Name: ゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞毒性アッセイ (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-01-06T14:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 22 s
Description: 学ぶゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞毒性アッセイの手法。ZEM2SおよびZFL細胞を96ウェルプレートで培養し、複数の生存率指標を組み合わせて化学物質の急性毒性を評価する。動物実験を代替する生態毒性研究に有用です。

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この作品の共著者であり、化粧品の分野で優れた研究者であり、ブラジルでの化粧品研究の促進に専念しているマルシオ・ロレンチーニ博士を記念して。著者らは、生理学部(UFPR)のマルチユーザーラボラトリーの機器の入手可能性と、高等教育要員の改善のための調整(CAPES、ブラジル)(財務コード001)およびGrupo Boticarioの財政的支援に感謝しています。

注:このプロトコルで使用される材料のリストについては材料表を、このプロトコルで使用される溶液と培地の構成については表1を参照してください。
1. ZFLおよびZEM2Sセルの準備
<ol><li>ZFLまたはZEM2S細胞のT75フラスコを80%コンフルエントで開始し、CO2を含まない28°Cのそれぞれの完全培地中で培養した。</li>
	<li>フラスコから培養液を取り出し、10 mLの1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)(0.01 M)を加えて細胞を洗浄します。3 mL の 1x トリプシン (0.05% v/v; 0.5 mM トリプシン-EDTA) を培養フラスコに加えます。28°Cで3分間インキュベートします。</li>
	<li>フラスコを軽くたたいて細胞を放出し、3 mLの完全培養培地をフラスコに加えてトリプシン消化を停止します。</li>
	<li>細胞懸濁液を15 mLのコニカル遠沈管に移し、100 × g で5分間遠心分離します。</li>
	<li>遠心分離後、上清を注意深く除去し、ZFLまたはZEM2S細胞用の完全培地1 mLを加え、マイクロピペットを使用してペレットを再懸濁します。</li>
</ol>2.トリパンブルー色素排除による細胞カウント
<ol><li>10 μLの細胞懸濁液と10 μLのトリパンブルー色素をマイクロチューブに加え、細胞をカウントし、生存率を評価します。ピペットを使用して細胞懸濁液と染料を混合します。</li>
	<li>次に、この混合物(細胞懸濁液+トリパンブルー)10 μLをノイバウアーチャンバーに移し、チャンバーの角に配置された4つの大きな正方形(象限Q)の細胞をカウントし、生存可能な細胞をトリパンブルーを取り込まないものと見なします。式 (1) を使用して生細胞数を決定します。 <img alt="セル数式:セル番号=(ΣQ / 4)×10 ^ 4;定量化のための数式" src="/files/ftp_upload/64860/64860eq01.jpg" style="margin: auto;" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Equation 1"> (1)</li>
	<li>式(1)を用いて求めた細胞数に2(トリパンブルーの使用による希釈倍率)を乗じて細胞懸濁液中の最終細胞数を算出する。 注:あるいは、自動細胞計数システム(例えば、 細胞計数および生存能力機能を備えた細胞腫)を使用することができる。</li>
</ol>3. 96ウェルプレートでのセルプレーティング
<ol><li>細胞毒性アッセイを実行するために必要な細胞数を得るために必要な細胞懸濁液量を計算する。各細胞株の生細胞数を以下に示す:<ol><li>ウェルあたり60,000個の生存可能な ZEM2S細胞 をプレート化します。したがって、プレート全体に対して、20 mLの完全培地(200 μL/ウェル、96ウェルプレート)に600万個の細胞を使用します。</li>
