Name: マウス背根神経節凍結切片の手順 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2023-06-09T13:50:00.000+00:00
Duration: 4 min 20 s
Description: 学ぶマウス背根神経節の凍結切片法。OCT包埋とクリオスタットを用いて、高品質で平坦なDRG切片を安定的に取得する技術。免疫組織化学研究に最適な神経組織標本作製プロトコルを解説します。

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本研究では、動物実験はUCSFの動物実験委員会によって承認され、実験動物のケアと使用に関するNIHガイドに従って実施されました。ここでは、成体8-12週齢のC57BL/6雄マウスおよび雌マウス(自家繁殖)を用いた。
1. DRGサンプル調製
<ol><li>マウスに2.5%アベルチンを麻酔します(材料表を参照)。痛みを伴う刺激に反応しないことで、適切な麻酔を確保してください。前述のように、1xリン酸緩衝生理食塩水(PBS)とそれに続く4%ホルムアルデヒドで動物を経心的に灌流します14,15,16。</li>
	<li>前述のように、脊髄からDRG組織を解剖します14、15、16。</li>
	<li>解剖したDRGを4%ホルムアルデヒドに室温で3時間後固定します。</li>
	<li>DRGをPBS中の30%スクロースに4°Cで一晩入れます。</li>
	<li>基準最適切削温度(OCT)の準備<ol><li>OCTコンパウンド( 材料表を参照)を添加してアルミニウムブロックの上面を覆い、-20°Cで5〜10分間凍結します(図1A)。</li>
		<li>クライオスタット( 材料表参照)を使用して、表面がベースOCTとして平らになるまで、OCTの上部を30μmの厚さで切断します(図1B)。</li>
		<li>クライオスタットからアルミニウムブロックを取り外す前に、ベースOCTの下部(6時の位置)に印を付けて向きをマークします(図1C)。</li>
		<li>次の手順では、マークを6時の位置に保ち、同じ方向を維持すると、DRGサンプルのより多くのセクションを取得できます。 注:方向が失われ、DRGサンプルが別の角度で切断された場合、DRGサンプルを上から下に完全に切断することができず、DRGサンプルを切断しようとしたときにベースOCTに遭遇するため、一部のサンプルがベースOCTに取り残されて無駄になります(図1C)。</li>
	</ol></li>
	<li>DRGのOCT埋込みの実行<ol><li>OCTに装着する前にDRGティッシュを乾かしてください。<ol><li>DRGをブロックに添加する前に、サンプルの周りの30%スクロース/PBS溶液を必ず除去してください。</li>
			<li>DRGサンプルを乾燥ペトリ皿に置き(図2A)、乾いたピンセットで2〜3回移動させて乾燥させます(図2B)。</li>
			<li>糸くずの出ないティッシュでピンセットを乾かしてから、別のDRGサンプルを移動させます(図2C)。</li>
		</ol></li>
		<li>乾燥したDRGをベースOCTに置きます。<ol><li>乾いたピンセットを使用して、乾いたDRGをベースOCTの12時の位置に置きます(図1D)。</li>
			<li>DRGの上端とベースOCTの上端の間に少なくとも5mm離してください。</li>
