Name: ヒト卵胞の遺伝子発現解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-02-17T14:30:00.000+00:00
Duration: 9 min 9 s
Description: 学ぶ凍結融解後の卵巣組織からヒト卵胞を酵素学的・機械的分離法で単離し、遺伝子発現解析を行う手法。卵胞の構造を保持しながら生殖機能や疾患関連遺伝子の発動を評価できる。

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この研究は、Excellence of Science(EOS)助成金(ID:30443682)によってサポートされました。ベルギー国立科学財団(FNRS)の准研究員。

このプロジェクトは、エラスメ病院倫理委員会(ベルギー、ブリュッセル)によって承認されました。このプロトコルに含まれる患者は、2000年に化学療法曝露前に生殖能力温存のための卵巣組織凍結保存(OTC)を受けました。患者は、保管期間の終わりに残りの凍結組織を研究に寄付するための書面による同意に署名しました。
1.凍結保存された卵巣組織の解凍
<ol><li>5つの解凍液を含む6ウェルプレートを準備します。最初のウェルには、Leibovitz-15培地、0.1 mol/Lスクロース、1.5 mol/Lジメチルスルホキシド(DMSO)、および1%ヒト血清アルブミン(HSA)からなる5 mLの凍結保護剤溶液が含まれています。次のウェルには、凍結保護剤の濃度が低下した5 mLのLeibovitz-15培地が含まれています:1 mol / L、0.5 mol / L、および2 x 0 mol / L DMSO。 注意: 凍結保護剤溶液は、不妊治療クリニックで使用されるプロトコルによって異なる場合があります。</li>
	<li>安全規則(極低温手袋、保護メガネ、閉じた靴)に従って液体窒素から卵巣皮質断片を含むバイアルを取り出し、チューブを室温(RT)で30秒間保ちます。</li>
	<li>バイアルをRTで2分間、穏やかに攪拌しながらバイアルに浸してから、垂直フードの下でバイアルを開き、6ウェルプレートの最初のウェル(氷上)に直接移します。</li>
	<li>フラグメントを6ウェルプレートの各ウェルに順次移し、それぞれに5 mLのLeibovitz-15培地中の凍結保護剤の濃度が低下します。各培地中の組織を5分間(氷上で)穏やかに攪拌する。</li>
</ol>2.卵胞の分離
注:すべての実験は、RNaseフリーの材料を使用して、垂直フードの下で実施されます。
<ol><li>解凍した組織を、10 mLの解剖培地(Leibovitz-15培地、ピルビン酸ナトリウム[2 mmol / L]、L-グルタミン[2 mmol / L]、HSA [0.3%]、ペニシリンG [30 μg / mL]、およびストレプトマイシン[50 μg / mL])で満たされた2 mmグリッドのペトリ皿に移します。必要に応じてメスで組織のサイズを調整します。 注:臨床プロトコルに応じて、凍結組織のサイズは8 mm x 4 mm x 1 mmから4 mm x 2 mm x 1 mmまでさまざまです。このプロトコルでは、4 mm x 2 mm x 1 mmの2つのストリップが使用されました。</li>
	<li>ティッシュスライサーの3枚を重ね、2つのブロックの間に断片を置き、ブレードを使用して断片を半分に切断し、ブロックをスライドさせて厚さ0.5mmの断片を2つ得た。</li>
	<li>ティッシュチョッパーを使用して断片を切断し、より小さな断片を取得します。必要に応じて、組織が完全に粉々になるまでメスで残りの部分を手動で切断します。</li>
	<li>断片化した組織を、7 mLの消化培地(0.2%コラゲナーゼと0.02%DNaseを添加した培地[マッコイの5A培地、3 mmol/Lグルタミン、0.1% HSA、30 μg/mLペニシリンG、50 μg/mLトランスフェリン、4 ng/mLセレン、50 μg/mLアスコルビン酸])で満たされたグリッド状のペトリ皿に移します。</li>
	<li>皿を5%CO2 および37°Cのインキュベーターに入れる。 10分ごとに、ペトリ皿をインキュベーターから取り出し、1 mLピペットで上下にピペッティングして組織を洗い流します。</li>
	<li>消化培地中で45分間インキュベートした後、ディッシュを5x〜6.3xの倍率範囲の実体顕微鏡下に置き、マイクロキャピラリーピペットを使用して卵胞を回収します。目的の卵胞を選択し、マウスピペットで吸い上げて分離します。 注意: パイプへの材料の損失や汚染を避けるために、口のピペッティングは慎重に実行する必要があります。</li>