		<li>ウェルあたり40,000個の生存可能な ZFL細胞 をプレートします。したがって、プレート全体に対して、20 mLの完全培地(200 μL/ウェル、96ウェルプレート)に400万個の細胞を使用します。</li>
	</ol></li>
	<li>その後、細胞懸濁液の各容量を試薬リザーバー(滅菌済み)に移し、ZFLまたはZEM2S用の完全培養培地を20mLまで充填します。マルチチャンネルピペットを使用して、溶液を穏やかに上下に混合します。 注意: 泡や泡を形成しないように注意してください。</li>
	<li>マルチチャンネルマイクロピペットを使用して、透明ポリスチレン96ウェルプレートの各ウェルに200 μLの細胞懸濁液を追加します。プレートを28°Cで24時間インキュベートします。 注:プレートには、ブランクコントロール用のセルのないウェルが少なくとも3つ必要であり、これらのウェルには完全な培地のみを追加する必要があります。エッジ効果(エッジウェルにおけるより高い蒸発によって引き起こされる)は、96ウェルプレートアッセイにおいて一般的に起こり、プレート28のエッジウェルにおける細胞の生存率に影響を及ぼし得る。この効果は、96ウェルプレートのブランドおよび設計に応じて高くまたは低くなり得る28。エッジウェルではZFLおよびZEM2Sの細胞増殖/生存率の乱れは見られませんでしたが、この影響を防ぐためにプレートをパラフィルムまたは接着剤シーリングフォイルで密封するか、60個のウェル内でのみ細胞を培養し、エッジウェルにPBSを充填することをお勧めします。</li>
</ol>4.テスト化学物質への細胞の暴露
<ol><li>マルチチャンネルマイクロピペットを使用して、使用済みの培地をウェルから慎重に廃棄します。</li>
	<li>細胞をさまざまな濃度の試験化学物質にさらします。ウシ胎児血清(FBS)を含まないZFLまたはZEM2Sの培養培地(暴露培地)中の試験化学物質濃度の溶液を調製する。次に、これらの溶液を1ウェルあたり100 μLのテクニカルトリプリケート(つまり、3ウェル/テスト化学物質濃度)で追加します。</li>
	<li>コントロールの場合は、テクニカルトリプリケート(3つのウェル/コントロールグループ)の試験化学物質と同じプレートにコントロールグループを配置します。したがって、ブランクコントロール(B)については、無細胞ウェルに100μLの暴露培地を加え、ネガティブコントロール(NC)については、100μLの暴露培地を細胞を含むウェルに加え、ポジティブコントロール(PC)については、暴露培地で調製した1%Triton X-100の溶液に細胞をさらす。場合によっては、明らかに非細胞毒性濃度を最終溶媒濃度として考慮して、溶媒コントロール(SC)をプレートに含める必要があります。 注意: 溶媒として0.5%DMSOを使用することをお勧めします。DMSOは、陰性対照に関連する細胞毒性閾値10%を超えることなく、これらの細胞株において溶媒として1%まで使用することができる。</li>
	<li>プレートを28°Cで24時間インキュベートします。培地の蒸発を防ぐために、パラフィルムまたは接着剤シーリングホイルでプレートをシールします。 注:特定の化学物質は、指示色素の吸光度または蛍光を妨げる可能性のある固有のバックグラウンド吸光度または蛍光を有する可能性がある(例えば、色を有する化合物は吸光度、血清アルブミン29、および還元酵素を妨害する化合物30,31に影響を与える可能性がある)。この場合、プレートは、細胞のないウェルに試験化学溶液を添加することによる追加の対照を含まなければならない。これは、化学自己吸光/自家蛍光と色素の干渉の可能性を検証するためです。干渉が検出された場合、細胞毒性の正しい予測を得るためにそれを除外できるかどうかを評価する必要があります。</li>
</ol>5. 細胞毒性アッセイ
メモ: 表 1 に従ってすべての溶液を準備します。以下に説明するすべてのステップ(図1)は、無菌条件下で実行されます。ピペットを使用して暴露媒体を廃棄することは、化学処理後に細胞がウェルから容易に剥離する可能性があるため、推奨されません。
<ol><li>ABおよびCFDA-AMアッセイ<ol><li>24時間の試験化学物質暴露後、内容物を収集トレイに注ぎ、暴露媒体を慎重に廃棄します。</li>
		<li>プレートを200 μLのPBSで洗浄します。細胞が失われないように、PBSを収集トレイに注いで慎重に取り外します。</li>
		<li>AB/CFDA-AM溶液のウェルあたり100 μLを追加します。プレートを28°Cの暗所で30分間インキュベートします。</li>