			<li>DRGの背側を12時の位置に、腹側を6時の位置に置きます(図1D)。</li>
		</ol></li>
		<li>DRG組織をOCTで埋め込みます。<ol><li>さらにOCTを追加して、DRGサンプル全体を円形または楕円形に覆い、DRGを中央にします(図1E)。</li>
			<li>OCTの上端がベースOCTの上端でDRGを覆っていることを確認してください(図1F)、これにより切片をスライドガラスに移しやすくなります(図3A)。 メモ:カバーOCTがベースOCTの中央にある場合、ベースOCTの上端がスライドガラスをブロックして断面を収集します(図3B)。</li>
			<li>カバーOCTおよびDRGサンプルを-20°Cでさらに5分間凍結します(図1G)。DRGサンプルの周囲にOCTをトリミングしないでください。</li>
			<li>DRGが見えるまで、カバーOCTの上部を30μmの厚さで切り取ります。</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>2. DRGの凍結切片
<ol><li>クライオスタット切片の厚さを12 μmに変更し、DRG切片をスライド上に切断します(図1H)。</li>
	<li>-20°Cに冷却した小さな絵筆でOCTセクションの下部を持ちます。 注意: セクション全体を完全に切断するのではなく、1〜3 mmを切断しないでおくことが重要です(図1I)。</li>
	<li>室温のピンセットの端を使用して、セクションの下部(6時の位置)にそっと触れ、プラットフォームの表面にくっつくようにします(図1J)。これにより、断面がロール状に湾曲するのを防ぎ、スライド上の断面を回収しにくくします。 注意: セクションの下部がプラットフォームの表面にくっついていて、セクションの上部がカバーOCTに接続されている場合、セクションは平らな形状になり(図1K)、スライド上のセクションをはるかに簡単に収集できます。</li>
	<li>帯電したスライドガラス( 材料表を参照)を取り、スライドをセクションの上にゆっくりと置きます。切片がスライドにくっつき始めたらすぐに、スライドをゆっくりと後方に引きます(図1L)。</li>
	<li>同じプロセスに従って、セクションを重ねることなく、より多くのDRGセクションをスライドに配置します(図1M)。新しいDRG切片は、スライド上にうまく留まることができず、免疫染色プロセス中に洗い流される可能性があるため、別のDRG切片(図4)のOCTの上に配置しないでください。</li>
</ol>3. スライドガラス上のDRG切片のニッスル染色
<ol><li>切片をPBSと0.1% Triton X-10で10分間洗浄します。次に、切片をPBSで2回洗浄します。</li>
	<li>1:300 ニッスル染色剤( 材料表を参照)をスライドに塗布し、室温で 20 分間インキュベートします。</li>
	<li>PBSと0.1%Triton X-100で切片を洗浄します。次に、切片をPBSで5分間2回洗浄し、次いで室温で2時間洗浄します。</li>
	<li>4′,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール(DAPI)フルオロマウント-G( 材料表を参照)を塗布し、切片をカバーガラスで覆います。</li>
</ol>

