Name: アポプラスト抽出法による植物産生組換えタンパク質の純度向上 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-07-05T14:20:00.000+00:00
Duration: 5 min 33 s
Description: 学ぶアポプラスト抽出法による植物産生組換えタンパク質の高純度化技術。Nicotiana benthamianaを用いた真空浸透遠心法で細胞破壊なしにGFP Hisの純度84.3%を達成し、精製コストを削減する革新的な手法です。

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この作業は、Youth Innovation Promotion Association CAS(2021084)と、中国科学院微生物学研究所の3カ年行動計画の主要展開プロジェクト支援基金の支援を受けています。

1. N. benthamiana植物の調製
<ol><li>苗ブロックをトレイに置き、1 Lの水を加え、完全に飽和するまで約2時間浸します。</li>
	<li>野生型の N.ベンタミアナ の種子を苗ブロックに均等に振りかけ、蓋をして1週間発芽させます。 N. benthamianaを 18時間の日長、24°C、相対湿度45%の温室で栽培し、2週間ごとに施肥します。</li>
	<li>種子が発芽したら、根に損傷を与えないように注意しながら、ピンセットを使用して苗をそっと取り除きます。新しいトレイの中央に小さな穴を掘り、その中に苗を置き、根を土で軽く覆います。蓋をして成長を続けます。</li>
	<li>ふたをした状態で、苗に3枚の葉ができるまで育てます。4枚目の 本葉が出てきたらフタを外します。</li>
	<li>植物が農業浸透する前に、さらに2週間成長を続けるのを待ちます。</li>
</ol>2. 組換えGFP-Hisの構築
<ol><li>遺伝子配列に基づく N. benthamiana コドンの最適化と GFP および PR1a の合成 (MGFVLFSQLPSFLLVSTLLLFLVISHSCRAG) を行います。</li>
	<li>Xba IおよびSac I酵素を使用して、pCAMBIA1300ベクターの二重消化を行います( 材料表を参照)。</li>
	<li>アップストリームプライマー(TTGGAGAGAACACGGGGGACTCTAGAATGGGATT TGTTCTCTTTTC)およびダウンストリームプライマー(TCCTCG CCCTTGCTCACCATGTCGCCCCGGCACCCAAGA GTGGG)、アップストリームプライマーを用いたGFPの増幅(CCCACTCTTGCCGTGCCGGGGTCGACATGGTGAG CAAGGGCGAGGA)およびダウンストリームプライマー(GGGGAAATTCGAGCTCTCAGTGGTGATGGTGGTG GTGAGATCTTCCGGACTTGT) です。</li>
	<li>相同組換えを用いて、PR1aおよびGFPをpCAMBIA1300植物発現ベクターにクローニングします。 大腸菌に移管した後、単一のクローンを選択し、シーケンシングのために会社に送ってください。シーケンシング結果と右プラスミドとの比較は、組換えプラスミドpCAMBIA1300-PR1a-GFP-His(p35s-PR1a-GFP-His)です。</li>
</ol>3. N. benthamianaにおけるGFP-Hisの作製
<ol><li>50μLの アグロバクテリウム 受容体細胞GV3101にGFPプラスミド1μLを加え、穏やかに混合して電極カップに加え、エレクトロショックャーで感電死した後に除去します。</li>
	<li>形質転換 したAgrobacterium tumefaciensを 、50 μg/mL のカナマイシン(Kan)と 50 μg/mL のリファンピシン(Rif)を入った LB 固体培地プレートに広げます。インキュベートし、28°Cで48時間逆転させます。pCAMBIA1300ベクターはカン耐性があり、アグロバクテリウムはリフ耐性です。正しい アグロバクテリウム だけがkanとrifのプレートで成長することができます。モノクローナルクローンは、 A. tumefaciens GV3101-p35s-PR1a-GFP-His (AtGPG) と名付けられた正の形質転換体でした。</li>
