 マクロファージを生成します。これは、10枚のプレートで収穫すると、1匹のマウスが約2 x 107 の一次マクロファージを産生できることを意味します。M-CSFはマクロファージの成熟を促進するだけなので、この手順は、本質的にマクロファージであり、他の汚染性白血球を含まない細胞集団を保証する16。</li>
</ol>

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<li>Boltz-Nitulescu, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+rat+bone+marrow+cells+into+macrophages+under+the+influence+of+mouse+L929+cell+supernatant%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Leukocyte+Biology%22%5BJournal%5D)">Differentiation of rat bone marrow cells into macrophages under the influence of mouse L929 cell supernatant.</a> Journal of Leukocyte Biology. 41 (1), 83-91 (1987).</li>
<li>Weischenfeldt, J., Porse, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+marrow-derived+macrophages+%28BMM%29%3A+isolation+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22%5BJournal%5D)">Bone marrow-derived macrophages (BMM): isolation and applications.</a> Cold Spring Harbor Protocols. 2008 (12), (2008).</li>
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</ol>

著者は、利益相反がないことを宣言します。

骨髄由来マクロファージの集団を作製することは、多くの細胞生物学実験モデルにおける基本的なステップであり、特に初代細胞の均一な集団を達成することが重要な場合です。前述のように、細胞前駆細胞はM-CSFの存在下でのみマクロファージに形質転換できます。L-929細胞上清は、M-CSFの主な供給源として使用できます。コスト以外は、組換えM-CSF自体8,17を使用しても問題ありません。組換えM-CSFマクロファージは培養においてより優れた均一性を示すといういくつかの証拠があります。しかし、r-M-CSFまたはL-929上清を使用しても、主要なマクロファージマーカーの遺伝子発現とサイトカイン産生に大きな違いは生じません15。
骨髄前駆細胞は非常に影響を受けやすいです。汚染を避けるためには、清潔な層流バイオセーフティフードの使用が不可欠です。このプロトコルの最初のステップでは、骨の表面から筋肉を取り除くと、汚染の原因となる可能性の...

単球とマクロファージは、骨髄の前駆細胞に由来する単核食細胞です。近年の研究で、マクロファージは卵黄嚢由来の赤骨髄系前駆細胞にも由来することが報告されています1。その由来に関係なく、これらの白血球は恒常性や炎症において重要なエフェクター機能を持っています2,3。単球は末梢血由来の細胞であり、組織内でさらにマクロファージに分化することができる2,4のに対し、マクロファージは、成長因子やサイトカインの局所的な曝露によって制御される表現型や機能を示す不均一な細胞である5。マクロファージはこのような機能的多様性を示すため、多くの疾患モデルで研究されてきました。したがって、マクロファージのin vitro培養は、マクロファージの生理機能とさまざまな疾患におけるマクロファージの役割を理解するための重要なツールになっています。骨髄は、マクロファージ前駆細胞を含む前駆細胞の重要な供給源であり、これを単離して増殖させることで、得られるマクロファージの数を指数関数的に増加させることができます。さらに、骨髄由来のマクロファージは、組織内の異なる刺激に応答して表現型を変化させるため、組織微小環境によって生じる影響を回避するために特に重要である6,7。骨髄前駆細胞は、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)8に曝露されるとマクロファージに変化します。骨髄由来マクロファージは、組織中の生化学的マーカーによって単球由来マクロファージと区別することはできません。これらの細胞は、初代細胞の非常に均質な集団を表しており、他の多くの点で腹膜マクロファージに匹敵します6,9。
マクロファージは細胞機能が不均一であるため、研究者によって長い間徹底的に研究されてきました。これらの細胞は、これらのプロセスに特徴があるため、感染性疾患や炎症性疾患を含むさまざまな実験モデルで使用できます10,11。それらはまた、種々の微小環境刺激に応答したマクロファージの分極を調べるのにも有用であり得る12,13。したがって、ここでは、マウスの骨髄から多数の一次マクロファージを得る目的で、単純で信頼性の高いプロトコルが提供されています。