	<li>卵胞が皮質の一部に詰まったままの場合は、シリンジの先端で皮質をはがして間質から卵胞を放出することにより、2つの27Gシリンジで機械的に分離します。 注意: 卵胞の損傷を防ぐため、注射器で卵胞に触れないでください。</li>
	<li>マイクロキャピラリーを使用して、500 μLの油培養液で覆われた15 μLの校正済み培養培地(1滴あたり1〜10個の卵胞)の滴を含む4ウェルプレートに卵胞を移します。このステップは、収集プロセス中に卵胞の生存率を維持します。手順の最後に、卵胞を5秒間5秒間2回すすぎ、500 μLの油培養液(氷上)で覆われた15 μLのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)を2滴にします。</li>
	<li>空のチューブにマウスピペット(最大10μL)を使用して、最小限のPBSで20個の卵胞を収集し、チューブを氷上に置きます。 注:RNAの安定性を得るには、氷上でステップ2.8とステップ2.9を実行することが重要です。標準的なRT-qPCR(SYBRグリーン)に十分なRNAを得るには、約20個の卵胞(<75 μm)が必要です。</li>
	<li>消化培地中で最大90分間インキュベートした後、10%ウシ胎児血清(FBS)を添加した培養培地からなる過剰の冷(4°C)ブロッキング溶液(7.5 mL)をペトリ皿に加えて酵素反応を停止します。 注:ブロッキング溶液は、実験者がプレートに付着している卵胞または損傷した卵胞(非対称形状またはより暗い色の卵胞)を観察したらすぐに追加できます。卵胞の損傷を避けるために、最大2.5時間以内に卵胞の分離を行い、分離直後にRNA抽出を行うことをお勧めします。</li>
</ol>3. RNA抽出
注:RNA抽出は、RNA抽出キットに付属の手順に従って、溶出量を調整して実行します。
<ol><li>RNA抽出キットに付属の溶解液100 μLをケミカルフード下の卵胞入りチューブに加え、高速(2,500 rpm/min)で渦巻させて卵胞の構造を破壊し、単離した卵胞を懸濁させます。50 μLのエタノール(100%)をチューブに加え、高速で短時間ボルテックスします。 注:溶解バッファーには2-メルカプトエタノールとチオシアン酸が含まれているため、このステップはケミカルフードの下で注意して実行する必要があります。</li>
	<li>チューブの全容量(約160 μL)をカラムと収集チューブで構成されるマイクロフィルターカートリッジアセンブリに移し、4°Cで16,363 x g で10秒間遠心分離します。 キットに付属の洗浄液180 μLでカラムを洗浄し、4°Cで16,363 x g でチューブを10秒間遠心分離します。</li>
	<li>キットに付属の洗浄液2/3 180 μLをカラムに加え、4°Cで16,363 x g で10秒間遠心分離します。 この手順を 2 回実行します。最後にもう一度チューブを遠心分離してフィルターを乾燥させ、新しい収集チューブをカートリッジの下に置きます。</li>
	<li>核酸の溶出は、次の 2 つのステップで実行します。<ol><li>まず、8 μLの温かい溶出溶液(75 °C)をフィルターに加え、RTで1分間待ち、4°Cで16,363 x g で30秒間遠心分離します。</li>
		<li>7 μLの溶出溶液でこの手順を繰り返します。 注:溶出した核酸を含むチューブは氷上に保管する必要があります。DNA汚染を避けるために、DNA分解の補足ステップであるステップ3.5を強くお勧めします。</li>
	</ol></li>
	<li>チューブを2 IU DNaseおよび1x DNaseバッファーで37°Cで20分間インキュベートします。 1/10 DNase不活化試薬でRTで2分間酵素活性をブロックします。</li>
	<li>チューブを4°Cで16,363 x g で1.5分間遠心分離します。 最後に、RNAを含む懸濁液を収集し、新しいチューブに移します。</li>
	<li>分光光度計(NanoDrop 2000ソフトウェア>核酸>RNA)を使用して、サンプル中に存在するRNAの量を評価します。1 μLの溶出溶液をブランクとして使用し、1 μLの溶液で単離された卵胞から抽出したRNA量を測定します。</li>
	<li>RNA純度(約2.0)については、260/280の比率を確認してください。サンプルを-80°Cで保存するか、直接レトロ転写してRT-qPCRを実行します。 注:RNAの完全性を評価するために、サンプルは-80°Cでの凍結の前後に高分解能自動電気泳動システムで処理できます。 この研究では、逆転写に続いて、RT-qPCRを次のサイクルで実行しました。 50°Cで20秒、95°Cで10分間ステージを保持 95°Cで15秒、60°Cで1分間の40回のPCRサイクル 95°Cで15秒、60°Cで1分、95°Cで30秒、60°Cで15秒のメルトカーブステージ</li>
</ol>

