2023年6月2日
機能部位特異的蛍光法は、タンパク質ドメインの動きをリアルタイムで研究する方法です。天然細胞への適用のためのこの技術の修正は、マウス単離された骨格筋線維における電位依存性Ca2+ チャネルからの単一の電圧センサ運動の検出および追跡を可能にするようになった。
電位依存性イオンチャネルのメンバーであるCaV1.1には、4つの異なる電圧センサがあります。証拠は、いくつかの電圧センサーがリアノジン受容体の活性化またはカルシウム電流により多く寄与することを示唆しています。私たちは、励起-収縮結合とカルシウムチャネル活性化における各電圧センサーの正確な役割を特定できるようにすることを目指しています。
励起-収縮カップリングは50年代初頭から研究されてきましたが、このプロセスがどのように発生するかについての分子の詳細はまだ不明です。チャネルのサイロ電子顕微鏡構造の最近の進歩、新規CaV1.1アクセサリータンパク質の特性評価、チャネル選択的スプライシングバリアントの発見、および疾患の原因となる突然変異の同定により、この分野への関心が再燃しました。私たちの分野では、古典的な電気生理学や分子生物学から、クライオ電子顕微鏡、分子動力学シミュレーション、標的タンパク質分解、機能部位特異的蛍光法などのより新しい技術、改変細胞や動物モデルまで、多くの技術が使用されています。
現在、燃料はいくつかの実験的課題に直面しています。骨格筋では、CaV1.1とRyR1の間の適切な輸送とコミュニケーション、および多くの調節タンパク質が興奮収縮カップリングをサポートするために重要です。CaV1.1とRyR1の間のこれらのタンパク質間相互作用を直接研究する方法は、欠落しているか不完全です。
Martin Schneider博士の研究室は、何十年にもわたって励起-収縮結合に取り組んでおり、CaV1.1、カルシウム放出、およびカルシウムスパークとして知られる局所的なカルシウム放出イベントの電圧検出メカニズムを特徴付けています。最近、私たちの研究室では、機能している成人の筋細胞における興奮収縮結合と電圧センサー運動のさまざまなステップを調べるために、新しい光学技術を実装しています。これは以前は異種発現システムで行われていましたが、私たちのプロトコルでは、CaV1.1電圧センサーのネイティブ環境での伝播された活動電位中の立体構造の変化を追跡できるようになりました。
私たちの新しい技術により、励起-収縮結合に必要な電圧センサーの正確な動きを調べることができます。私たちは、各S4のどの電荷残基がその機能に重要であるか、または正確に各S4が転座し、転座がすべてCaV1.1の開環またはリアノジン受容体の活性化に関連していることを知りたいのです。
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本研究では、マウス骨格筋の興奮収縮共役において重要な役割を果たすKv1.1電位依存性カルシウムチャネルの電圧センサーの動きを調査します。機能的部位特異的蛍光光度法を用いることで、研究者はこれらのタンパク質ドメインの動きを、本来の細胞内環境においてリアルタイムで追跡することを可能にしています。
天然の骨格筋細胞における機能的な部位特異的フルオロメトリーにより、電位依存性イオンチャネルの構造変化をリアルタイムで分析することが可能となり、筋興奮性研究における初期段階のターゲットバリデーションおよびメカニズム的なリスク低減に直接的な知見が得られます。このアプローチは、異種発現系と生理学的に関連のあるモデルとの間の乖離を埋めるものであり、イオンチャネルを標的としたポートフォリオの予測信頼性を高めます。この手法の統合は、神経筋疾患およびチャネル病を適応症とする創薬・前臨床パイプラインにおいて、より情報に基づいたGo/No-go判断を支援します。
この手法は、初期のターゲットバリデーションからリード化合物の同定、そして前臨床段階のメカニズム研究に至る創薬の連続的なプロセスに組み込まれるものであり、特にイオンチャネルや筋肉の興奮性に関するプログラムに有用です。