	<li>滅菌したつまようじを使用して適量のAtGPGを拾い上げ、KanとRifを液体LBの4mLに接種します。28°C、220-300rpmで24時間培養します。</li>
	<li>細菌を1:50で新鮮なLB(50 μg/mL Kan、10 mM 2-(N-モルフォリノ)エタンスルホン酸(MES)、20 μMアセトシリンゴン(AS))に継代培養し、28°C、220-300 rpmで10-12時間インキュベートします。</li>
	<li>1500 x g で 10 分間遠心分離して細菌を回収し、1 mL の MMA (10 mM MgCl2、10 mM MES pH 5.6、100 μM AS) でペレットを再懸濁します。</li>
	<li>MMAを使用して、AtGPGの光学密度(OD)をOD600 = 0.8に測定および調整します。細菌を室温でさらに2〜4時間インキュベートします。無針注射器で細菌溶液を引き上げ、葉の裏側に軽く押し付け、溶液を葉に浸透させるように圧力をかけます。植物ごとに真ん中の3〜4枚の葉だけを注入します。</li>
	<li>タンパク質抽出のために葉を収穫する前に、温室で N.benthamianaを 3〜4日間栽培し続けます。</li>
</ol>4. GFPの細胞内局在の観察
<ol><li>農業浸透の48時間後、平らな葉を選択し、6 mmの穴パンチを使用してパンチング用のブレードをクランプします。</li>
	<li>スライドガラスに30%ショ糖溶液を滴下し、葉のサンプルを裏面を上にして置き、カバーガラスで覆います。</li>
	<li>励起波長を488nmに設定し、400倍に倍率した後、490-550nmで緑色蛍光を検出します。スライドの準備が整ったら最初の写真を撮り、10分後に別の写真を撮ります。</li>
</ol>5. 植物からのGFPの抽出
<ol><li>AWF 抽出<ol><li>アグロインフィルトレーションの3日後に、組換えGFPを発現する無傷の新鮮な N.benthamiana の葉を採取します。葉を優しく扱い、葉の完全性を維持して、細胞内タンパク質の流出を防ぎます。タンパク質の分解を避けるために、収集した葉をすぐに次のステップに使用してください。</li>
		<li>葉身を予冷滅菌したddH2Oですすぎ、破片を取り除きます。</li>
		<li>新鮮な葉を秤量し、20 gの葉(軸面を下にして)を100 mLの予冷済み100 mMリン酸緩衝液(PB 100 mM Na2HPO4 および100 mM NaH2PO4 を別々に構成し、200 mLの広口ビーカーで2.2:1 pH 7.0)で混合します。100メッシュのナイロン細メッシュ糸( 材料の表を参照)とプラスチックプレートで葉を覆います。 注:予冷はタンパク質の分解を防ぎます。バッファ容量は、実験スケールに基づいて調整できます。すべての葉が浸されていることを確認してください。</li>
		<li>ビーカーを真空ポンプに入れます。0.8MPaの真空を1分間印加した後、すぐに大気圧に戻します。</li>
		<li>緩衝液から葉を取り除き、吸収紙でやさしく吸い取ります。葉を巻き上げ、メッシュ糸で包み、50mLの遠心チューブに5gの葉を入れます。AWFを回収するには、チューブキャップでメッシュ糸を固定したチューブに、葉の先端を上にしてロールします。</li>
		<li>4°C、500 x g で5分間遠心分離します。葉を取り除き、ピペットを使用してチューブの底にAWFを回収します。各チューブから約5mLのAWFを採取できます。 注:細胞内タンパク質からの干渉を最小限に抑え、最大量のAWFタンパク質を抽出するために、抽出は2x〜3x繰り返すことができますが、3xを超えることはできません。</li>
	</ol></li>