<ol><li>Gougeon, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+ovarian+follicular+development%3A+From+activation+of+resting+follicles+to+preovulatory+maturation%5BTitle%5D)+AND+%22Annales+d%27Endocrinologie%22%5BJournal%5D)">Human ovarian follicular development: From activation of resting follicles to preovulatory maturation.</a> Annales d'Endocrinologie. 71 (3), 132-143 (2010).</li>
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</ol>

著者は競合する利益を宣言しません。

卵巣組織の凍結保存は、がん患者の生殖能力を維持するための有望なアプローチです。診療所では、融解した皮質組織が寛解後に患者に移植され、卵巣機能と生殖能力の再開が可能になります19,20。臨床使用に加えて、卵胞形成を調節するメカニズムを研究するために、保存期間の終わりに研究のために残留卵巣断片を提供することもできます。さらに、この組織は、in vitro培養システムや人工卵巣など、移植が不可能な場合に移植に代わるものを開発するのに特に有用です。ただし、患者内および患者間のばらつきは、実験の実現可能性と再現性、および結果の解釈を制限します。.実際、卵胞密度は年齢とともに劇的に減少し、卵胞は断片21間で均等に分布していません。利用可能な断片の数は限られているため、ヒト組織は最先端の技術で使用する必要があります。免疫組織化学および免疫蛍光法、ならびにin situハイブリダイゼーションなどの幅広い技術を固定組織上で実施して、タンパク質および遺伝子局...

卵巣は、皮質内の卵胞および間質を含む機能的および構造的単位からなる複雑な器官である。卵胞形成は、卵胞の活性化、成長、および原始静止状態から受精し、初期の胚発生をサポートすることができる成熟卵胞への成熟までのプロセスであり、研究1で広く研究されています。この現象を引き起こすメカニズムを解明することで、女性の不妊治療を改善する可能性があります2。固定されたヒト組織の分析により、卵巣の機能単位内のタンパク質発現と遺伝子局在の評価が可能になります3,4。ただし、卵胞内の遺伝子発現レベルを正確に評価するには、卵胞を周囲の皮質から分離するための特定の技術が必要です。したがって、以前の研究では、卵巣の機能単位から直接遺伝子発現を分析できるように卵胞分離技術が開発されました5。酵素消化および/または機械的単離、ならびにレーザー捕捉マイクロダイセクションなど、組織片内の卵胞の分離を可能にするさまざまなアプローチが開発されています6、7、8、9。卵胞単離は、ヒトまたは動物の卵巣組織のいずれかで、発生のすべての段階で卵胞の遺伝子発現プロファイルを評価するために広く使用されています10、11、12。ただし、最適な分離手順は、密な皮質内の卵胞の脆弱な構造を考慮に入れるべきであり、したがって、損傷を避けるために注意して実行する必要があります7。この原稿は、Woodruffの研究室によって記述されたプロトコルから適応された、遺伝子発現分析を実行するために凍結融解卵巣皮質からヒト卵胞を分離する手順を説明しています13。
凍結ヒト組織からの卵巣卵胞単離の最初のステップは解凍手順です。このプロセスは、前述のように、凍結保存された卵巣組織の移植に使用される臨床プロトコルに基づいて実行されます14、15。このプロセスは、培地の濃度を下げて卵巣皮質をすすぐことにより、凍結保護剤を除去することを目的としています。次に、卵胞を回収するために酵素的および機械的単離の前に組織を断片化する。異なる段階の卵胞は、関心のあるものを分離するために、高倍率および高品質の光学系を備えた実体顕微鏡を使用して区別することができる。単離された各卵胞は、顕微鏡に統合された定規を使用して測定され、卵胞は、原始卵胞(30 μm)、一次卵胞(60 μm)、二次卵胞(120-200 μm)、および胞状卵胞(>200 μm)の発達段階に応じてプールできます16。卵胞の形態に従ってさらなる分類を行うことができます:原始卵胞は1層の平らな顆粒膜細胞(GC)を有し、一次卵胞は1層の直方体GCを有し、二次卵胞は少なくとも2層の直方体GCを有し、そしてGC間の空洞の存在は胞状段階を特徴付ける。目的の卵胞が選択されると、RNA抽出が行われます。RNAの量と質は、リアルタイム定量ポリメラーゼ連鎖反応(RT-qPCR)の前に評価されます(図1)。