		<li>蛍光プレートリーダーで、ABの場合は530 nm(励起)と595 nm(発光)、CFDA-AMの場合は493 nm(励起)と541 nm(発光)で蛍光を測定します。</li>
	</ol></li>
	<li>NRアッセイ 注:NRアッセイの手順は、ABおよびCFDA-AMアッセイの直後に実行されます(図1)。<ol><li>NR作業溶液(40 μg/mL)を600 × g で10分間遠心分離します。 注意: チューブ内のNRの沈殿はプレートに移してはなりません。従って、NR作動液を遠心分離した後、NR沈殿物を吸引することなくピペットを用いて上清を回収する。上清を試薬リザーバーに移します。</li>
		<li>内容物を収集トレイに注ぎ、AB / CFDA-AMソリューションを慎重に取り外します。</li>
		<li>マルチチャンネルマイクロピペットを使用して、NR作業溶液のウェルあたり100 μLを追加します。プレートを28°Cで3時間インキュベートします。 注:3時間のインキュベーション後、顕微鏡を使用してプレートにNR沈殿が発生したかどうかを観察します。NR沈殿物は、細胞生存率の定量化を妨げる可能性があり、したがって、それらは存在すべきではない。</li>
		<li>内容物を収集トレイに注ぎ、NR溶液を慎重に取り出します。ウェルあたり150 μLのPBSを加えてウェルを洗浄します。</li>
		<li>NR抽出溶液のウェルあたり150 μLを加え、プレートシェーカーでプレートを10分間インキュベートして穏やかに振とうします。プレートリーダーで540 nmの吸光度を測定します。 注意: プレート内のバックグラウンド指紋吸光度を除外するために、690nmでの2回目の読み出しを実行する必要があります。</li>
	</ol></li>
	<li>MTTアッセイ 注:MTTアッセイは、上記のアッセイとは別に(新しいプレートで)実行する必要があります(図2)。<ol><li>内容物を収集トレイに注ぎ、露光メディアを慎重に取り外します。</li>
		<li>マルチチャンネルマイクロピペットを使用して、ウェルあたり100 μLのMTT作業溶液を追加します。プレートを28°Cで4時間インキュベートします。</li>
		<li>MTTソリューションを廃棄するには、内容物を収集トレイに注ぎます。</li>
		<li>DMSOを1ウェルあたり100 μL加えてホルマザン結晶を抽出し、プレートシェーカー上でプレートを10分間インキュベートします。プレートリーダーを使用して570 nmの吸光度を測定します。 注意: プレート内のバックグラウンド指紋吸光度を除外するために、690nmでの2回目の読み出しを実行する必要があります。試験化学物質がMTTに干渉する可能性があることに留意することは重要であり、これは生成されたデータ32の品質を保証するために評価されなければならない。このためには、試験濃度とMTT(0.5 mg / mL)を含む無細胞ウェルを曝露し、続いてインキュベーションして、吸光度を増加させ、誤った生存率の結果につながる可能性のあるウェルの色の変化を観察する必要があります。このテストでは、MTTと相互作用する化学物質を避ける必要があります。</li>
	</ol></li>
</ol>6. 細胞生存率/細胞毒性の計算
注:取得した生の吸光度または蛍光は、ネガティブコントロール(曝露媒体で直接調製された試験化学物質の場合)または溶媒コントロール(DMSOなどの溶媒を使用して調製された試験化学物質の場合)に関連するパーセンテージとして細胞生存率を計算するために使用されます。細胞生存率を決定する前に、生データをブランクコントロールで正規化する必要があります。
<ol><li>各試験化学物質濃度および対照群(3ウェル/処理)の平均吸光度または蛍光を計算します。</li>
	<li>対照(陰性または溶媒)に対する細胞生存率を決定するには、式(2)を使用します。 <img alt="生化学分析における細胞生存率の計算式で、吸光度に基づくパーセンテージを示します。" src="/files/ftp_upload/64860/64860eq02.jpg" style="margin: auto;" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Equation 2"> (2) 注:吸光度(abs)または蛍光(fluo)単位は、濃度ごとに3つのウェルで測定された吸光度または蛍光の平均を表します。空白はセルのないウェルを表します。</li>
</ol>