	<li>全可溶性タンパク質抽出<ol><li>20 gの葉を液体窒素中で微粉末に挽きます。抽出バッファー(50 mM Tris-HCl pH 7.4、150 mM NaCl、10% グリセロール、1% Triton X-100、0.034% β-メルカプトエタノール( 材料表を参照))を 1:2 の比率で添加します。</li>
		<li>ホモジネートを縦型ミキサーで4°Cで30分間振とうします。 ホモジネートを13,000 x g で4°Cで15分間遠心分離します。</li>
		<li>上清を新しいチューブに移し、遠心分離を15分間繰り返します。透明にした上清を別のチューブに移します。.</li>
		<li>0.22 μmフィルター( 材料の表を参照)で上清をろ過し、全可溶性タンパク質抽出物を得ます。</li>
	</ol></li>
</ol>  
6. ニッケル(Ni)アフィニティークロマトグラフィーによるGFP-Hisの精製
注意: すべての手順を4°Cで実行します。
<ol><li>Niセファロースエクセル樹脂( 材料表を参照)を、ステップ5.1.6のタンパク質抽出物容量に対して1:1000の比率でチューブに添加します。樹脂の量は、タンパク質抽出物の体積の1/1000に 等しい。</li>
	<li>Ni樹脂を10倍の樹脂容量のddH2OとPB(pH 7.0)で別々に3回洗浄し、上清を取り除きます。</li>
	<li>タンパク質抽出物をNi樹脂と2時間インキュベートして、完全に結合させます。500 x g で5分間遠心分離し、上清中の未結合タンパク質を除去します。PBの20倍のレジンボリュームで3回洗浄します。500 x g で5分間遠心分離し、上清を除去します。</li>
	<li>250 mM イミダゾール (50 mM Tris-HCl pH 7.4、150 mM NaCl、10% グリセロール、250 mM イミダゾール) の 10x 樹脂量を添加して GFP-His を溶出し、上清を回収します。</li>
</ol>7. タンパク質のクマシーブルー染色
<ol><li>10 μL の 5x SDS ローディングバッファーを 40 μL のタンパク質サンプルに加え、10 分間煮沸した後、15% SDS-PAGE で 110 V で 60 分間分析します。</li>
	<li>タンパク質ゲルをクマシーブルー溶液(0.1%R-250、25%イソプロパノール、10%氷酢酸)で2時間染色します。</li>
	<li>溶液を注ぎ、脱色液で2時間洗浄します。ゲルを観察します。ゲル上のタンパク質は青色に着色されます。</li>
</ol>8. タンパク質のウェスタンブロッティング
<ol><li>10 μL の 5x SDS ローディングバッファーを 40 μL のタンパク質サンプルに加え、10 分間煮沸した後、15% SDS-PAGE で 110 V で 60 分間分析します。</li>
	<li>タンパク質を280mAの0.45μmニトロセルロースメンブレンに移します。5%スキムミルクでメンブレンを1時間ブロックします。</li>
	<li>抗Hisタグ抗体を1:5000で希釈し、メンブレンを抗体と1時間インキュベートします。トリス緩衝生理食塩水とTween 20(TBST)を使用して、メンブレンを4回5分間洗浄します。</li>
	<li>抗マウス抗体を1:10000に希釈し、メンブレンを抗体と1時間インキュベートします。TBSTを使用して、メンブレンを4回5分間洗浄します。</li>
	<li>現像液( 材料の表を参照)を1:1の比率で混合します。メンブレンに400μLを加え、1分間反応させます。ビジュアライザーで1分間の露光後に写真を撮ります。</li>
</ol>9. タンパク質濃度アッセイ
<ol><li>Bradford 1x 色素試薬 1 mL に 5 μL のタンパク質を添加し、5 分間反応させます。</li>
	<li>ゼロ調整後のOD595 値を決定し、標準曲線からタンパク質濃度を計算します。</li>
</ol>10. タンパク質の定量 31
<ol><li>タンパク質サンプルのウェスタンブロッティングを標準試料と一緒に行います。</li>
	<li>ImageJ 1.5.0グレースケール分析を使用して、標準に対する比率によるGFPの定量化を実行します。</li>
</ol>