<table><tbody><tr><td>2 mmグリッドシャーレ</td><td>コーニング</td><td>430196</td><td></td></tr><tr><td>2100 バイオアナライザー機器</td><td>Agilent</td><td>G2939BA</td><td></td></tr><tr><td>2100 エキスパートソフトウェア</td><td>Agilent</td><td>バージョン B.02.08.SI648</td><td></td></tr><tr><td>4 ウェルプレート</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D6789</td><td></td></tr><tr><td>6 ウェルプレート</td><td>カール・ロス</td><td>&nbsp;EKX5.1</td><td></td></tr><tr><td>Agilent total RNA 6000 pico kit</td><td>Agilent</td><td>5067-1513</td><td></td></tr><tr><td>アスコルビン酸</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A4403</td><td></td></tr><tr><td>マイクロキャピペット用アスピレーターチューブアセンブリ</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A5177</td><td></td></tr><tr><td>遠心分離機</td><td>Eppendorf</td><td>5424R</td><td></td></tr><tr><td>Collagenase IV</td><td>LifeTechnologies</td><td>17104-019</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>DNase</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D4527-10kU</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco</td><td>10270-106</td><td></td></tr><tr><td>GoScript 逆転写酵素</td><td>Promega</td><td>A5003</td><td></td></tr><tr><td>HSA</td><td>CAF DCF&nbsp;</td><td>LC4403-41-080</td><td></td></tr><tr><td>Leibovitz-15</td><td>LifeTechnologies</td><td>11415-049</td><td></td></tr><tr><td>L-グルタミン</td><td>Σ Aldrich</td><td>G7513</td><td></td></tr><tr><td>McCoy's 5A + 重炭酸塩 + Hepes</td><td>LifeTechnologies</td><td>12330-031</td><td></td></tr><tr><td>McIlwain tissue chopper</td><td>Stoelting</td><td>51350</td><td></td></tr><tr><td>Microcapillary RI EZ-Tips 200 & マイクロ;m</td><td>CooperSurgical</td><td>7-72-2200/1</td><td></td></tr><tr><td>マイクロキャピラリーRI EZ-Tips 75 &m</td><td>CooperSurgical</td><td>7-72-2075/1</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 2000/2000c オペレーティングソフトウェア</td><td>ThermoFisher</td><td>バージョン 1.6</td><td></td></tr><tr><td>NanoDrop 分光光度計</td><td>ThermoFisher</td><td>2000/2000c</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン G</td><td>シグマ Aldrich</td><td>P3032</td><td></td></tr><tr><td>PowerTrack SYBR グリーンマスターミックス</td><td>ThermoFisher</td><td>A46109</td><td></td></tr><tr><td>プライマー: GDF9</td><td></td><td></td><td>F: CCAGGTAACAGGAATCCTTC R: GGCTCCTTTATCATTAGATTG</td></tr><tr><td>Primers: HPRT</td><td></td><td></td><td>F: CCTGGCGTCGTCGTGATTAGTGAT R: GAGCACACAGAGGGCTACAA</td></tr><tr><td>Primers: Kit Ligand</td><td></td><td></td><td>F: TGTTACTTTCGTACATTGGCTGG R: AGTCCTGCTCCATGCAAGTT</td></tr><tr><td>Real-Time qPCR Quantstudio 3</td><td>ThermoFisher</td><td>A33779</td><td></td></tr><tr><td>RNA水性マイクロ全RNA単離キット</td><td>ThermoFisher</td><td>AM1931</td><td></td></tr><tr><td>Selenium</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S9133</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S8636</td><td></td></tr><tr><td>実体顕微鏡</td><td>Nikon</td><td>SMZ800</td><td></td></tr><tr><td>ストレプトマイシン硫酸塩</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S1277</td><td></td></tr><tr><td>ショ糖</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S1888</td><td></td></tr><tr><td>Thermo Scientific Forma Series II&nbsp; ウォータージャケット付き CO2&nbsp;インキュベーター</td><td>ThermoFisher</td><td>3110</td><td></td></tr><tr><td>Thomas Stadie-Riggs 組織スライサー</td><td>Thomas Scientific</td><td>6727C10</td><td></td></tr><tr><td>Transferrin</td><td>Roche&nbsp;</td><td></td><td></td>10652202001</tr></tbody></table>

