2006年11月8日
本日は、正立顕微鏡でのイメージングに使用するフローチャンバー(融合チャンバー)の作製方法について説明します。まず、フィルムを用いて2つの空間を作成します。具体的には、パラフィルムを小さな帯状に切り出して使用します。
次に、壁となるチャネルを形成します。傾斜させたエアダスターで乾燥させ、パラフィルムの上にカバーガラスを載せます。これで完成です。その後、ヒートブロックで加熱してパラフィルムを溶かし、密封します。
こちらにあるのがカバーガラスで、その上に、ご覧の通り2層のフィルムが載っています。そしてさらにその上に、22 × 22 mmのカバーガラスが載っています。こちらにあるこのガラスをフィルムに押し当てて、封止を行いました。
まず、液体はこちらの一方向から注入し、こちらの方向にあるフィルターペーパーで吸引して取り出します。その方法は後ほど説明します。私は通常、非常にシンプルな加湿チャンバーに入れる方法を推奨しています。
2種類の嵩上げストリップを用意し、その下にフィルターペーパーを敷きます。また、ノイズを防ぐため、フローチャンバーにカバーガラスを被せます。チャンバーに溶液を導入する方法は、ピペットチップをチャンバーの入口に当て、そのまま分注することです。
次に、蓋を閉めた状態でチャンバーを10分間インキュベートします。反対側から液体を吸い出すために通常行う方法は、フィルターペーパーをこのように細い帯状に切ることです。この細い帯状のペーパーを1本用意し、入口から溶液を注入しながら、同時に出口にフィルターペーパーを当てることで、溶液の交換(吸引)を行います。
溶液が流れているのがわかります。その後、密閉されるまで5分間待ちます。次に、アクチンを導入します。アクチンは実際に重合させる必要がありますが、フローチャンバー内で重合させます。手順は先ほどと同じです。
このようにしてアクチンが重合したため、ここからは大量のバッファーを用いて、未重合の過剰なアクチンをすべて洗い流します。ここでは約100 µLのバッファーを使用しており、これは反応チャンバー数回分の量に相当します。フィルターペーパーが飽和状態になったら、流す方向を変える必要があります。よろしいでしょうか。
これでイメージングの準備が整いました。アクチンが固定された灌流チャンバーです。次にスライドを顕微鏡下にセットします。オイル浸漬対物レンズを使用してイメージングを行うため、カバーガラスの上面に浸漬オイルを滴下し、内部のアクチンに溶液やタンパク質などを添加できるようにします。
したがって、タイムラプスイメージングの実施中に、溶液側を実際に交換することができます。
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本記事では、正立顕微鏡でのイメージングに使用するフローチャンバーおよび融合チャンバーの作製方法について解説します。このプロセスでは、パラフィルムを用いてチャネルを作成し、熱で密封します。
本プロトコルにより、生細胞イメージングのための制御された微小環境を再現性高く調製することが可能となり、細胞骨格ダイナミクスのメカニズム研究を支援します。フローチャンバーの組み立てを標準化することで、灌流ベースのアッセイにおけるばらつきが低減し、探索チーム間でのデータの一貫性が向上します。また、本手法はアクチン脱重合速度の定量分析を容易にします。これは細胞運動やシグナル伝達における重要なプロセスであり、腫瘍学や免疫学におけるターゲットバリデーションに関連しています。
この手法は、ターゲット結合スクリーニングから疾患関連細胞系における機能的検証に至るまでの、創薬のディスカバリー・コンティニュアムに適合しています。