N. benthamianaの葉からのGFP-Hisの効率的な抽出と精製

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<li>Zhao, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Wheat+Apoplast-localized+lipid+transfer+protein+TaLTP3+enhances+defense+responses+against+Puccinia+triticina%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Plant+Sci%22%5BJournal%5D)">Wheat Apoplast-localized lipid transfer protein TaLTP3 enhances defense responses against Puccinia triticina.</a> Front Plant Sci. 12, 771806(2021).</li>
<li>Venkataraman, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+expression+and+purification+strategies+for+plant+made+vaccines%5BTitle%5D)+AND+%22Front+Plant+Sci%22%5BJournal%5D)">Recent advances in expression and purification strategies for plant made vaccines.</a> Front Plant Sci. 14, 1273958(2023).</li>
<li>Witzel, K., Shahzad, M., Matros, A., Mock, H. P., Mühling, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparative+evaluation+of+extraction+methods+for+apoplastic+proteins+from+maize+leaves%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Meth%22%5BJournal%5D)">Comparative evaluation of extraction methods for apoplastic proteins from maize leaves.</a> Plant Meth. 7, 48(2011).</li>
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著者は、利益相反を宣言しません。

植物を使用して治療用タンパク質を生産することは、近年急速に拡大しています1,2,3,4,5,6。タンパク質をコードする遺伝子は、発現ベクターにクローニングされ、アグロインフィルトレーションを介して植物組織に送達されます。植物細胞で生産されたタンパク質は、下流のアプリケーションのために精製されます。通常、組換えタンパク質はTSP抽出物から精製されます。しかし、抽出中に植物細胞から放出される豊富な植物タンパク質およびシトクロムは、精製を妨げる可能性がある33。一方では、植物性シトクロムは分離カラムを詰まらせ、処理を遅らせる可能性があります17;一方、RuB...

今日では、抗体、ワクチン、生理活性タンパク質、酵素、および小さなポリペプチド1,2,3,4,5,6を含む、さまざまな植物産生組換え治療タンパク質が研究されています。植物は、その安全性、低コスト、および生産を迅速に拡大する能力により、治療用タンパク質を製造するためのますます利用されるプラットフォームになりつつあります7,8。植物系におけるタンパク質の発現と修飾は、タンパク質の精製とともに、植物バイオリアクターの生産性を決定する重要な要素である9,10。植物の生産性を向上させ、高純度の標的タンパク質を得ることは、植物ベースの生産システムが直面する主要な課題です11,12。
組換えタンパク質の細胞内局在と修飾は、N末端にコードされる特定のシグナルペプチドに依存し、N末端は遺伝子発現中にタンパク質を最終オルガネラの目的地に標的とします。組換えタンパク質は、その固有の特性に基づいて、アポプラスト、小胞体(ER)、葉緑体、液胞、または細胞質に局在するように設計されています13。抗原および抗体については、分泌されたタンパク質が好ましい。分泌前に、タンパク質はERおよびゴルジ体を介して進行し、正しいフォールディングおよび翻訳後修飾を行います14,15,16。
植物での生産後、組換えタンパク質は植物抽出物から精製する必要があります。典型的には、タンパク質は、豊富な細胞内タンパク質、誤って折り畳まれた未修飾の産物、およびシトクロムを含む全可溶性植物抽出物から精製される17。不純物を除去するために、植物抽出物は、リブロース-1,5-ビスリン酸カルボキシラーゼ/オキシゲナーゼ(RuBisCO)特異的アフィニティークロマトグラフィー、フィチン酸沈殿、ポリエチレングリコール沈殿、温度とpH18,19の調整など、広範な分画を受けます。このような不純物除去ステップは手間がかかり、タンパク質の品質を損なう可能性があります。
原形質膜を越えた植物細胞コンパートメントは、細胞壁、細胞間空間、および木部20を包含するアポプラストとして定義されます。水相は一般にアポプラスト洗浄液(AWF)と呼ばれます。AWFは、細胞によって分泌される分子を含んでおり、輸送、細胞壁代謝、およびストレス応答21,22のような多数の生物学的進行を調節する。TSPとは対照的に、AWFの分子成分はそれほど複雑ではありません。AWFから組換えタンパク質を抽出することで、細胞内タンパク質、誤って折り畳まれた製品、および細胞質の残骸による汚染を回避できる可能性があります。簡単に言えば、抽出脂質は負圧下で気孔を通じて葉に入り、AWFは穏やかな遠心分離によって収集されます23。AWFの単離は、アポプラスト24,25,26,27内の生物学的進歩を研究するために広く採用されていますが、植物ベースの生産システムでは利用されていません。
植物の生産性を向上させ、高純度の標的タンパク質を得ることは、植物生産システムにとって中心的な課題である28。典型的には、タンパク質は、細胞内タンパク質、誤って折り畳まれた未修飾の産物、およびシトクロム29を多く含む全可溶性植物抽出物から精製され、これらはその後の精製30に多大なコストを必要とする。アポプラストに分泌される外因性組換えタンパク質の抽出にAWFタンパク質抽出法を使用すると、組換えタンパク質の均一性を効果的に改善し、タンパク質精製のコストを削減できます。ここでは、シグナルペプチドPR1aを用いてアポプラスト空間への外因性タンパク質の分泌を可能にするとともに、 N. benthamianaのAWFから組換えタンパク質を精製するための詳細な方法を紹介します。

