Name: 光干渉断層撮影 による マウス脈絡膜への黒色腫の移植と評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2022-12-02T14:10:00.000+00:00
Duration: 5 min 46 s
Description: 学ぶマウス脈絡膜への黒色腫移植と光干渉断層撮影による評価法。リアルタイムの生体イメージングで腫瘍成長を継続的にモニタリングし、均一な研究群を作成して治療研究を推進する。

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この研究は、イスラエルのイスラエル科学財団(ISF)からのアリー・マルコビッチのための助成金1304/20によって部分的に支援されました。組織学分析のために、イスラエルのレホヴォトにあるカプラン医療センター病理学部のShahar Ish-ShalomとAdy Yosipovichに感謝します。

プロトコルの実験は、イスラエルの動物実験評議会によって承認され、眼科および視覚研究における動物の使用に関するARVOステートメントに準拠しています。本研究には、8〜10週齢の雌C57BL / 6マウスを使用し、12/12時間の明暗サイクルに曝露しました。動物は商業的な供給源から入手した( 材料表を参照)。
1. 細胞培養
<ol><li>B16LS9細胞をRPMI 1640培地で培養し、10%ウシ胎児血清、2 mM L-グルタミン、1 mMピルビン酸ナトリウム、25 mM HEPES、1%必須ビタミン混合物、200 U/mLペニシリン、および200 mg/mLストレプトマイシン( 材料の表を参照)を添加し、5%CO2を含む加湿37°Cインキュベーターで培養します。</li>
	<li>注射用の細胞を70%〜80%のコンフルエントで回収する。</li>
</ol>2.動物の準備
<ol><li>ケタミン(75 mg / kg体重)とメデトミジン(0.5 mg / kg体重)の麻酔薬混合物を調製します。.単回注射で麻酔薬混合物を腹腔内に注射することによりマウスを麻酔する。</li>
	<li>局所眼科麻酔薬オキシブプロカイン(0.4%)を両眼に塗布する。</li>
	<li>トロピカミド(0.5%)を局所的に塗布することにより、マウスの瞳孔を拡張します。.</li>
</ol>3. 結膜腹膜と強膜路を脈絡膜下腔に作成する
<ol><li>乾燥を避けるために、潤滑剤として1.4%ヒドロキシエチルセルロース( 材料の表を参照)を両眼に塗布します。右目に0.5%トロピカミドを塗ります。</li>
	<li>マウスの操作された目を手術顕微鏡で観察します( 材料の表を参照)。滅菌眼内鉗子でまぶたを開いたままにします。</li>
	<li>眼内鉗子を使用して、上側頭辺縁結膜を保持し、鼻下位置に向かって引っ張ります22。手順全体を通してこの位置を保持して固定します(図1A)。</li>
	<li>30 Gの針先を使用して、辺縁の後方約1〜2 mmの背側頭領域に小さな(1〜2 mm)結膜腹膜を作成します。 注:より細い針を使用すると、過度の穿刺を防ぎ、腫瘍の位置をより正確にすることができます。</li>
	<li>腹膜の開口部から余分なテノンのカプセルを取り除きます。 注:テノンのカプセルは、目の地球22を囲む密な結合組織の層です。</li>
	<li>この場所に、強膜を貫通するように針先を挿入します。脈絡膜の茶色が強膜の露出した白質を通して現れるまで、脈絡膜下腔に管を作るために切除を行います(図1B)。</li>
</ol><img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/64632/64632fig01.jpg"> 図1:腫瘍細胞接種 。 (A)上側頭辺縁結膜は、眼内鉗子を使用して保持され、鼻下位置に向かって引っ張られます。(B)30Gの針の先端を挿入して強膜を貫通し、脈絡膜下腔への軌跡を作るために切除を行う。(C)細胞を装填し、32Gの針を装着した注射器をトラックに挿入し、細胞を注入する。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/64632/64632fig01large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