著者は利益相反を宣言しません。

細胞毒性アッセイはin vitro毒性評価に広く使用されており、このプロトコル記事では、ゼブラフィッシュ細胞株で実施するように改変された4つの一般的に使用される細胞毒性アッセイ(すなわち、96ウェルプレートの細胞密度、MTTアッセイでのインキュベーション時間、化学物質暴露条件下でのFBS枯渇、およびSCの最大許容濃度)を紹介します。これらのアッセイは、異なる細胞生存率エンドポイント(代謝機能、リソソーム膜完全性、および細胞膜完全性)による細胞毒性を定量化するため、それらの組み合わせはゼブラフィッシュ細胞株における化学的細胞毒性の正確な評価を提供します。このプロトコルはまた、培養系を適切に緩衝し、pHを7.4(生理学的pH)に維持することができる培養培地組成のために、CO2フリー条件でのZFLおよびZEM2S細胞株の培養を推奨します。両方の細胞株についてこのプロトコルで提案されている培地組成およびCO2フリー環境は、文献に広く報告されている。ZFL細胞株は通常、重炭酸ナトリウムの添加の有無にかかわらず、CO2 37、38...

化学物質は、人の健康と環境に対する安全性についてテストする必要があります。分子および細胞バイオマーカーは、in vivoの有害転帰(内分泌かく乱、免疫学的反応、急性毒性、光毒性など)に先行する可能性があるため、規制当局および/または法律(REACH、OECD、US EPAなど)1,2による生物への影響を予測するための安全性評価においてますます考慮されています3,4,5,6,7。.これに関連して、細胞毒性は、魚類の急性毒性を予測するための測定値として採用されている5,8;しかし、化学物質のサブ細胞毒性濃度を定義して魚に対する最も多様な影響(内分泌かく乱効果など)を研究するなど、生態毒性研究には他の多くの用途があります。
細胞培養系(in vitro 系)では、化学物質の細胞毒性は、エンドポイントの種類が異なる方法で決定できます。例えば、細胞毒性法は、細胞死プロセス中に観察される特定の形態に関連するエンドポイントに基づくことができ、別の方法は、細胞死、生存率および機能性、形態、エネルギー代謝、ならびに細胞の付着および増殖の測定によって細胞毒性を決定することができる。化学物質はさまざまなメカニズムで細胞生存率に影響を与える可能性があるため、化学的影響を予測するには、さまざまな細胞生存率エンドポイントをカバーする細胞毒性評価が必要です9。
MTTおよびAlamar Blue(AB)は、細胞代謝活性に基づいて細胞生存率への影響を決定するアッセイです。MTTアッセイは、ミトコンドリア酵素コハク酸デヒドロゲナーゼ10の活性を評価する。黄色がかった3-[4,5-ジメチルチアゾール-2イル]-2,5-ジフェニルテトラゾリウムブロミド(MTT)のホルマザンブルーへの還元は、生細胞でのみ起こり、その光学密度は生細胞の数に正比例します10。ABアッセイは高感度酸化還元指標であり、生細胞によってレサズリンをレゾルフィンに還元すると蛍光を発し、色が変化するミトコンドリア酵素によって媒介されます11。しかしながら、細胞質およびミクロソーム酵素もまた、ABおよびMTT12の減少に寄与する。これらの酵素には、アルコールおよびアルデヒドオキシドレダクターゼ、NAD(P)H:キノンオキシドレダクターゼ、フラビンレダクターゼ、NADHデヒドロゲナーゼ、およびシトクロム11などのいくつかのレダクターゼが含まれる場合があります。
ニュートラルレッド(NR)アッセイは、生存細胞のリソソームへのこの色素の取り込みに基づく細胞生存率アッセイです13。NRの取り込みは、pH勾配を維持する細胞の能力に依存します。リソソーム内のプロトン勾配は、細胞質よりも低いpHを維持します。通常の生理的pHでは、NRはほぼゼロの正味電荷を示し、細胞膜を透過することができます。したがって、色素は荷電し、リソソームの内部に保持されます。その結果、保持されるNRの量が多いほど、生細胞14の数が多くなる。細胞表面またはリソソーム膜を損傷する化学物質は、この色素の取り込みを損ないます。
CFDA-AMアッセイは、5-カルボキシフルオレセインジアセテートアセトキシメチルエステル(CFDA-AM)15の保持に基づく蛍光細胞生存率アッセイです。エステラーゼ基質である5-CFDA-AMは、極性があり、生細胞の膜によって非透過性の蛍光物質であるカルボキシフルオレセインに変換されます15;したがって、それは無傷の細胞膜の内側に保持され、生存細胞を示す。
最近、3つの細胞毒性アッセイ(CFDA-AM、NR、およびABアッセイ)が、検証済みのISO(国際標準化機構)ガイドライン(ISO 21115:2019)16およびOECD(経済協力開発機構)試験方法(OECD TG 249)で組み合わされ、24ウェルプレートでRTgill-W1細胞株(ニジマス[Oncorhynchus mykiss]ギルからの永久細胞株)を使用して魚の急性毒性を評価しました17.魚類の急性毒性を予測するための既存の細胞ベースの方法がありますが、他の魚種と同様の方法を開発し、その処理量を増やすことに努力が払われてきました。いくつかの例には、特異的毒性経路18、19のためのレポーター遺伝子をトランスフェクトしたZFL細胞株の開発、RTgill−W1細胞株20における光毒性試験、およびいくつかの細胞毒性アッセイ21によって毒性を評価するためのZFLおよびZF4細胞株(1日齢の胚に由来するゼブラフィッシュ線維芽細胞)の使用が含まれる。
ダニオレリオ(ゼブラフィッシュ)は、水生毒性試験で使用される主要な魚種の1つです。したがって、魚類毒性試験のためのゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞ベースの方法は非常に有用であり得る。ZFL細胞株は、肝実質細胞の主な特徴を示し、生体異物を代謝できるゼブラフィッシュ上皮肝細胞株です7、22、23、24、25。一方、ZEM2S細胞株は、胚芽細胞期に由来する胚性ゼブラフィッシュ線維芽細胞株であり、魚類の発生効果を調べるために使用することができる26,27。したがって、このプロトコルは、96ウェルプレート中のZFLおよびZEM2S細胞株を用いて実施される修飾を伴う4つの細胞毒性アッセイ(MTT、AB、NR、およびCFDA-AMアッセイ)を記載しています。