ヒト卵胞の遺伝子発現解析

Gene Expression Analyses in Human Follicles

卵巣は、異なる細胞型で構成される不均一な器官です。卵胞形成中に起こる分子機構を研究するために、タンパク質の局在化および遺伝子発現を固定組織上で行うことができる。しかし、ヒトの卵胞における遺伝子発現レベルを適切に評価するためには、この複雑で繊細な構造を分離する必要があります。したがって、ウッドラフの研究室によって以前に記述された適応プロトコルは、卵胞(卵母細胞および顆粒膜細胞)を周囲の環境から分離するために開発されました。卵巣皮質組織は、最初に手動で処理され、組織スライサーと組織チョッパーの2つのツールを使用して小さな断片が得られます。次に、組織を0.2%コラゲナーゼおよび0.02%DNaseで少なくとも40分間酵素消化します。この消化ステップは、37°Cおよび5%CO2 で行われ、10分ごとに培地の機械的ピペッティングを伴う。インキュベーション後、単離された卵胞は、顕微鏡倍率下で較正されたマイクロキャピラリーピペットを使用して手動で収集されます。卵胞がまだ組織片に存在する場合、手順は手動の微小解剖で完了します。卵胞は培養液中の氷上で収集され、リン酸緩衝生理食塩水の液滴で2回すすがれます。この消化手順は、卵胞の劣化を避けるために慎重に管理する必要があります。卵胞の構造が損なわれているように見えるか、最大90分後に、10%ウシ胎児血清を含む4°Cブロッキング溶液で反応を停止します。リアルタイム定量ポリメラーゼ連鎖反応(RT-qPCR)のためのRNA抽出後に適切な量の総RNAを得るために、最低20個の単離された卵胞(75μm未満のサイズ)を収集する必要があります。抽出後、20個の卵胞からの総RNAの定量は5 ng / μLの平均値に達します。次に、全RNAをcDNAにレトロ転写し、RT-qPCRを使用して目的の遺伝子をさらに分析します。

この単離手順を使用して、実験者は間質環境から卵胞を回収し、特定の遺伝子発現分析を行うことができます。卵胞の大きさと形態に基づいて、卵胞形成のさまざまな段階を区別することが可能です。実験者は、適合したマイクロキャピラリーピペットを使用して、サイズに応じて目的の卵胞を選択できます。最大75μmのマイクロキャピラリーを使用することにより、原始卵胞と一次卵胞を二次卵胞、胞状卵胞、成熟卵胞から識別することができます。さらに、実験者は卵胞の形態に応じて卵胞の段階を確認することができます。卵胞の活性化を研究する場合、静止卵胞と一次卵胞が選択され、約5 ng / μLのRNA濃度に達するには約20個の卵胞が必要です。
同じ患者からの2つの均質化された卵巣断片(4 mm x 2 mm x 1 mm)を処理し、このプロトコルを使用して卵胞を分離しました(図2)。1.5時間の単離手順の後、RNA量を比較し、卵胞選択の関連性を強調するために、発達段階に従って2つの卵胞集団を回収しました:&lt;75μmの20個の卵胞(チューブ1)と&lt;200...