4.メラノーマ細胞の接種
<ol><li>70,000個のB16LS9細胞を2 μLのPBSに再懸濁します。この量は目ごとに推定されます。</li>
	<li>細胞を滅菌済みの10 μLガラス製ハミルトンシリンジ( 材料表を参照)にロードし、32 Gの鈍い針を45°の角度でねじります。</li>
	<li>装填したシリンジ針を、手順3で作成したトラックに約2mm挿入します。</li>
	<li>2 μLの細胞懸濁液を注入します。</li>
	<li>注射後、すべての液体がなくなるまで2〜3秒間針を所定の位置に保持します。</li>
	<li>トラックからの漏れを防ぐために、針をゆっくりとゆっくりと引き出して取り外します(図1C)。 注:注射の速度と力を調整すると、腫瘍の発生パターンに影響を与える可能性があります。これらのパラメータは、適用される適切な力と速度を特定するために実験している個人によって較正されることが示唆されています。合計70,000個の細胞を予備実験で決定した。ただし、細胞培養の種類やバッチ、またはマウスの系統間でばらつきがある可能性があるため、この数のキャリブレーションが必要です。</li>
</ol>5.注射の位置を評価する
<ol><li>メラノーマ細胞接種直後にOCTスキャンで注射された眼を観察し、網膜剥離(RD)、網膜損傷、および/または硝子体の細胞の出現を特定します23。 注意: 必要に応じて、トロピカミド、オキシブプロカイン、エチルセルロースを再塗布します。.</li>
	<li>手順 5.1 の OCT スキャンに基づいて、RD パターン21 を次のように分類します。(2)硝子体内の硝子体観察用細胞材料への漏出;(3) RD の拡張 RD - 複数のサイト。</li>
	<li>に基づいて腫瘍局在を予測する:(1)局所RD予想脈絡膜腫瘍;(2)硝子体内の硝子体予想腫瘍への漏出;(3)拡張RD予想変数および分散腫瘍(図2)。 注:局所RD(約50%)を有するマウスのみが、脈絡膜に限定された腫瘍を発症すると予想されます。</li>
</ol>6.RDの高さに基づく腫瘍サイズの予測
<ol><li>OCTセグメンテーション/分析ソフトウェア( 材料表を参照)を使用してOCTスキャンのローカルRDの高さを測定し、次のグループに従って分類します:小さい= &lt;300 μm;ミディアム= 300-400μm;大きい= &gt;400μm。</li>
	<li>以下の基準に従って、注射から5日以内に腫瘍が到達すると予想される量を評価します。 小さなRD高さは、通常、小さなサイズの腫瘍(腫瘍体積が0.0059 mm 3から0.07 mm 3の範囲で、平均体積が0.027 ± 0.005 mm3)で観察されます。 中程度のRD高さは、中小規模の腫瘍の両方に見られます(腫瘍体積は0.015 mm 3から0.15 mm 3の範囲で、平均体積は0.056±0.016 mm3)。 大きなRD高さは、最大0.36 mm3の広範囲の腫瘍体積と関連しています。 注:予想される腫瘍サイズの範囲は、以前の結果から得られ、小、中、大の腫瘍の3つのグループに分けられました。</li>
</ol>7.術後処置
<ol><li>眼科用オフロキサシン0.3%を局所的に塗布する。</li>
	<li>塩酸アチパメゾール(3 mg / kg)を皮下注射して麻酔を逆転させます。.</li>
	<li>動物の痛みや苦しみを軽減するために、ブプレノルフィン(0.05 mg / kg体重)を1日2回3日間皮下注射します。.</li>
	<li>メラノーマ細胞注入後5日目に、以下の手順に従って腫瘍サイズを評価します。<ol><li>ステップ2.1に記載されているようにマウスを麻酔します。トロピカミド(0.5%)を塗布します。</li>
		<li>縦方向および矢状OCTスキャンで眼を検査し、OCTセグメンテーション/分析ソフトウェアを使用して腫瘍の体積と局在を測定します。</li>
		<li>式24を使用して腫瘍体積を計算します:V = a * b * c * 6 / π(a、b、およびc =それぞれ長さ、幅、および高さ)。</li>
		<li>手順7.4.1〜7.4.3で説明されているように、2〜3日ごとに腫瘍のサイズを調べます。 注:異なるマウス系統または細胞株を使用する場合は、手順を最適化する必要があります。</li>
	</ol></li>
</ol>

