Name: マウス初代ミクログリアと皮質ニューロンの作製と共培養 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-07-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 47 s
Description: 学ぶマウス初代ミクログリアと皮質ニューロンの作製・共培養法。神経保護メカニズムや神経炎症の研究に活用でき、長期観察可能なin vitroモデルを構築します。

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JPは、カナダ自然科学工学研究評議会およびサスカチュワン大学医学部からの資金援助を認めています。YDは、サスカチュワン大学医学部スタートアップファンド、カナダ自然科学工学研究評議会ディスカバリー助成金(RGPIN-2023-03659)、MS Canada Catalyst Grant(1019973)、Saskatchewan Health Research Foundation Establishment Grant(6368)、およびBrain Canada Foundation Future Leaders in Canadian Brain Research Grantからの資金援助を認めています。 図 1A、 図 2A、 および図 3A は BioRender.com を使用して作成されました。

この研究で使用されたすべての動物は、サスカチュワン大学の大学動物管理委員会(UACC)およびカナダ動物管理評議会(CCAC)の承認を得て飼育および取り扱われました。この研究では、妊娠中のCD1マウスの出生後0-2日目のCD1オスとメスのマウスと、妊娠したCD1マウスの胚16-18日目(E16-18)の胚を使用しました。試薬や使用した機器の詳細は、 資料表に記載されています。
1. 初代ミクログリアの培養
注:ニューロンが96ウェルプレートに播種されてから2日以内にミクログリアが成熟し、収穫の準備が整うように、混合グリアとニューロン培養の時間を計ることが重要です。
<ol><li>準備<ol><li>高グルコースを添加したダルベッコ改変鷲培地(DMEM)に10%熱不活化ウシ胎児血清、50 U/mLペニシリン/ストレプトマイシンと2.92 mg/mLのL-グルタミン、1 mMピルビン酸ナトリウム、1x非必須アミノ酸、および20 mMのHEPESを37°Cの水浴で調製した予備温グリア培養培地。</li>
		<li>5 mLの10 μg/mLポリ-L-オルニチン(PO)臭化水素酸塩を各T-75フラスコに加えます。フラスコを静かに回転させて、POがフラスコの底を完全に覆うようにします。5% CO2 インキュベーターで37°Cで少なくとも1時間インキュベートします。 注:このコーティングステップは、T-75フラスコへの細胞接着を促進するために必要です。</li>
	</ol></li>
	<li>P0-P2新生児マウスからの脳の単離 注:すべての解剖ツールを滅菌し、試薬の無菌性を維持します。全体を通して無菌技術の遵守を確保します。<ol><li>解剖を開始する前に、70%エタノールまたは解剖が行われる場所でカウンタートップにスプレーします。解剖顕微鏡をセットし、ペトリ皿を顕微鏡の下に置きます。20mLのLeibovitzのL-15培地をペトリ皿に注ぎます。顕微鏡を使用していないときは、汚染を減らすために、ペトリ皿の蓋を閉めたままにしてください。</li>
		<li>ペーパータオルを数層に重ね、ペーパータオルに70%エタノールを十分にスプレーします。解剖ツール(解剖ハサミ、マイクロ鉗子、組織鉗子)に70%エタノールを十分に噴霧し、ペーパータオルの上にツールを置いて準備します。</li>
		<li>出生後0〜2日目のマウスをペーパータオルに移し、マウスに70%エタノールを十分にスプレーします。解剖ハサミを使用してマウスの首を切ります(機関が承認したプロトコルに従います)。</li>
		<li>頭を優しく保持しながら、首から鼻に向かって頭蓋骨に正中線切開を作成します。組織鉗子で頭蓋骨の裏側をはがして、脳を露出させます。</li>
		<li>組織鉗子を使用して、鉗子を脳の下に挿入して脳をやさしくすくい取り、脳を頭から持ち上げます。すぐに脳を20mLのLeibovitzのL-15培地が入ったシャーレに入れます。</li>
		<li>解剖顕微鏡で、一対のマイクロ鉗子を使用して脳幹と髄膜を慎重に取り除きます。5mLのLeibovitzのL-15培地が入った50mLの円錐形チューブに脳を集めます。</li>