ここでは、凍結融解皮質組織からヒト卵巣卵胞を単離して遺伝子発現解析を行う方法を概説するプロトコルについて説明します。

The ovary is a heterogeneous organ composed of different cell types. To study the molecular mechanisms occurring during folliculogenesis, the localization ...

このプロトコルは、これらの生殖細胞の遺伝子発現分析を評価するために、周囲の間質細胞から卵巣卵胞を分離する効率的な方法を説明しています。この技術は、制御された酵素的および機械的単離を使用して、卵胞の完全性を維持しながら卵胞の回収を可能にします。このプロトコルに従って、研究者はこれらの細胞からの特定の遺伝子発現を評価することができます。この手法は、卵巣機能に影響を与える疾患に関連する、または毒性物質への曝露後の卵胞における遺伝子発現の欠損をさらに理解するために使用できます。最初のウェルに5ミリリットルの凍結保護剤溶液を加え、次の4つのウェルに5ミリリットルのLeibovitz 15培地を添加して、次の4つのウェルに凍結保護剤の濃度を下げて、6ウェルプレートの準備を開始します。安全規則に従って、卵巣皮質断片を含むバイアルを液体窒素から取り除きます。室温またはRTで30秒後、バイアルを二重蒸留水に2分間浸します。垂直フード内で、卵巣皮質断片バイアルを静かに攪拌して開き、内容物を氷上に置いた6ウェルプレートの最初のウェルに移します。次いで、第1のウェルにおける卵巣皮質断片を、5ミリリットルのLeibovitz 15培地中の減少濃度の凍結保護剤を含む6ウェルプレートの各ウェルに連続して移す。各培地中の組織を5分間穏やかに攪拌します。卵胞を単離するには、解凍した卵巣組織を、10ミリリットルの解剖培地、1ミリリットルあたり30マイクログラムのペニシリンG、および1ミリリットルあたり50マイクログラムのストレプトマイシンで満たされた2ミリメートルのグリッド付きペトリ皿に移します。必要に応じて、メスで組織サイズを調整します。組織スライサーの3つの部分を積み上げ、2つのブロックの間に卵巣片を配置します。ブレードを使用して断片を半分に切断し、ブロックをスライドさせて、厚さ0.5ミリメートルの2つの断片を得ます。ティッシュチョッパーを使用して組織を切断し、小さな断片を取得します。必要に応じて、組織が粉砕されるまでメスで残りの部分を手動で切断します。組織が粉砕されたら、断片化した組織を7ミリリットルの消化媒体で満たされたグリッド状のペトリ皿に移してから、5%二酸化炭素と摂氏37度のインキュベーターに皿を置きます。10分ごとにインキュベーターからペトリ皿を取り出します。消化媒体を1ミリリットルのピペットで上下にピペッティングして組織を洗い流します。消化培地中で45分間インキュベートした後、ディッシュを5〜6.3倍の倍率範囲の実体顕微鏡下に置き、マイクロキャピラリーピペットを使用して卵胞を回収します。目的の卵胞を選択し、マウスピペットで吸い上げて分離します。卵胞が皮質の一部に詰まったままの場合は、注射器の先端で皮質をはぎ取り、間質から卵胞を解放することにより、2つの27ゲージ注射器でそれらを機械的に分離します。マイクロキャピラリーを使用して、単離した卵胞を、500マイクロリットルの油培養液で覆われた15マイクロリットルの較正済み培養培地を含む4ウェルプレートに移します。1〜10個の卵胞を移した後、500マイクロリットルの油培養液で覆った15マイクロリットルのPBSを2滴ずつ5秒間2回すすぎます。マウスピペットを使用して、空のチューブに最小限のPBSで20個の卵胞を集め、チューブを氷の上に置きます。消化培地中で90分間インキュベートした後、コールドブロッキング溶液を加えて酵素反応を停止します。ケミカルフードの下で、RNA抽出キットに付属の100マイクロリットルの溶解溶液に単離された卵胞を懸濁します。単離された卵胞を毎分2500 RPMでボルテックスして構造を破壊し、50マイクロリットルの100%エタノールをチューブに加えます。そして、チューブを高速で短時間ボルテックスします。ボルテックス後、チューブの全体積をカラムと収集チューブを含むマイクロフィルターカートリッジアセンブリに移します。