<table><tbody><tr><td>5-CFDA, AM (5-カルボキシフルオレセインジアセテート, アセトキシメチルエステル)</td><td>Invitrogen</td><td>C1345</td><td></td></tr><tr><td>細胞培養プレート, 96ウェルプレート</td><td>Sarstedt</td><td>83.3924</td><td>表面: 標準, フラットベース</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco</td><td>12800-017</td><td>粉末, 高グルコース, ピルビン酸</td></tr><tr><td>FBS - ウシ胎児血清, 認定, USDA承認地域</td><td>Gibco</td><td>12657-029</td><td></td></tr><tr><td>ハムのF-12栄養素ミックス、粉末</td><td>Gibco</td><td>21700026</td><td>粉末</td></tr><tr><td>HEPES(1 M)</td><td>Gibco</td><td>15630080</td><td></td></tr><tr><td>LeibovitzのL-15ミディアム</td><td>Gibco</td><td>41300021</td><td>パウダー</td></tr><tr><td>ニュートラルレッド&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N4638</td><td>粉末、BioReagent、細胞培養に適した</td></tr><tr><td>オービタルシェーカー&nbsp;</td><td>Warmnest</td><td>KLD-350-BI</td><td>回転直径 22 mm</td></tr><tr><td>ダルベッコス PBS (10X) とカルシウムおよびマグネシウム</td><td>Invitrogen</td><td>14080055</td><td></td></tr><tr><td>ペニシリン-ストレプトマイシン (10,000 U/mL)</td><td>Gibco</td><td>15140122</td><td></td></tr><tr><td>レサズリンナトリウム塩&nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R7017</td><td>粉末、BioReagent、細胞培養に適しています</td></tr><tr><td>RPMI 1640 中</td><td>Gibco</td><td>31800-014</td><td>粉末</td></tr><tr><td>重炭酸ナトリウム</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S5761</td><td>粉末、&nbsp; 分子生物学用バイオ試薬</td></tr><tr><td>チアゾリルブルー 臭化テトラゾリウム&nbsp; 98%</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M2128</td><td></td></tr><tr><td>トリパンブルーステイン (0.4%)</td> <td>Gibco</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.5%), no phenol red</td><td>Gibco</td><td>15400054</td><td></td></tr><tr><td>ZEM2S cell line</td><td>ATCC</td><td>CRL-2147</td><td>この細胞株は、Professor Dr. Michael J. Carvan (University of Wisconsin, Milwaukee, USA)</td></tr><tr><td>ZFL cell line</td><td>BCRJ</td><td>256</td><td></td></tr> から寄贈されました。</tbody></table>

ゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞毒性アッセイ

Cytotoxicity Assays with Zebrafish Cell Lines

魚類細胞株は生態毒性試験でますます使用されるようになり、細胞毒性アッセイは魚類の急性毒性を予測する方法として提案されている。したがって、このプロトコルは、96ウェルプレートのゼブラフィッシュ(ダニオレリオ)胚(ZEM2S)および肝臓(ZFL)細胞株における細胞生存率を評価するために改変された細胞毒性アッセイを提示します。評価された細胞毒性エンドポイントは、ミトコンドリアの完全性(Alamar Blue [AB]およびMTTアッセイ)、エステラーゼ活性 を介した 膜の完全性(CFDA-AMアッセイ)、およびリソソーム膜の完全性(ニュートラルレッド[NR]アッセイ)です。96ウェルプレートに試験物質を曝露した後、細胞毒性アッセイが行われます。ここでは、ABおよびCFDA-AMが同時に行われ、続いて同じプレート上でNRが行われ、一方、MTTアッセイは別のプレート上で行われる。これらのアッセイの読み出しは、ABおよびCFDA-AMの蛍光、MTTおよびNRの吸光度によって取得されます。これらの魚細胞株を用いて実施される細胞毒性アッセイは、魚に対する化学物質の急性毒性を研究するために使用することができる。

図3は、AB、CFDA-AM、NR、およびMTTアッセイのプレートを示しています。ABアッセイ(図3A)では、ブランクウェルおよび生存細胞数がない、または生存細胞数が減少したウェルは青色で蛍光が低いのに対し、生細胞数が多いウェルはピンクがかっており、生存細胞によるレサズリン(AB)のレゾルフィン(ピンクがかった物質)への変換により高い蛍光値を示します。CFDA-AMアッセイでは、プレート上のウェルの色に目に見える違いはありません。ただし、CFDA-AMの保持とそれに続くカルボキシフルオレセイン(蛍光物質)への変換により、生細胞を含むウェルでは蛍光が高くなります。
NRアッセイ(図3B)では、NR色素を保持する細胞がないため、ブランクウェルは非常に低い吸光度値で透明でなければなりません。場合によっては、ブランクウェルは透明ではなく、プレート上にNR沈殿が発生していることを示しています。この場合、これは有効な...

このプロトコルは、96ウェルプレートのゼブラフィッシュ胚(ZEM2S)および肝臓(ZFL)細胞株の細胞毒性の評価に適した、一般的に使用される細胞毒性アッセイ(Alamar Blue [AB]、CFDA-AM、ニュートラルレッド、およびMTTアッセイ)を提示します。

Fish cell lines have become increasingly used in ecotoxicity studies, and cytotoxicity assays have been proposed as methods to predict fish acute ...

ゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞毒性アッセイプロトコルは、魚に対する化学物質の急性毒性に関する質問に答えたり、他の代替魚アッセイの適切な試験濃度を定義するのに役立ちます。この96ウェルプレートアッセイの主な利点は、生態毒性研究において重要な魚種であるゼブラフィッシュ細胞の細胞毒性を決定するために、異なる生存率エンドポイントを組み合わせることです。プロトコルは非常に単純です。説明されているすべての手順を正しく実行すれば、問題は発生しないはずです。このプロトコルは、胚細胞の肝細胞など、さまざまな臓器またはライフステージに由来する魚細胞株への影響を評価する動物ベースの生態毒性研究を達成するのに役立ちません。ZEM2SまたはZFL細胞のプレーティングを開始するには、アッセイに必要な細胞数を得るために必要なそれぞれの細胞懸濁液の体積を計算します。滅菌試薬リザーバーに、対応する細胞株用の完全培養培地を満たし、計算された容量の細胞懸濁液をリザーバーに移し、総容量20ミリリットルにします。マルチチャンネルピペットを使用して、泡や泡を形成せずに溶液を上下に穏やかに混合します。次に、マルチチャンネルマイクロピペットを使用して、透明ポリスチレン96ウェルプレートの各ウェルに200マイクロリットルの細胞懸濁液を添加し、ZEM2S細胞についてはウェル当たり60, 000細胞、ZFL細胞については1ウェル当たり40, 000細胞の生細胞数を得た。プレートを摂氏28度で24時間インキュベートします。いずれかのタイプの細胞を異なる濃度の試験化学物質にさらすには、ウシ胎児血清またはFBSを含まない目的の細胞株の培養培地中に所望の濃度の試験化学溶液を調製します。24時間のインキュベーション後、マルチチャンネルマイクロピペットを使用してウェルから使用済み培地を慎重に廃棄します。次に、ウェルごとに100マイクロリットルの特定のテスト薬液をテクニカルトリプリケートで追加します(これは、テスト化学物質濃度ごとに3つのウェルを意味します)。コントロールグループを、テクニカルトリプリケートのテスト化学物質と同じプレートに配置します。ブランクコントロールの場合、3つの無細胞ウェルに100マイクロリットルの暴露培地を追加します。ネガティブコントロールの場合、細胞を含む3つのウェルに100マイクロリットルの曝露培地を追加します。ポジティブコントロールの場合、細胞を含む3つのウェルを、曝露培地で調製した1%Triton X-100溶液に曝露します。培地の蒸発を防ぐためにパラフィルムまたは接着剤シーリングホイルでプレートをシールし、プレートを摂氏28度で24時間インキュベートします。試験化学物質暴露の24時間後、内容物を収集トレイに注ぎ、各ウェルを200マイクロリットルのPBSで洗浄することにより、ウェルから暴露媒体を注意深く廃棄します。次に、細胞を失うことなくPBSを除去するために、慎重に収集トレイに注ぎます。Alamar Blue または AB および CFDA-AM アッセイを実行するには、ウェルあたり 100 マイクロリットルのそれぞれの溶液を加え、プレートを摂氏 28 度の暗所で 30 分間インキュベートします。次に、蛍光プレートリーダーで、本文に記載されている適切な励起波長と発光波長で蛍光を測定します。ニュートラルレッドまたはNRアッセイを実行するには、ミリリットルあたり40マイクログラムの濃度のNR作業溶液を取り、600 Gで10分間遠心分離します。次に、内容物を収集トレイに注いで、以前に追加したABおよびCFDA-AM溶液をウェルから慎重に取り出します。マルチチャンネルマイクロピペットを使用して、ウェルあたり100マイクロリットルのNR作業溶液を加え、プレートを摂氏28度で3時間インキュベートします。インキュベーションが終了したら、NR溶液をプレートから収集トレイに注意深く注ぎ、ウェルあたり150マイクロリットルのPBSを加えてウェルを洗浄します。洗浄後、1ウェルあたり150マイクロリットルのNR抽出溶液を加え、プレートリーダーを使用して540ナノメートルの吸光度を測定する前に、プレートシェーカーで10分間静かに振ってプレートをインキュベートします。MTTアッセイを実行するには、24時間の試験化学物質暴露後、内容物を収集トレイに注ぎ、マルチチャンネルマイクロピペットを使用して暴露媒体を注意深く取り除き、暗所でウェルあたり100マイクロリットルのMTT作業溶液を追加します。プレートを摂氏28度で暗所で4時間インキュベートします。次に、内容物を収集トレイに注ぎ、100マイクロリットルのDMSOを各ウェルに加えてホルマザン結晶を抽出してMTT溶液を廃棄します。プレートリーダーを使用して517ナノメートルの吸収を測定する前に、プレートシェーカーでプレートを10分間インキュベートします。APアッセイでは、ブランク、ポジティブコントロール、および高細胞毒性濃度の試験化学物質に対応するウェルは、青色および低蛍光を示し、生存細胞の不在または減少のいずれかを示しました。対照的に、多数の生細胞を含む低細胞傷害濃度の試験化学物質および陰性対照に対応するウェルは、レサズリンをより高い蛍光を有するピンク色のレゾルフィンに変換した。NRアッセイでは、細胞毒性の高い濃度の試験化学物質とポジティブコントロールは透明または淡いピンク色で吸光度が低く、NR色素を保持している生細胞を含むウェルは濃いピンク色と高い吸光度を示しました。同様に、MTTアッセイでは、生細胞のないウェルは透明ですが、生細胞を含むウェルはMTTを紫色のホルマザンに変換します。計算された細胞生存率パーセンテージに基づいて、ZFLおよびZEM2S細胞株における異なる試験化学物質について、半分の最大阻害剤濃度またはIC50値を推定した。FBSの有無にかかわらず培養液の細胞生存率に有意差は認められず、24時間の化学物質曝露期間におけるFBSを奪われた培地の適合性を示した。MTTおよびNRアッセイは、細胞生存率に対するDMSO濃度の0.1%から1%の変化による有意な影響を示さず、これらの細胞株が最大1%の溶媒としてのDMSOの使用をサポートすることを示しています手順全体で自己剥離を避けるために、播種細胞を取り扱う際には特に注意し、色素の沈殿を避けるために中性赤色の作業溶液を慎重に調製してください。この手順は、in vitroモデルを使用して魚に対する化学的影響のいくつかの側面に対処する研究に適用でき、動物ベースの生態毒性研究の進歩に貢献します。