	</ol></li>
	<li>脳の解離、混合グリア培養の播種と維持 注意: バイオセーフティキャビネットで後続のすべての手順を実行します。<ol><li>脳を滅菌済みの使い捨てメスの刃で約1mm2 個に刻みます。細かく刻んだ脳を新しい滅菌50mLチューブに慎重に移します。</li>
		<li>みじん切りにした脳に最終濃度0.25%のトリプシンを加え、組織を37°Cの水浴で20分間インキュベートします。2〜3分ごとに、チューブを静かに反転させて溶液を混合し、組織の解離を助けます。</li>
		<li>5% CO2 インキュベーターから、5 mLのPOが入ったT-75フラスコをバイオセーフティキャビネットに移します。POを廃棄し、滅菌済みの1xリン酸緩衝液(PBS)でフラスコを3回すすぎます。過剰なPOは細胞に有毒であるため、フラスコを十分にすすいでください。</li>
		<li>消化した組織を37°Cのウォーターバスからバイオセーフティキャビネットに移します。5 mLの完全グリア培養培地を加えて、トリプシンを中和します。10 mLピペットを使用して組織懸濁液を穏やかに混合します。</li>
		<li>滅菌済みの70 μmナイロンメッシュセルストレーナーを滅菌済みの50 mLコニカルチューブに置き、約5 mLのL-15を注いでメッシュを濡らします。細胞懸濁液を細胞ストレーナーを通して慎重にデカントします。滅菌済みの1 mLシリンジからプランジャーを取り出し、プランジャーを使用して組織をメッシュに粉砕して組織の塊を取り除き、均質化された細胞懸濁液を生成します。</li>
		<li>定期的に、約5 mLのLeibovitzのL-15培地を70 μmのナイロンメッシュに注ぎ、1 mLのシリンジプランジャーでメッシュ上の組織を粉砕し続けます。メッシュ上に目に見える組織がほとんどまたはまったく残っていない場合は、メッシュを廃棄し、細胞懸濁液を脇に置きます。</li>
		<li>細胞懸濁液を静かにピペッティングして混合します。各フラスコに、1〜2個の脳を含む等量の細胞懸濁液とグリア培養培地を最終容量15mLまで加えます。</li>
		<li>細胞を37°Cで5%CO2 インキュベーターで一晩インキュベートします。翌日、フラスコを滅菌済みの1x PBSで2回洗浄し、付着していない細胞や破片を取り除きます。</li>
		<li>15 mLの新鮮完全グリア培養培地を培養物に加え、5% CO2 インキュベーターで37°Cでインキュベートします。3日後、培地の半分を、40 ng/mLのマクロファージコロニー刺激因子(MCSF)を添加した10 mLの新鮮なグリア培養培地で交換します。 注:その後、培地の半分を10 mLの新鮮なグリア培養培地に交換し、3日ごとに40 ng / mLのMCSFを補充します。ミクログリアが収穫される前に、培養物は8〜10日間維持されます。</li>
	</ol></li>
</ol>2. 初代ニューロン培養
<ol><li>準備<ol><li>B-27とB-27からのサプリメントとニューロン培養システムの解凍。B-27と神経細胞培養システム、1x Hank's Balanced Salt Solution(HBSS)、および37°Cの水浴中で加熱不活性化されたウシ胎児血清(FBS)の温温性ニューロベースルプラス培地。</li>
		<li>T-25フラスコに5 mLの10 μg/mL POをコーティングし、フラスコを37°Cで少なくとも1時間インキュベートします。 解剖用の器具と消耗品を準備します。 注:このコーティングステップは、T-25フラスコへの細胞接着を促進します。</li>
	</ol></li>
	<li>E16-E18マウス胚からの脳分離 注:すべての解剖ツールを滅菌し、試薬の無菌性を維持します。全体を通して無菌技術の遵守を確保します。<ol><li>解剖を開始する前に、70%エタノールまたは解剖が行われる場所でカウンタートップにスプレーします。解剖顕微鏡をセットし、ペトリ皿を顕微鏡の下に置きます。20mLの1x HBSSをペトリ皿に注ぎます。顕微鏡を使用していないときは、汚染を減らすために、ペトリ皿の蓋を閉めたままにしてください。</li>
		<li>ペーパータオルを数層に重ね、ペーパータオルに70%エタノールを十分にスプレーします。解剖ツール(スプリングハサミ、マイクロ鉗子、組織鉗子)に70%エタノールを十分に噴霧し、ペーパータオルの上にツールを置いて準備します。</li>