そして、アセンブリを摂氏4度で16、363gで10秒間遠心分離する。チューブを10秒間遠心分離する前に、キットに付属の180マイクロリットルの洗浄液1でカラムを洗浄します。180マイクロリットルの洗浄液2、3をカラムに2回洗浄した後、最後にもう一度チューブを遠心分離してフィルターを乾燥させ、新しい収集チューブをカートリッジの下に置きます。核酸の溶出を実行するには、まず8マイクロリットルの摂氏75度溶出溶液をフィルターアセンブリに追加します。1分後、アセンブリを30秒間遠心分離します。7マイクロリットルの溶出溶液でこの手順を繰り返します。完了したら、2つの国際ユニットDNaseおよびDNaseバッファーをチューブに加え、チューブを摂氏37度で20分間インキュベートします。10 x 10 DNase不活化試薬で室温で2分間酵素活性をブロックします。次に、チューブを摂氏4度で16, 363gで1.5分間遠心分離し、RNAを含む懸濁液を新しいチューブに移します。分光光度計を使用して、サンプル中のRNAの量を評価します。ブランクとして1マイクロリットルの溶出溶液を使用し、単離された卵胞から抽出したRNAの1マイクロリットルの溶液を使用します。RNA純度について、260/280の比率が約2.0であるかどうかを確認します。また、サンプルを摂氏マイナス80度で保存するか、直接レトロ転写してRT-qPCRを実行します。 このプロトコルを使用して、同じ患者からの4x2x1ミリメートルの2つの均質化された卵巣断片を処理して、卵胞を分離しました。RNA定量により、75マイクロメートル未満の卵胞から全RNA1マイクロリットルあたり4.8ナノグラムが純度比1.89で抽出されたことが明らかになりました。200マイクロメートル未満の卵胞から、全RNAのマイクロリットルあたり10.5ナノグラムを1.74の純度比で抽出した。RNAインテグリティナンバー(RIN)の値は、チューブ1と2でそれぞれ7.1と7.9であり、サンプルからのRNAの品質を検証しました。リアルタイムPCRシステムで標準サイクルを実行した後、得られたサイクル閾値(CT)は、HPRTで30.87および29.56、キットリガンドで33.5および31.77、GDF9で30.71および30.57でした。組織の酵素消化は重要なポイントです。実験者は、必要に応じて卵胞を停止することにより、反応中の卵胞の完全性を継続的に評価および確認する必要があります。遺伝子発現解析に加えて、単離された卵胞は、卵胞のin vitro培養や人工卵巣など、がん患者の生殖能力を維持するための実験システムを開発するために使用されます。分離技術には、多数の無傷の卵胞を回収するための学習曲線が必要でした。研究者は、消化前に組織が十分に粉砕されていることを確認することをお勧めします。

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Research

JoVE Journal

Developmental Biology

発生生物学

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体 外 受精を受けている個人からのヒト卵胞液、卵胞体細胞、および未熟卵母細胞の収集

我々は、色の沈殿物を対照することによって三つの異なるmRNAの分布パターンの同時および特定の検出を可能にする、完全なショウジョウバエの胚におけるマルチターゲット発色性ホールマウントin situハイブリダイゼーション （MC-WISH）の手順を説明します。...

マルチターゲット発色ホールマウント<em&gt;その場で</em&gt;ハイブリダイゼーションにおける遺伝子発現のドメインを比較します<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;胚

学ぶ凍結融解後の卵巣組織からヒト卵胞を酵素学的・機械的分離法で単離し、遺伝子発現解析を行う手法。卵胞の構造を保持しながら生殖機能や疾患関連遺伝子の発動を評価できる。

ヒト卵胞の遺伝子発現解析

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