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Research

JoVE Journal

Environment

環境

ゼブラフィッシュ異種移植糸アッセイ:ゼブラフィッシュの腫瘍原性に対する治療薬の抗がん効果をIn vivoで評価する方法

ゼブラフィッシュ胚は、化学化合物の毒性を評価するために使用されます。それらは外部で発達し、化学物質に敏感であり、微妙な形知らずの変化の検出を可能にする。実験は少量の化合物しか必要としないが、これは胚を含むプレートに直接添加され、試験システムを効率的かつ費用対効果の高い方法にする。...

ゼブラフィッシュ胚を用いる化学化合物の毒性の迅速評価

ゼブラフィッシュ異種移植片モデルは、生体内微小環境におけるヒト癌細胞のハイスループット薬物スクリーニングおよび蛍光イメージングを可能にする。当社は、自動蛍光顕微鏡を搭載したイメージングユニットを用いて、ゼブラフィッシュにおける患者由来白血病サンプルに対する大規模な自動薬物スクリーニングのワークフローを開発しました。...

ゼブラフィッシュにおける原発性腫瘍異種移植片の薬物スクリーニング

このプロトコルは、腎毒性物質としてシスプラチンを使用して、成体ゼブラフィッシュに急性腎損傷(AKI)を誘導する手順を記述する。この技術の再現性を評価するステップと、腎組織、フローサイトメトリー、TUNELの炎症と細胞死を分析する2つの技術を詳述した。...

成体ゼブラフィッシュにおけるシスプラチンによる急性腎損傷モデル

本稿では、神経芽細胞腫のゼブラフィッシュモデル、特に自発的に転移を発症する MYCN および LMO1の過剰発現を伴うトランスジェニックゼブラフィッシュ系統における腫瘍転移をリアルタイムで発生、特徴付け、および追跡する方法を紹介する。...

神経芽細胞腫転移のゼブラフィッシュモデル

ゼブラフィッシュは最近、潜在的な放射線修飾因子を検証するためのモデルとして利用されています。本プロトコルでは、ゼブラフィッシュの胚を放射線ベースのスクリーニング実験に使用する詳細な手順と、さまざまな治療と放射線の効果を評価するためのいくつかの観察アプローチについて説明します。...

ゼブラフィッシュの幼生を潜在的な放射線増感剤またはプロテクターを評価するためのモデルとして

ここでは、2つのゼブラフィッシュ(ダニオレリオ)細胞株、ZEM2S(胚)とZFL(正常肝細胞)のスフェロイドを形成するための効果的で簡単かつ高速な3D培養プロトコルを紹介します。...

ゼブラフィッシュ胚および肝臓細胞株のスフェロイドの3D培養法

細胞増殖染色を用いて、ゼブラフィッシュT急性リンパ芽球性白血病モデルにおける静止細胞を同定しました。染色は非分裂細胞に保持され、細胞増殖中に減少するため、さらなる調査のために休眠細胞を選択できます。このプロトコルは、細胞の静止の文脈で自己複製を研究するための機能的なツールを提供します。...

細胞増殖染色を用いたゼブラフィッシュT細胞急性リンパ芽球性白血病モデルにおける静止細胞の同定 

このプロトコルは、受精後3〜7日のゼブラフィッシュの幼生における薬物スクリーニング手順と、それに続く形態学的評価を説明しています。...

初期ゼブラフィッシュ幼生における低分子スクリーニングと毒性試験

マイクロプレートベースの手順は、細胞外酵素活性の比色または蛍光分析に記載されている。これらの手順は、管理可能な時間枠内で環境サンプルの大規模な数のこのような活動の迅速なアッセイを可能にします。...

ハイスループットマイクロプレートアッセイを用いてウォーターズ、土壌、および底質中の微生物細胞外酵素活性の測定

学ぶゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞毒性アッセイの手法。ZEM2SおよびZFL細胞を96ウェルプレートで培養し、複数の生存率指標を組み合わせて化学物質の急性毒性を評価する。動物実験を代替する生態毒性研究に有用です。

ゼブラフィッシュ細胞株を用いた細胞毒性アッセイ

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