マウス背根神経節凍結切片

<ol><li>Guan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injured+sensory+neuron-derived+CSF1+induces+microglial+proliferation+and+DAP12-dependent+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Injured sensory neuron-derived CSF1 induces microglial proliferation and DAP12-dependent pain.</a> Nature Neuroscience. 19 (1), 94-101 (2016).</li>
<li>Yu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dorsal+root+ganglion+macrophages+contribute+to+both+the+initiation+and+persistence+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Dorsal root ganglion macrophages contribute to both the initiation and persistence of neuropathic pain.</a> Nature Communications. 11 (1), 264(2020).</li>
<li>Costa, F. A. L., Moreira Neto, F. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Satellite+glial+cells+in+sensory+ganglia%3A+its+role+in+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Brazilian+Journal+of+Anesthesiology%22%5BJournal%5D)">Satellite glial cells in sensory ganglia: its role in pain.</a> Brazilian Journal of Anesthesiology. 65 (1), 73-81 (2015).</li>
<li>Noguri, T., Hatakeyama, D., Kitahashi, T., Oka, K., Ito, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Profile+of+dorsal+root+ganglion+neurons%3A+study+of+oxytocin+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Brain%22%5BJournal%5D)">Profile of dorsal root ganglion neurons: study of oxytocin expression.</a> Molecular Brain. 15 (1), 44(2022).</li>
<li>Su, P. P., Zhang, L., He, L., Zhao, N., Guan, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+neuro-immune+interactions+in+chronic+pain%3A+implications+for+clinical+practice%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Pain+Research%22%5BJournal%5D)">The role of neuro-immune interactions in chronic pain: implications for clinical practice.</a> Journal of Pain Research. 15, 2223-2248 (2022).</li>
<li>Esposito, M. F., Malayil, R., Hanes, M., Deer, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unique+characteristics+of+the+dorsal+root+ganglion+as+a+target+for+neuromodulation%5BTitle%5D)+AND+%22Pain+Medicine%22%5BJournal%5D)">Unique characteristics of the dorsal root ganglion as a target for neuromodulation.</a> Pain Medicine. 20, S23-S30 (2019).</li>
<li>Chen, X. J., Sun, Y. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Central+circuit+mechanisms+of+itch%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Communications%22%5BJournal%5D)">Central circuit mechanisms of itch.</a> Nature Communications. 11 (1), 3052(2020).</li>
<li>Guan, Z., Hellman, J., Schumacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contemporary+views+on+inflammatory+pain+mechanisms%3A+TRPing+over+innate+and+microglial+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22F1000Research%22%5BJournal%5D)">Contemporary views on inflammatory pain mechanisms: TRPing over innate and microglial pathways.</a> F1000Research. , (2016).</li>
<li>Boadas-Vaello, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuroplasticity+of+ascending+and+descending+pathways+after+somatosensory+system+injury%3A+reviewing+knowledge+to+identify+neuropathic+pain+therapeutic+targets%5BTitle%5D)+AND+%22Spinal+Cord%22%5BJournal%5D)">Neuroplasticity of ascending and descending pathways after somatosensory system injury: reviewing knowledge to identify neuropathic pain therapeutic targets.</a> Spinal Cord. 54 (5), 330-340 (2016).</li>
<li>Guha, D., Shamji, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dorsal+root+ganglion+in+the+pathogenesis+of+chronic+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosurgery%22%5BJournal%5D)">The dorsal root ganglion in the pathogenesis of chronic neuropathic pain.</a> Neurosurgery. 63, 118-126 (2016).</li>
<li>Shorrock, H. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((UBA1%2FGARS-dependent+pathways+drive+sensory-motor+connectivity+defects+in+spinal+muscular+atrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">UBA1/GARS-dependent pathways drive sensory-motor connectivity defects in spinal muscular atrophy.</a> Brain. 141 (10), 2878-2894 (2018).</li>
<li>Sleigh, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trk+receptor+signaling+and+sensory+neuron+fate+are+perturbed+in+human+neuropathy+caused+by+Gars+mutations%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences%22%5BJournal%5D)">Trk receptor signaling and sensory neuron fate are perturbed in human neuropathy caused by Gars mutations.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (16), E3324-E3333 (2017).</li>
<li>Rubio, M. A., Herrando-Grabulosa, M., Gaja-Capdevila, N., Vilches, J. J., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+somatosensory+neuron+involvement+in+the+SOD1%28G93A%29+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Scientific+Reports%22%5BJournal%5D)">Characterization of somatosensory neuron involvement in the SOD1(G93A) mouse model.</a> Scientific Reports. 12 (1), 7600(2022).</li>