		<li>妊娠 16 日から 18 日の間にイソフルランを使用して妊娠中のマウスに麻酔をかけ、子宮頸部脱臼によってマウスを安楽死させます (施設で承認されたプロトコルに従います)。</li>
		<li>70%エタノールに浸したペーパータオルの上にマウスを仰向けに置きます。腹部を70%エタノールで消毒します。組織鉗子で下腹部の皮膚を持ち上げ、この点から解剖ハサミで胸郭下部までV字切開を行います。</li>
		<li>胚を含む子宮角を組織鉗子でつかみ、腹腔から胚をそっと取り出します。胚を含む子宮角を70%エタノールで簡単に消毒します。</li>
		<li>一度に1つの胚をその個々の嚢から解剖します。スプリングハサミを使用して、首の後ろから鼻に向かって、頭蓋骨の上部に正中線切開を作成します。次に、頭蓋骨を切開部位から持ち上げて脳を露出させます。組織鉗子で脳をやさしくすくい取り、15mLの1x HBSSが入った10cmのシャーレに脳を移します。</li>
		<li>解剖顕微鏡下で、一対のマイクロ鉗子で脳幹と脳皮質の両側の髄膜を慎重に取り除きます。脳皮質を10mLの1x HBSSが入った50mLの円錐管に移し、氷の上に置きます。</li>
	</ol></li>
	<li>細胞培養における脳の解離と皮質ニューロンの播種 注意: バイオセーフティキャビネットで後続のすべての手順を実行します。<ol><li>50mLの円錐形チューブに脳を約1mm2 個にミンチにし、滅菌済みの使い捨てメスの刃で入れます。みじん切りにした脳を新しい滅菌50mLコニカルチューブに移します。</li>
		<li>トリプシンを最終濃度0.25%でチューブに加えます。チューブを35〜38°Cの温水浴に15分間浸し、チューブを穏やかに混合して2〜3分ごとに組織を均質化します。</li>
		<li>湯煎からチューブを取り出します。組織懸濁液を静かに上下にピペットで動かして細胞をさらに解離し、均質化した懸濁液に0.5 mLの熱不活化FBSを加えてトリプシン活性を中和します。神経細胞への毒性を最小限に抑えるために、気泡を避けてください。</li>
		<li>滅菌済みの70 μmナイロンメッシュセルストレーナーを滅菌済みの50 mLコニカルチューブに置き、約5 mLの神経基礎培地を加えてメッシュを濡らします。70 μmナイロンメッシュセルストレーナーで細胞懸濁液をろ過します。1 mLシリンジプランジャーを使用して、組織を細胞ストレーナーに優しく粉砕します。約5mLの1x HBSSを定期的に注ぎながら、粉砕を続けて細胞ストレーナーを洗浄します。</li>
		<li>コニカルチューブを300 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 この間に、B-27 plusサプリメントをニューロベースルプラス培地で最終濃度の1倍に希釈して、完全なニューロベース培地として使用します。</li>
		<li>POをT-25フラスコに捨て、フラスコを5mLの1x PBSで3回すすいでください。</li>
		<li>慎重にデカントして上清を取り除き、2〜3 mLの完全神経基礎培地を穏やかにピペッティングして細胞ペレットを再懸濁します。血球計算盤とトリパンブルーで細胞濃度と総細胞数を決定します。胚あたり最大1.0 x 107 個の細胞が期待されます。</li>
		<li>POコーティングされたT-25フラスコの細胞に、フラスコあたり約2.0 x 107 個の細胞を5 mLの完全神経基礎培地に播種します。細胞培養物を5% CO2 インキュベーターで37°Cでインキュベートします。</li>
		<li>培養フラスコから2.5 mLの培地を新しく作成した完全な神経基礎培地に交換することにより、2〜3日ごとに半培地交換を行います。</li>
	</ol></li>
</ol>3. 初代神経細胞とミクログリアの共培養
注:後続のすべての手順は、滅菌済みのバイオセーフティキャビネットで行う必要があります。
<ol><li>96ウェルプレートへのニューロンの播種<ol><li>10 μg/mL POをウェルあたり100 μL加え、フラスコを37°Cで少なくとも1時間インキュベートして、ウェルをPOでコーティングします。細胞を播種する前にプレートを1x PBSで3回洗浄し、最後の洗浄後に残った液体を吸引します。</li>
		<li>T-25フラスコで増殖したニューロンは、培養で2〜5日後に共培養のために回収されます。培地を5 mLの1x Versene溶液(0.25%トリプシンおよび1 mg/mL DNase Iを含む溶液)と交換して、フラスコからニューロンを分離します。フラスコをインキュベーター内に5〜6分間置いて消化し、細胞の剥離を助けるために2〜3分ごとにフラスコを静かに回転させます。</li>