<table><tbody><tr><td>100メッシュナイロンファインメッシュ糸</td>広<td>州Huayuトレーディング有限会社</td><td>hy-230724-2</td><td>AWFタンパク質抽出用</td></tr><tr><td>50ml遠心分離管</td><td>Vazyme</td><td>TCF00150</td><td>遠心分離機用</td></tr><tr><td>ClonExpress IIワンステップクローニングキット</td><td>Vazyme</td><td>C112-02</td>クローン<td>FastDigest</td></tr><tr><td>Sac1</td><td>NEB</td><td>R3156S</td><td>クローン</td></tr><tr><td>FastDigest XbaI</td><td>NEB用</td><td>FD0685</td><td>クローン用</td></tr><tr><td>ImageJ 1.5.0</td><td>/</td><td>/</td><td>グレースケール解析用</td></tr><tr><td>大型フィルター</td><td>サーモフィッシャー</td><td>NEST</td><td>フィルタリング用</td></tr><tr><td>レーザー走査型共焦点顕微鏡</td><td>ライカ SP8</td><td></td><td>細胞内局在化用</td></tr><tr><td>Ni sepharose excel</td><td>Cytiva</td><td>10339806</td><td>タンパク質精製用</td></tr><tr><td>プレキャストタンパク質プラスゲル</td><td>YEASEN</td><td>36246ES10</td><td>SDS-PAGE用</td></tr><tr><td></td><td>小型</td><td>フィルターNalgene</td><td>1660045</td></tr><tr><td>SuperSignalウェストフェムト基板トライアルキット</td><td>サーモフィ</td><td>ッシャー34076</td><td>ウェスタンブロッティング用</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>SCR</td><td>30188928</td><td>抽出バッファーを構成するには</td></tr><tr><td>ロータリーバン真空ポンプ</td><td>浙江省泰州qiujing真空ポンプ有限会社</td><td>2XZ-2</td><td>真空浸透用</td></tr><tr><td>垂直ミキサー</td><td>Haimen Qilinbel Instrument Manufacturing limited company</td><td>BE-1200</td><td>混合用</td></tr><tr><td>&beta;-メルカプトエタノール</td><td>SIGMA</td><td>BCBK8223V</td><td>抽出バッファーを構成するには</td></tr></tbody></table>

アポプラスト抽出法による植物産生組換えタンパク質の純度向上  

Apoplast-Extraction Based Method to Improve the Purity of Plant Produced Recombinant Protein

植物は、治療用タンパク質を産生するために研究されている新しく開発された真核生物の発現システムです。植物からの組換えタンパク質の精製は、生産プロセスにおける最も重要なステップの1つです。通常、タンパク質は全可溶性タンパク質(TSP)から精製され、その他の細胞内タンパク質とシトクロムの存在は、その後のタンパク質精製ステップに課題をもたらします。さらに、抗原や抗体などのほとんどの治療用タンパク質は、適切なグリコシル化を得るために分泌され、不完全に修飾されたタンパク質の存在は、抗原または抗体の構造の一貫性を失わせます。この研究では、植物のアポプラスト空間から高度に精製された組換えタンパク質を得るためのより効果的な方法を紹介します。組換え緑色蛍光タンパク質(GFP)は、 Nicotiana benthamiana のアポプラストに分泌されるように操作され、その後、浸潤遠心分離法を用いて抽出されます。抽出したアポプラストから得られたGFP-Hisは、ニッケルアフィニティークロマトグラフィーによって精製されます。TSPの従来の方法とは対照的に、アポプラストからの精製では、高度に精製された組換えタンパク質が生成されます。これは、プラント生産システムの重要な技術改善を表しています。