<li>Sleigh, J. N., West, S. J., Schiavo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+video+protocol+for+rapid+dissection+of+mouse+dorsal+root+ganglia+from+defined+spinal+levels%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Research+Notes%22%5BJournal%5D)">A video protocol for rapid dissection of mouse dorsal root ganglia from defined spinal levels.</a> BMC Research Notes. 13 (1), 302(2020).</li>
<li>Sleigh, J. N., Weir, G. A., Schiavo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple%2C+step-by-step+dissection+protocol+for+the+rapid+isolation+of+mouse+dorsal+root+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Research+Notes%22%5BJournal%5D)">A simple, step-by-step dissection protocol for the rapid isolation of mouse dorsal root ganglia.</a> BMC Research Notes. 9, 82(2016).</li>
<li>Perner, C., Sokol, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocol+for+dissection+and+culture+of+murine+dorsal+root+ganglia+neurons+to+study+neuropeptide+release%5BTitle%5D)+AND+%22STAR+Protocols%22%5BJournal%5D)">Protocol for dissection and culture of murine dorsal root ganglia neurons to study neuropeptide release.</a> STAR Protocols. 2 (1), 100333(2021).</li>
<li>Haberberger, R. V., Barry, C., Matusica, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immortalized+dorsal+root+ganglion+neuron+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Cellular+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Immortalized dorsal root ganglion neuron cell lines.</a> Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, 184(2020).</li>
<li>Pokhilko, A., Nash, A., Cader, M. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Common+transcriptional+signatures+of+neuropathic+pain%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Common transcriptional signatures of neuropathic pain.</a> Pain. 161 (7), 1542-1554 (2020).</li>
<li>Martin, S. L., Reid, A. J., Verkhratsky, A., Magnaghi, V., Faroni, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+changes+in+dorsal+root+ganglia+following+peripheral+nerve+injury%3A+roles+in+inflammation%2C+cell+death+and+nociception%5BTitle%5D)+AND+%22Neural+Regeneration+Research%22%5BJournal%5D)">Gene expression changes in dorsal root ganglia following peripheral nerve injury: roles in inflammation, cell death and nociception.</a> Neural Regeneration Research. 14 (6), 939-947 (2019).</li>
<li>Miller, R. J., Jung, H., Bhangoo, S. K., White, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytokine+and+chemokine+regulation+of+sensory+neuron+function%5BTitle%5D)+AND+%22Handbook+of+Experimental+Pharmacology%22%5BJournal%5D)">Cytokine and chemokine regulation of sensory neuron function.</a> Handbook of Experimental Pharmacology. (194), 417-449 (2009).</li>
<li>Neto, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Axonal+outgrowth%2C+neuropeptides+expression+and+receptors+tyrosine+kinase+phosphorylation+in+3D+organotypic+cultures+of+adult+dorsal+root+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Axonal outgrowth, neuropeptides expression and receptors tyrosine kinase phosphorylation in 3D organotypic cultures of adult dorsal root ganglia.</a> PLoS One. 12 (7), e0181612(2017).</li>
<li>Nascimento, A. I., Mar, F. M., Sousa, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+intriguing+nature+of+dorsal+root+ganglion+neurons%3A+Linking+structure+with+polarity+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22Progress+in+Neurobiolology%22%5BJournal%5D)">The intriguing nature of dorsal root ganglion neurons: Linking structure with polarity and function.</a> Progress in Neurobiolology. 168, 86-103 (2018).</li>
<li>Middleton, S. J., Perez-Sanchez, J., Dawes, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+structure+of+sensory+afferent+compartments+in+health+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Anatomy%22%5BJournal%5D)">The structure of sensory afferent compartments in health and disease.</a> Journal of Anatomy. 241 (5), 1186-1210 (2022).</li>
<li>Nguyen, M. Q., von Buchholtz, L. J., Reker, A. N., Ryba, N. J., Davidson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Single-nucleus+transcriptomic+analysis+of+human+dorsal+root+ganglion+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22eLife%22%5BJournal%5D)">Single-nucleus transcriptomic analysis of human dorsal root ganglion neurons.</a> eLife. 10, e71752(2021).</li>
<li>Usoskin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Unbiased+classification+of+sensory+neuron+types+by+large-scale+single-cell+RNA+sequencing%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Unbiased classification of sensory neuron types by large-scale single-cell RNA sequencing.</a> Nature Neuroscience. 18 (1), 145-153 (2015).</li>
<li>Hunt, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DRGquant%3A+A+new+modular+AI-based+pipeline+for+3D+analysis+of+the+DRG%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Methods%22%5BJournal%5D)">DRGquant: A new modular AI-based pipeline for 3D analysis of the DRG.</a> Journal of Neuroscience Methods. 371, 109497(2022).</li>
</ol>