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</ol>

マルコビッチA.L.:ステババイオテック(P)、イェダワイツマン(P)、アイヨンメディカル(C、P)、モルイスム(P)。(C) = コンサルタント;(P) = 特許。他のすべての著者には競合する利害関係はありません。

ブドウ膜黒色腫は壊滅的な病気であり、新しい治療アプローチが非常に必要とされています。しかし、ブドウ膜黒色腫と潜在的な治療法に関する研究は、ブドウ膜黒色腫動物モデルの技術的課題によって制限されています1,25。がん細胞の眼内注射によって誘発される眼腫瘍は、おそらくマウスの目の寸法が小さいため、局在とサイズの両方で非常に変動します。このような変動性は、腫瘍進行の包括的な評価に対する障害である。本明細書に記載される実験的アプローチは、ライブOCTイメージングに基づいて、脈絡膜下B16LS9メラノーマ細胞注入直後の眼内腫瘍局在および予測サイズを評価することを可能にする21。長年にわたり、ライブイメージング技術の開発は、事前に定義されたエンドポイントだけでなく、実験全体を通して腫瘍の進行を追跡できるようにすることで、癌研究に利点をもたらしました。このような方法としては、例えば、レポーター細胞を利用した生物発光イメージング、これは、眼腫瘍の同定を含む、生きている動物における腫瘍および転...

ブドウ膜黒色腫(UM)は、成人で最も頻度の高い眼内原発性悪性腫瘍です。眼の黒色腫の約90%は、ブドウ膜路の脈絡膜領域のメラノサイトに起因します1。UMは、患者の50%近くが転移性疾患を発症し、肝臓が転移の主要な部位であると推定されているため、罹患率と死亡率の主な原因です2。原発巣の早期治療は転移の可能性を減らす可能性がありますが、転移の形成を防ぐ効果的な治療法はありません3。
ブドウ膜黒色腫の標準治療には、視神経障害、網膜症、ドライアイ症候群、白内障による視力喪失を伴う照射療法が含まれます。外科的切除は通常、病変の成長が認識され特徴付けられるまで延期されます。しかし、そのような遅延は転移性疾患の発症を可能にする可能性がある4。場合によっては、無駄な除核が必要です。もちろん、この根本的な手順は視力を損ない、劇的な美的劣化をもたらします。
ブドウ膜黒色腫を研究するための実験モデルの開発に捧げられた多くの努力がありました。この悪性腫瘍の正確な評価を可能にする前臨床動物モデルは、ブドウ膜黒色腫の新しい診断および治療戦略を研究するための鍵となります。眼黒色腫の実験動物モデルは、主にマウス、ラット、およびウサギにおける腫瘍細胞の接種に基づいている5,6。マウスモデルは費用対効果が高く、繁殖速度が速く、ヒトとのゲノム類似性が高いため、黒色腫の研究に広く使用されています。マウス皮膚黒色腫細胞株B16は、C57BL6マウスに接種し、同系腫瘍を誘導するために一般的に利用されています。このモデルを使用してブドウ膜黒色腫を誘発する場合、腫瘍を持った眼は通常、接種後7〜14日で除核する必要があります。さらに、B16は非常に侵襲的なモデルです。眼の免疫特権の性質は転移をサポートし、転移は通常、腫瘍細胞接種後3〜4週間で検出される可能性があります。元のB16系統の継代培養は、明確な転移特性を示します6。例えば、クイーンズ黒色腫ラインは高い転移率7,8を有する。B16LS9細胞株は樹状細胞形態を有し、親皮膚黒色腫株B16F19を注射したC57BL/6マウスの肝転移に由来する。眼の後部コンパートメントに注射すると、これらの細胞は眼内腫瘍を形成し、組織学的にはヒトブドウ膜黒色腫に似ており、C57BL / 6では肝臓特異的転移を形成しますが、Balb / Cでは形成されません、マウス10、11、12。遺伝的には、細胞は、肝細胞増殖因子13の細胞受容体として作用するc-met癌原遺伝子のより高い発現によって特徴付けられる。対照的に、親B16の10回目の継代であるB16F10は、眼内接種すると主に肺に転移する14。B16F10とB16LS9の両方が12に着色されています。
いくつかの重要な課題が、マウスブドウ膜黒色腫モデルの成功を制限しています。第一に、腫瘍細胞の逆流は、眼外または結膜下黒色腫を引き起こし得る。第二に、メラノーマ細胞の眼内接種後の腫瘍増殖はしばしば非常に多様であり、治療と進行の評価が困難である。別の大きな困難は、in vivoで腫瘍の成長を追跡する能力が限られていることです。ルシフェラーゼ発現腫瘍などの生物発光イメージングは、眼腫瘍の成長を監視するために一般的に使用されていますが15,16、腫瘍の眼内位置に関する情報を提供することはできません。したがって、腫瘍の評価は、典型的には、眼10、17の除核に続いて行われる。これは、腫瘍の進行と治療への反応を広範囲に特徴付ける能力を大幅に制限します。ブドウ膜黒色腫を研究する際のもう一つの大きなハードルは、色素性マウスの病変を監視することの難しさです。これらの困難を克服する新しいアプローチは、動物モデルにおけるブドウ膜黒色腫の研究を促進するために求められています。
光干渉断層撮影(OCT)は、超音波を含む他の方法論では比類のない高解像度で目のさまざまなセクションの奥深くを画像化する独自の機能を提供します18,19。OCTイメージングは、様々な眼疾患を研究するために動物モデルで使用されています20。最近、OCTイメージングは、眼内腫瘍の成長を評価するための非侵襲的手段として実証された21。ここで説明するプロトコルは、マウス脈絡膜への黒色腫細胞の移植と、細胞接種時の眼内腫瘍の局在とサイズを予測するためのOCTの利用を示しています。