GFP-Hisは、N. benthamianaのアポプラスト空間への分泌を標的としています GFPは、分泌用のN末端PR1aシグナルペプチドと精製用のC末端Hisタグを備えたpCAMBIA1300プラスミドにクローニングされ、p35s-PR1a-GFP-Hisが生成されました (図1A)。この組換えタンパク質は 、N. benthamiana で一過性に発現し、アグロインフィルトレーションの3日後に抗His抗体を用いたウェスタンブロットにより30 kDaのバンドが検出されました (図1B)。プラズマ分解は、細胞壁を細胞膜32から分離するために高張溶液を用いて葉を処理することである。GFPがアポプラストに存在するかどうかを判断するために、30%スクロースを使用して葉をプラズマ分解しました。蛍光顕微鏡法により、アポプラスト内のGFP-...

植物系からの組換えタンパク質の精製は、通常、植物性タンパク質によって課題となります。この研究は、Nicotiana benthamianaのアポプラストから分泌された組換えタンパク質を効果的に抽出および精製する方法を提供します。

Plants are a newly developing eukaryotic expression system being explored to produce therapeutic proteins. Purification of recombinant proteins from ...

apoplast-extraction-based-method-to-improve-purity-plant-produced

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

植物は現在の式のパラダイムより、スケーラブルでコスト効率の高い、安全である商業規模で医薬品タンパク質の生産のための新たなシステムを提供しています。本研究では、我々を含む、標的遺伝子を導入するための簡単​​で便利な、まだスケーラブルなアプローチを報告...

組換えタンパク質の高レベルの一過性発現のための植物の効率的なアグロ

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細菌、昆虫細胞およびプラントシステムズ：異なるバイオファクトリーでの組換えタンパク質発現の比較分析

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三熱沈殿法は、効果的に前に他の精製工程にタバコ抽出物から、宿主細胞タンパク質（のHCP）の90％以上を除去することが示されています。植物のHCPは、不可逆的に60℃以上の温度で凝集します。...

無傷の植物をブランチングすることによって、または抽出物の熱処理によりタバコ宿主細胞タンパク質の除去方法の比較

ここでは、シロイヌナズナの葉と 3 つメイン サブ コンパートメント (エンベロープ、質、およびチラコイド) から葉緑体を浄化する手法について述べる差動遠心、連続 Percoll の勾配の組み合わせを使用して、蔗糖不連続密度勾配。メソッドは subplastidial...

免疫ブロットやプロテオミクスによるタンパク質局在の解析シロイヌナズナから葉緑体小班の準備

我々は、バッチ間のばらつきを最小限に抑えるために細胞増殖を制御することに焦点を当て、OnePot「組換え要素を使用したタンパク質合成」(PURE)システムおよび無細胞タンパク質合成用の粗リボソームを生産するための最新のプロトコルを提示します。...

再現性のある無細胞タンパク質合成のためのOnePot PUREおよび粗リボソーム生産の精製

本プロトコルは、大腸菌からエラスチン様ポリペプチド(ELP)を精製するための迅速かつ再現性のある有機溶媒ベースの抽出および沈殿法を説明 しており、...

有機溶媒を用いた抽出・沈殿法を用いた大 腸菌 からのエラスチン様ポリペプチド(ELP)の効率的な精製

このプロトコルは、シ ロイヌズナ...

最適化されたアポプラスティック洗浄収集法を用いたシロイナズナの葉から植物細胞外小胞の分離および精製

昆虫細胞を調製し、mCD1d四量体を生成する組換えmCD1d...

昆虫細胞における組換えmCD1dタンパク質の製造方法。

学ぶアポプラスト抽出法による植物産生組換えタンパク質の高純度化技術。Nicotiana benthamianaを用いた真空浸透遠心法で細胞破壊なしにGFP Hisの純度84.3%を達成し、精製コストを削減する革新的な手法です。

アポプラスト抽出法による植物産生組換えタンパク質の純度向上

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