著者は何も開示していません。

このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片作成のための簡単なステップバイステップの手順を提供し、スライド上の高品質のDRG切片を確実に取得します。このプロトコルには 4 つの重要なステップがあります。まず、DRGサンプルとピンセットを乾燥させてから、DRGサンプルをベースOCTに置く必要があります。DRGサンプルを取り巻く液体は、その周囲に氷殻を形成し、その結果、DRGセクションがOCTから分離し、湾曲します。第二に、アルミニウムブロックにマークがない場合、またはベースOCTがマークを覆っている場合は、ベースOCTの下部(6時の位置)にマークを付け、プロセス全体を通してこのマークを6時の位置に保つことが重要です。一定の方向を保つと、DRGを上から下に完全に切断できず、一部のDRGサンプルが取り残されて無駄になるため、より多くのDRGセクションを取得するのに役立ちます。第三に、ベースOCTとカバーOCTの両方の上端は、アルミニウムブロックの上端にある必要があります。このようにして、アルミニウムブロックの上端は、スライドガラスがDRGセクションを取るのを妨げません。第4に、2番目のDRGセクションはスライドガラスに直接付着しないた...

後根神経節(DRG)には、一次感覚ニューロン、組織マクロファージ、および一次感覚ニューロンを取り囲む衛星細胞が含まれています1,2,3,4。これは、無害で有害な信号を処理する際の重要な解剖学的構造であり、痛み、かゆみ、およびさまざまな末梢神経障害に重要な役割を果たします5,6,7,8,9,10,11,12,13。マウス脊髄からDRG組織を解剖する方法はいくつか開発されているが14,15,16、DRG組織は非常に小さく、DRG試料のクライオスタット切片はロール状に湾曲する傾向があり、クライオスタット切片をスライドガラス上に適切に移すことが困難であるため、DRG組織の凍結切片は依然として困難である。しかし、DRG組織の適切な凍結切片は、免疫組織化学研究とDRG感覚ニューロンの構造にとって非常に重要です17,18,19,20,21,22,23。さらに、単一細胞RNAシーケンシングの結果、ヒト24とマウス25の両方でDRG感覚ニューロンの顕著な不均一性が明らかになったため、DRG組織の適切な凍結切片は、さまざまな生理学的および病理学的状態におけるさまざまなDRG細胞の機能的役割を調査するために重要です。
組織透明化技術は、DRG凍結切片の代替技術としてDRG26 の3D再構成を調査するために適用されていますが、組織透明化技術は時間と労力がかかります。それに比べて、DRGの凍結切片は迅速かつ比較的簡単に実行できるため、DRGおよび中枢神経系の他の領域の免疫組織化学および構造研究にとって重要な技術であることに変わりはありません。しかし、DRGや特定の脳領域などの組織のサンプルサイズが小さいため、スライドガラス上に高品質で無傷の平らなクライオスタット切片を得ることは、神経科学研究における課題であり、マウスDRGなどの小さなサイズの組織サンプルを凍結切片化するための最適なプロトコルを現時点では説明していません。
このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片作成のための簡単なステップバイステップの手法を提供し、その後のDRG研究のためにスライド上の高品質のDRG切片をできるだけ多く確実に取得します。この手法は、DRGサンプルの凍結切片作成に特化して設計されていますが、小さなサンプルサイズで他のさまざまな組織の凍結切片化にも使用できる可能性があります。

<table><tbody><tr><td>アバーティン</td><td>シグマ-アルドリッチ</td><td>T48402-25G</td><td>麻酔動物</td></tr><tr><td>エプレディア&nbsp;クライオトーム クライオスタット クライオカセット、直径 25 mmクロスハッチド</td><td>フィッシャーブランド</td><td>1910</td><td>OCTセクションを下部に保持&nbsp;</td></tr><tr><td>エルゴピンセット</td><td>フィッシャーブランド</td><td>S95310</td>ピン<td>セットの端を使用して底にそっと触れます(6 o'時計)セクションがロールで曲がるのを防ぐためにプラットフォームの表面にくっつくようにセクション&nbsp;</td></tr><tr><td>フィッシャーブランド&nbsp;Superfrost Plus Microscope Slides</td><td>Fisherbrand</td><td>1255015</td><td>DRGセクションを収集するには&nbsp;</td></tr><tr><td>マーキングペン</td><td>フィッシャーブランド</td><td>133794</td><td>&nbsp;ベースOCT Scigenの向きをマーク</td></tr><tr><td>します&nbsp;ティッシュプラスOCTコンパウンド</td><td>フィッシャーブランド</td><td>&nbsp;23730571</td><td>凍結組織標本用の埋め込み培地で、最適な切断温度(O.C.T.)を確保します。</td></tr></tbody></table>