<table><tbody><tr><td>10 &mu;L ガラス シリンジ (Hamilton Co., Bonaduz, Switzerland)</td><td>Hamilton</td><td>721711</td><td></td></tr><tr><td>30 G needles</td><td>BD Microbalance</td><td>2025-01</td><td></td></tr><tr><td>Atipamezole hydrochloride</td><td>Orion Phrma</td><td></td><td></td></tr><tr><td>B16LS9 cells</td><td>from Hans Grossniklaus USA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphine&nbsp;</td><td>リヒターファーマ</td><td>102047</td><td></td></tr><tr><td>C57BL/6 雌マウス</td><td>Envigo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>必須ビタミン混合物</td><td>satorius</td><td>01-025-1A</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清レ</td><td>ニウム</td><td>10270106</td><td></td></tr><tr><td>HEPES</td><td>satorius</td><td>03-025-1B</td><td></td></tr><tr><td>ヒドロキシエチルセルロース 1.4% 点眼薬</td><td>フィッシャー製薬</td><td>390862</td><td></td></tr><tr><td>InSight OCTセグメンテーションソフトウェア&nbsp;</td><td>フェニックス・マイクロン株式会社&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ケタミン</td><td>ブレマー製薬GMBH(メディマーケット)</td><td>17889</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>サトリウス</td><td>03-020-1B</td><td></td></tr><tr><td>メデトミジン&nbsp;</td><td>zoetis(vetmarket)</td><td>102532</td><td></td></tr><tr><td>オフロキサシン0.3%点眼剤</td><td>アラガン</td><td>E92170</td><td></td></tr><tr><td>光干渉断層撮影&nbsp;</td><td>フェニックス・マイクロン株式会社&nbsp;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>オキシブプロカイン 0.4%</td><td>フィッシャーファーマシューティカル</td><td>393050</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン-アンホテラシン</td><td>サトリウス</td><td>03-033-1B</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS)&nbsp;</td><td>satorius</td><td>02-023-1a</td><td></td></tr><tr><td>RPMI細胞培地</td><td>satorius</td><td>01-104-1A</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td>satorius</td><td>03-042-1B</td><td></td></tr><tr><td>手術顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td>OPMI-6 CFC</td><td></td></tr><tr><td>Tropicamide 0.5%</td><td>Fisher Pharmaceutical</td><td>390723</td><td></td></tr></tbody></table>