<table><tbody><tr><td>20ccシリンジ</td><td>DESCARPACK</td><td>SI100S4G</td><td>滅菌シリンジ</td></tr><tr><td>26G針</td><td>BD</td><td>497AQDKT7</td><td>滅菌針</td></tr><tr><td>50ml円錐形遠心チューブ</td><td>SARSTEDT</td><td>62547254</td><td>遠心分離に適したプラスチック円錐管</td></tr><tr><td>70%エタノール溶液</td><td>EMFAL</td><td>490</td><td>滅菌用エタノール溶液</td></tr><tr><td>解剖学的解剖鉗子</td><td>3B SCIENTIFIC</td><td>W1670</td><td>70%エタノール溶液</td></tr><tr><td>C57Bl/6野生型マウス</td>を含む滅菌ビーカーで維持します<td>。ミナスジェライス連邦大学のリオセントラル</td><td>該当しません</td><td>マウスは、特定の病原体がなく、生後6〜10週齢でなければなりません。マウスは、輸送のストレスから回復するために少なくとも1週間前に収容する必要があります</td></tr><tr><td>細胞培養フラスコ T175</td><td>GREINER</td><td>C7481-50EA</td><td>T-175フラスコ、傾斜した首、表面積75 cm2、フィルターキャップ付き、DNaseフリー、RNaseフリー</td></tr><tr><td>細胞培養フラスコT75</td><td>GREINER</td><td>C7231-120EA</td><td>T-75フラスコ、傾斜した首、表面積75 cm2、フィルターキャップ付き、DNaseフリー、 RNaseフリー</td></tr><tr><td>の消毒または赤ちゃんのおしりふき?</td><td>クロロックス</td><td>該当なし</td><td>骨の洗浄に役立ちます</td></tr><tr><td>蒸留水</td><td>GIBCO</td><td>15230</td><td>滅菌蒸留水</td></tr><tr><td>DMEM/F12-10</td><td>該当</td><td>なし 該当なし</td><td>10mLのウシ胎児血清(FBS)と1mLのペニシリン/ストレプトマイシン(P / S)をDMEM / F12(q.s.p. 100 mL)に加え</td></tr>ます <tr><td>DMEM / F12-10 +L-929細胞の上清</td><td>該当</td><td>なし 該当しません</td><td>L929細胞培養の上清の20%をDMEM / F-12-10</td></tr><tr><td>Dulbecco&primeに添加します。sモディファイドイーグル&プライム;s ミディアム - F12 (DMEM/F12)</td><td>GIBCO</td><td>12500096</td><td>DMEM: F-12 ミディアムには、2.5 mM L-グルタミン、15 mM HEPES、0.5 mM ピルビン酸ナトリウム、1200 mg/L 重炭酸ナトリウムが含まれています。粉末を1リットルの 蒸留水に再懸濁し、3,7gの重炭酸ナトリウムを加えます。.pHを7,2に調整し、0,22 &micro;Mでろ過します。C冷凍庫</td></tr><tr><td>ウシ胎児血清、認定、熱不活性化、米国(FBS)</td><td>GIBCO</td><td>10082147</td><td>DMEM-F12</td></tr><tr><td>血球計算盤</td>の濃縮 <td>SIGMA-ALDRICH</td><td>Z359629</td><td>顕微鏡でマクロファージをカウントするために使用されます</td></tr><tr><td>L-929細胞</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>ATCC # CCL-1</td><td>L-929は、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)</td></tr><tr><td>の供給源として使用されるマウス線維芽細胞の系統ですニコンTIエクリプス&nbsp;</td><td>ニコン&nbsp;</td><td>該当なし</td><td>Nikon TI Eclipseは蛍光および位相差顕微鏡です</td></tr><tr><td>非酵素的細胞解離溶液</td><td>CELLSTRIPER(CORNING)</td><td>25-056-CI</td><td>非酵素的細胞解離溶液は、それらを損傷することなくプレートからマクロファージを除去し</td></tr>ます <tr><td>未処理の丸い培養皿 100 &times; 20 &ndash;mm</td><td>コーニング</td><td>CLS430591</td><td>組織培養処理されたペトリ皿や組織培養処理プレートは使用しないでください</td></tr><tr><td>P3199 ペニシリン G カリウム塩</td><td>USBIOLOGICAL</td><td>113-98-4</td><td>抗生物質</td></tr><tr><td>ペニシリンとストレプトマイシン (P/S) 溶液</td><td></td><td></td><td>0,26 グラムのペニシリンと 0,40 グラムのストレプトマイシンを使用してください。滅菌PBS40mLと混合します。水平層流キャビネット内で、0,22&マイクロを使用します。Mは、冷凍庫の1.5 mLマイクロチューブに1.0 mLのアリコートをろ過して保存します(-20°C;C)</td></tr><tr><td>カルシウムとマグネシウムを含まないリン酸緩衝生理食塩水(PBS)</td><td>MEDIATECH</td><td>21-040-CM</td><td>滅菌済み</td></tr><tr><td>S7975 ストレプトマイシン硫酸塩、650-850U/mg</td><td>USBIOLOGICAL</td><td>3810-74-0</td><td>抗生物質</td></tr><tr><td>10mLまたは25mLの血清ピペット</td><td>SARSTEDT</td><td>861254001</td><td>血清ピペットは、1mL以上の容量を使用</td></tr><tr><td>重炭酸ナトリウム</td><td>SIGMA-ALDRICH</td><td>144-55-8</td><td>DMEM-F12用pH補正</td></tr><tr><td>ソフトウェアNISエレメントビューア</td><td>ニコン</td><td>該当なし</td><td>NIS-Elements Viewerは、画像ファイルやデータセットを閲覧できる無料のスタンドアロンプログラム</td></tr>です <tr><td>滅菌PBSとP/S溶液の2%</td><td>LABORCRIN</td><td>590338</td><td>滅菌PBSの40mLにP/Sを1mL加える</td></tr><tr><td>ストレートアイリスハサミ</td><td>KATENA</td><td>該当なし</td> エ<td>タノール溶液70%の滅菌ビーカーで維持</td>します</tr><tr><td>L-929細胞の上清</td><td>該当なし</td> 該当<td>なし</td><td>L-929は、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)の供給源として使用されるマウス線維芽細胞の系統です。L-929上清は、プロトコル外科</td></tr><tr><td>用メスブレードNo.24ステンレス鋼</td><td>スワンモートン</td><td>311</td><td></td></tr>から骨トリ<tr><td>パンブルー溶液、0.4%</td><td>GIBCO</td><td>15250061</td><td>トリパンブルー溶液、0.4%から取得されましたトリパンブルー溶液、0.4%は、色素排除試験</td></tr><tr><td>トリプシン/ EDTA溶液0,05%</td><td>GIBCO</td><td>25300-062</td><td>を使用して細胞生存率を評価するための細胞染色として日常的に使用されています</td></tr><tr><td>細胞培養用注入用水(WFI)</td>から細胞を解離するために使用されます <td>GIBCO</td><td>A12873</td><td>滅菌およびエンドトキシンフリーの水</td></tr></tbody></table>