マウス背根神経節凍結切片の手順

A Procedure for Mouse Dorsal Root Ganglion Cryosectioning

高品質のマウス後根神経節(DRG)クライオスタット切片は、炎症性および神経因性疼痛、かゆみ、その他の末梢神経疾患の研究における適切な免疫化学染色およびRNAscope研究に不可欠です。しかし、DRG組織のサンプルサイズが小さいため、高品質で無傷かつ平坦なクライオスタット切片をスライドガラス上に一貫して取得することは依然として課題です。これまでのところ、DRG凍結切片の最適なプロトコルを説明した記事はありません。このプロトコルは、DRG凍結切片に関連する頻繁に遭遇する問題を解決するための段階的な方法を提示します。本稿では、DRG組織サンプルから周囲の液体を除去し、DRG切片をスライド上に同じ向きで配置し、スライドガラス上の切片を湾曲せずに平らにする方法を説明します。このプロトコルはDRGサンプルの凍結切片用に開発されましたが、サンプルサイズが小さい他の多くの組織の凍結切片にも適用できます。

現在の研究では、1 つのマウス L4 DRG から約 16 の連続した高品質の DRG 切片を収集しました。得られた切片は歪みがなかった。 図1 は、凍結切片の段階的な手順を示しています。組織切片からの余分な液体の除去を 図2に示します。組織のOCT包埋のプロセスを 図3に示します。 図4 は、スライドガラス上のDRGセクションの適切な配置を示しています。 図5 は、マウスDRG切片の生理学的構造の共焦点蛍光顕微鏡画像を示しています。ニッスル染色では様々なサイズのDRG感覚ニューロンが示され、DAPI染色ではニューロンを取り巻く細胞が示されます。このイメージは、このプロトコルで取得されたDRGセクションの品質を示しています。DRGの免疫組織化学研究には、DRG内のさまざまなニューロンタイプの研究など、さまざま...

ここでは、高品質な後根神経節クライオスタット切片を安定的に取得するための開発を紹介します。

High-quality mouse dorsal root ganglion (DRG) cryostat sections are crucial for proper immunochemistry staining and RNAscope studies in the research of ...

高品質で無傷かつ平坦なマウス後根神経節クライオスタット切片を一貫して取得することは依然として課題です。本研究は、理想的なマウス後根神経節クライオスタット切片の獲得方法に答えることを目的としています。このプロトコルは、マウスDRGのクライオスタット切片から、高品質、インタクト、フラットマウスDRGクライオスタット切片までの簡単なステップバイステップの技術を提供します。本稿では、マウスDRGサンプル組織から周囲の液体を除去し、DRG切片を同じ向きのスライドに配置し、DRG切片を湾曲させずに平らにする方法を説明します。大きな課題の1つは、マウスDRGのOCT部分がロール状に湾曲する傾向があり、スライドガラス上に配置するのが難しいことです。また、マウスDRGのサイズが小さいため、1つのサンプルから十分な切片を取得することも困難です。

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

神経科学

我々は、軸索損傷後の脊髄後根神経節の組織からクロマチン免疫沈降法を提示する。アプローチは、特定の転写因子結合部位と末梢および中枢神経系の両方で負傷した軸索の再生のための重要なヒストンとDNAのエピジェネティックな修飾を識別するために使用することができます。...