光干渉断層撮影 による マウス脈絡膜への黒色腫の移植と評価

Implantation and Evaluation of Melanoma in the Murine Choroid via Optical Coherence Tomography

実験的脈絡膜黒色腫モデルを確立することは、正しい局在で腫瘍を誘導する能力の観点から困難である。さらに、 生体内で 後脈絡膜黒色腫を観察することが困難であるため、腫瘍の位置と成長評価がリアルタイムで制限されます。ここで説明するアプローチは、多段階脈絡膜下B16LS9細胞注入手順 を介して マウスに脈絡膜黒色腫を確立するための技術を最適化します。マウスのuveaの小さな寸法に正確に注入できるようにするために、完全な手順は顕微鏡下で実行されます。第一に、結膜腹膜切開術が眼の背側頭領域に形成される。次に、露出した強膜に針を挿入することにより、脈絡膜下腔への管が作成されます。これに続いて、鈍い針を管に挿入し、黒色腫細胞を脈絡膜に注入します。注射直後に、非侵襲的光干渉断層撮影(OCT)イメージングを利用して、腫瘍の位置と進行を決定します。網膜剥離は、腫瘍部位およびサイズの予測因子として評価される。提示された方法は、マウスにおける脈絡膜局在性黒色腫の再現性のある誘導および腫瘍増殖評価のライブイメージングを可能にする。このように、それは眼内腫瘍を研究するための貴重なツールを提供します。

B16LS9細胞を注射した直後にOCTを介して眼を検査した。注射後に局所網膜剥離が観察された。マウスは、焦点(図2、上のパネル)、硝子体への漏出(図2、中央のパネル)、および拡張RD(図2、下のパネル)の3つのRDパターンを示しました。拡張RDは、注射による損傷によって引き起こされる可能性があります。注射直後のRDのパターンと注射後5〜7日の腫瘍の局在との間には関連があった。図2で実証されたように、限局性RDは脈絡膜に限定された腫瘍細胞増殖と関連していた。しかし、焦点RDを示す動物における注射後の硝子体の細胞の観察は、脈絡膜に加えて硝子体腔における腫瘍増殖を示した。最後に、注射後に拡張RD、または複数の部位でのRDが観察された場合、腫瘍は脈絡膜および硝子体全体に分散していた。以前の研究では、OCTによる腫瘍の特性評価が組織学的検査と完全に相関していることが示されました<sup cla...

本プロトコールは、光干渉断層撮影を利用したマウス脈絡膜における黒色腫の移植および評価を記載する。

Establishing experimental choroidal melanoma models is challenging in terms of the ability to induce tumors at the correct localization. In addition, ...