マウス由来骨髄由来マクロファージの単離と培養

Isolation and Culture of Bone Marrow-Derived Macrophages from Mice

マクロファージは、ホメオスタシスと炎症において重要なエフェクター機能を持っています。これらの細胞は、体内のあらゆる組織に存在し、微小環境に存在する刺激に応じてプロファイルを変化させる重要な能力を持っています。サイトカインはマクロファージの生理機能、特にIFN-γとインターロイキン4に深く影響し、それぞれM1型とM2型を生成します。これらの細胞の多様性により、骨髄由来マクロファージの集団の産生は、細胞生物学の多くの実験モデルにおける基本的なステップとなり得ます。このプロトコルの目的は、骨髄前駆細胞に由来するマクロファージの単離と培養において研究者を支援することです。病原体を含まないC57BL/6マウスの骨髄前駆細胞は、マクロファージコロニー刺激因子(M-CSF)への曝露によりマクロファージに変換されます。これは、このプロトコルでは、マウス線維芽細胞系統L-929の上清から得られます。インキュベーション後、成熟したマクロファージは7日目 から10日目まで 使用できます。1匹の動物が約2 x 107 マクロファージの供給源になることがあります。したがって、これは、細胞培養の基本的な方法を使用して大量の初代マクロファージを得るための理想的なプロトコルです。