軸索損傷後の脊髄後根神経節の組織からのクロマチン免疫沈降

このビデオは、機械的な解離技術を使用してマウスの後根神経節(DRG)からマクロファージを分離する酵素フリーのプロトコルを示しています。採取したばかりのDRG組織を均質化した後、マクロファージ上の細胞表面受容体に対する抗体を使用して細胞を蛍光標識し、続いてフローサイトメトリーを実施してサンプル中のマクロファージの存在を確認します。...

機械的解離を用いたマウス背側根神経節からのマクロファージの単離

このビデオは、後根神経節(DRG)からニューロンを採取する方法を示しています。ラットの脊柱からDRGを単離し、酵素で処理した後、機械的に解離して単一細胞懸濁液を得る。ニューロンは、密度勾配遠心分離を使用してグリア細胞から分離され、増殖培地で培養されます。...

神経細胞培養のための背根神経節の採取と解離の技術

ここでは、脊髄の油圧押し出しと、同じげっ歯類の特定の後根神経節（DRG）の同定と分離のためのプロトコルを提示します。標準的な脊髄分離法と比較して、この方法は大幅に迅速で、組織損傷のリスクを軽減します。...

げっ歯類での後根神経節の脊髄および単離の油圧押出

ここでは、表現型および機能解析のための後部根神経節からマクロファージを迅速に分離するための機械的解離プロトコルを提示する。...

ドーサルルート神経節マクロファージの迅速な分離

マウス中枢神経系の組織学的分析のための便利な重力供給灌流法が提示される。リン酸化α-シヌクレインの免疫蛍光検出は、パーキンソン病のマウスモデルにおいて実証されている。この研究はまた、経心経灌流、解剖、組織凍結/埋め込み、および凍結切片化ステップを包括的に記述している。...

マウス中枢神経系の組織学的解析のための重力供給経心筋灌流法

この論文では、成体マウス後根神経節に対する免疫パンニングプロトコルについて説明します。培養プレートに抗体を接着させることで、非神経細胞をネガティブに選択して除去することができます。このプロトコルを使用して、培養がニューロンに濃縮されていることを示し、操作に対するニューロン応答の詳細な研究を可能にします。...

イムノパンニングによる成体マウス背根神経節培養の濃縮

このプロトコルは、後根神経節(DRG)の外科的曝露とそれに続くGCaMP3(遺伝的にコードされたCa2+ インジケーター;緑色蛍光タンパク質-カルモジュリン-M13タンパク質 3)Pirt-GCaMP3マウスを用いて、同側後肢に様々な刺激を加えながら神経細胞集合体をCa2+...

インビボ 無傷の背根神経節における一次感覚ニューロンのネットワークにおけるニューロンアンサンブルのカルシウムイメージング

本稿では、推拿療法を用いたラットの後根神経節の慢性圧迫を治療するためのマニピュレーションと、疼痛挙動と病理組織学的結果に基づいてその有効性を評価する方法を紹介します。...

背根神経節痛の圧迫を伴うラットモデルに対する推拿の鎮痛効果

本プロトコルは、色素および凍結切片を用いてウイルス追跡を行う前に、脳定位固定装置注射座標の検証ステップを迅速化するための実際的な戦略を説明しています。...

クライオセクショニングによる脳定位固定装置注射座標の予備検証

背根神経節(DRG)は一次感覚神経細胞体を含み、末梢感覚信号を脊髄に中継します。このプロトコルは、構造的に完全な神経節の標準化された分離、解剖学的節節識別、初心者ユーザー向けの直感的な指導、そして手技的組織損傷の軽減を支援するマウスDRG解離の方法を説明しています。...

マウス背根神経節の解離と分離

学ぶマウス背根神経節の凍結切片法。OCT包埋とクリオスタットを用いて、高品質で平坦なDRG切片を安定的に取得する技術。免疫組織化学研究に最適な神経組織標本作製プロトコルを解説します。

マウス背根神経節凍結切片の手順

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