眼の後部として腫瘍を確立することは困難です。この方法は、マウスにおける再現性のある脈絡膜黒色腫腫瘍の誘導、および評価のための腫瘍増殖のライブイメージングを可能にする。このプロトコルは、OCTライブイメージングを利用して、腫瘍細胞接種時にすでに腫瘍の位置を評価し、生きた動物の腫瘍増殖を追跡します。ブドウ膜黒色腫は、転移率が50%に近い壊滅的な病気です。実験モデルの開発は、新しい治療の可能性を目指した研究を進めるための鍵です。この方法の利点は、注射の成功を即座に評価することで、均質な腫瘍を有する研究グループに到達し、ライブイメージングによってそれらを継続的に追跡することができることである。腫瘍の進行を調べる。小さなマウスの目に注射するには練習が必要です。注入された細胞を視覚化する機能により、成功をすぐに評価し、必要に応じてより多くのマウスで繰り返すことができます。手順を実演するのは、カプランメディカルセンターの眼科研究所のディミトリゲイバー博士です。まず、麻酔をかけたマウスの両眼に0.4%局所眼科麻酔薬オキシブプロカインを塗布します。次に、瞳孔を拡張するために0.5%トロピカミドを両眼に局所塗布し、続いて目の乾燥を防ぐために潤滑剤として1.4%ヒドロキシエチルセルロースを塗布します。マウスの片方の目を手術用顕微鏡で観察します。滅菌眼内鉗子でまぶたを開いたままにします。次に、上側頭辺縁結膜を保持し、鼻下の位置に向かって引っ張ります。手順全体を通して辺縁結膜を保持することにより、この位置を確保します。30ゲージの針先を使用して、辺縁の後方約1〜2ミリメートルの背側頭領域に小さな結膜腹膜を作成します。腹膜の開口部から余分な腱嚢を取り除きます。針先を挿入して強膜を貫通し、脈絡膜の茶色が強膜の露出した白質を通して現れるまで脈絡膜下腔にトラックを作成します。細胞を滅菌済みの10マイクロリットルのガラス製ハミルトンシリンジに、32度の角度でねじった32ゲージの鈍い針を取り付けます。装填した注射器の針を作成した管に約2ミリメートル挿入し、2マイクロリットルの細胞懸濁液を注入する。注射後、すべての液体がなくなるまで2〜3秒間針を所定の位置に保持します。管からの漏れを防ぐために、針をそっと引き出して針を取り外します。メラノーマ細胞接種の直後に、注射した動物の眼をOCTスキャンにより観察する。スキャンに基づいて、網膜剥離またはRDパターンを、局所RD、硝子体への漏出、または拡張RDの3つのカテゴリに従って分類します。OCTセグメンテーション解析ソフトウェアを開き、RDの高さに基づいて腫瘍のサイズを予測します。OCT スキャンでローカル RD の高さを測定し、3 つのグループに分類します。術後の段階では、オフロキサシンの0.3%を局所的に塗布する。脈絡膜下細胞注入後の腫瘍増殖のOCTベースの予測をこの図に示します。マウスは、RD、焦点、硝子体への漏出、および拡張RDの3つのパターンを示しました。注射直後のRDのパターンと注射後5日目の腫瘍の局在との間には関連があった。限局性RDは、脈絡膜に限定された腫瘍細胞増殖と関連していた。しかし、Focal RDを示す動物における注射後の硝子体の細胞の観察は、硝子体腔および脈絡膜における腫瘍増殖を示した。注射後に拡張RDが観察された場合、腫瘍は脈絡膜と硝子体全体に分散していました。このモデルで誘導される腫瘍サイズの範囲は、小、中、大に分けることができます。ここに示されているのは、注射後のRD高さのOCT測定の代表的な画像、対応する眼底画像、注射後5日目の腫瘍の高さと幅の水平OCTスキャン、および対応する眼底画像、および同等の腫瘍測定値を示す対応するH&E染色眼切片です。細胞注入直後に小、中、または大のRDを示したマウスの腫瘍体積測定値をここに提示します。注射力を調整すると、腫瘍のサイズと位置に影響を与える可能性があります。これを校正し、注射後のOCTによる網膜剥離の誘導パターンを評価することが重要です。脈絡膜腫瘍のライブイメージングは、腫瘍の進行に対するさまざまな要因または潜在的な治療法の効果を調べることを可能にする重要な実験ツールです。

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学ぶマウス脈絡膜への黒色腫移植と光干渉断層撮影による評価法。リアルタイムの生体イメージングで腫瘍成長を継続的にモニタリングし、均一な研究群を作成して治療研究を推進する。

光干渉断層撮影によるマウス脈絡膜への黒色腫の移植と評価

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