マクロファージは、特殊な生理学的特性を持つ大きくて付着性の細胞です。それらは、ガラスやプラスチックに接着する能力のために、培養における多様な形態学的提示を示し、それらの典型的な広がりの形態は細胞質伸長の放出に関連しています(図1)。骨髄前駆細胞がL-929細胞上清からM-CSFに曝露され、成熟マクロファージへの形質転換を開始すると、ペトリプレートに付着するようになります。
図2 は、骨髄前駆細胞から成熟マクロファージへの変換の動態を示しています。3日目には、いくつかの未成熟マクロファージが現れ、そのほとんどが膜突起がほとんどない典型的な丸い形態を示します(図3)。それらはプロセス全体に沿って変化しますが、通常、現在のプロトコルの最大効率を保証するのに十分な数と成熟度を達成するためには7日間が必要です。
また、マクロファージは、大量の抗原性または非抗原...

本プロトコールは、マウスからの骨髄由来マクロファージの単離および培養について記載している。

Macrophages have important effector functions in homeostasis and inflammation. These cells are present in every tissue in the body and have the important ...

このプロトコルは、骨髄に由来し、組織因子やサイトカインにさらされたことのない刺激されていないマクロファージを大量に取得することを目的としています。この手法の主な利点は、1匹の動物から獲得した細胞の数です。正しい手順で、約2×10の7乗のマクロファージを得ることができます。この方法は、細胞生物学、病理学、免疫学、寄生虫学などのマクロファージを研究するさまざまな分野の研究者に役立つ可能性があります。細胞は常に汚染を受けやすいため、すべての無菌ステップに注意し、層流バイオセーフティキャビネットを使用することは、細胞の生存率を維持するために必要です。手順を実演するのは、Izabela Aparecida de Souzaです。当研究室の修士課程の学生です。適切に安楽死させた8週齢のC57BL/6野生型雄マウスで手順を開始するには、マウスを70%エタノール溶液に浸します。滅菌ハサミを使用して、腹部に沿って1センチの切開を行い、後肢の筋肉が完全に露出するまで皮膚を取り除きます。次に、大腿骨と脛骨を壊さずに、股関節の高さで後ろ足を慎重に取り外します。無傷の後肢を70%エタノール溶液が入った円錐形の遠心分離チューブに入れます。層流バイオセーフティキャビネット内で、分離された脚を70%エタノールから滅菌PBSに移します。鉗子と消毒用ワイプを使用して、付着しているすべての筋肉と筋膜を取り除き、骨をきれいにします。次に、滅菌済みの外科用メスの刃を使用して、両端の骨端を切断し、骨髄を露出させます。20ミリリットルの注射器に、2%ペニシリンストレプトマイシン溶液を補充した10ミリリットルの滅菌PBSを入れ、26ゲージの針を接続します。解剖鉗子を使用して片手で骨を保持します。もう一方の手で、骨をつぶさずに慎重に針を骨腔に挿入します。次に、PBSで骨の内側を洗い流し、骨髄を滅菌済みの円錐形遠心チューブに集めます。洗浄すると、骨腔は白く見えるはずです。採取した細胞を300G、摂氏4度で10分間遠心分離します。上清を捨て、細胞ペレットを1ミリリットルのDMEM/F1210培地に再懸濁します。懸濁液を均質化し、さらに9ミリリットルの媒体を追加して、総容量を最大10ミリリットルにします。100ミリリットル×20ミリメートルの10個の丸いプラスチックペトリ皿のそれぞれに、前駆細胞懸濁液1ミリリットルを加えます。ピペットで細胞をプレート全体に広げて、均一な分布を得ます。次に、20%のL929細胞上清を補充した9ミリリットルのDMEM/F1210を各皿に加えます。皿を摂氏37度と二酸化炭素5%でインキュベートします。3日目に、各皿に20%のL929細胞上清を補充した10ミリリットルのDMEM/F1210培地を追加します。得られた各皿中の20ミリリットルの培地は、成熟するまでの細胞増殖に十分です。すべて

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Research

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