		<li>インキュベーターからフラスコを取り出し、顕微鏡で細胞が剥がれているかどうかを確認します。0.5 mLの熱不活化FBSを加えて、トリプシンとDNase Iを中和し、細胞を15 mLのコニカルチューブに移します。フラスコを5mLの完全神経基礎培地で一度洗浄し、収集したニューロンを最大化します。すべての細胞を同じ15 mLコニカルチューブに集めます。</li>
		<li>細胞懸濁液を300 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 上清を捨て、細胞ペレットを2〜3mLの完全神経基礎培地に穏やかに再懸濁します。</li>
		<li>血球計算盤で細胞をカウントし、完全な神経基礎培地を添加して、最終濃度7.5 x 105 ニューロン/mLを達成します。POコーティングされた96ウェルプレートの各ウェルに100μLの細胞懸濁液を播種して、7.5 x 104 ニューロン/ウェルを得ます。フラスコあたり500万〜600万個のニューロンの収量が期待されます。</li>
		<li>ニューロンを96ウェルプレートで一晩インキュベートします。翌日、100 μLの完全ニューロベース培地を各ウェルに加えます。 注:ニューロンが適切な神経突起プロセスの成長を示すと(96ウェルプレートに播種した後の3〜4日目頃)、ニューロンはミクログリアとの共培養の準備が整います。</li>
	</ol></li>
	<li>分離とミクログリア-ニューロン共培養<ol><li>混合グリア培養の8〜10日の間に、10mLピペットで各フラスコ内のT-75フラスコをグリア培養培地で優しく洗浄してミクログリアを収集し、細胞と培地を滅菌済みの50mLコニカルチューブに移します。フラスコを10 mLの新鮮なグリア培養培地で再度洗浄し、フラスコから追加のミクログリアを分離し、培地を収集します。フラスコあたり7.5 x 105 マイクログリアの収量が期待されます。</li>
		<li>20 ng/mL MCSFを添加した20 mLの新鮮なグリア培養培地を各フラスコに加えます。ミクログリアは、混合グリア培養が維持されていれば、さらに1回または2回収穫することができます。</li>
		<li>セルコレクションを300 x g で4°Cで5分間遠心分離します。 上清を慎重に取り除き、ペレットを2 mLの完全神経基礎培地に静かに再懸濁します。</li>
		<li>血球計算盤とトリパンブルーで細胞を数えます。完全な神経基礎培地を最終濃度2.5 x 105 細胞/mLまで添加します。</li>
		<li>96ウェルニューロン培養プレートから、100 μLの神経基礎培地を取り出し、100 μLの2.5 x 105細胞/mL細胞懸濁液を添加して、7.5 x 104ニューロンのウェルあたり2.5 x 104マイクログリアを播種します。培養物を5% CO2インキュベーターで37°Cで一晩インキュベートし、ミクログリアが沈殿するまで待ちます。共培養は、現在、下流の実験に使用できます。</li>
	</ol></li>
</ol>

 CNS相互作用研究のための一次ミクログリアとニューロン共培養プロトコール

著者は、利益相反を宣言しません。

この記事では、マウスの初代ニューロンと初代ミクログリアを単離および培養するためのプロトコルについて説明し、その後、ミクログリアとニューロンの相互作用が細胞の健康と機能をどのように制御するかを研究するために使用できるミクログリア-ニューロン共培養を確立するために使用されます。この比較的単純でアクセス可能なアプローチは、CNSにおけるミクログリアニューロン相互作用のメカニズムと機能的結果に関する重要な洞察を提供することができます。
最適な共培養を実現するためには、このプロトコルのいくつかの重要な側面に特別な注意が必要です。脳の隔離中(ステップ1.2.6および2.2.7)、胚脳と出生後脳の両方の表面に付着した髄膜は、組織を収集する前に完全に除去する必要があります。他のneurogliaのプロトコルのように、髄膜の不完全な取り外しは細胞培養が内皮細胞または血液由来の細胞40,41,42と汚染されるようになるかもしれない。さらに、初代ニューロンを培養する場合(ステップ2.3.7および3.1.4)、ニューロンをフラスコまたは96ウェルプレートに播種する前に、シングルセル懸濁液を生成し、細胞凝集を回避することが重要です。ニューロンの凝集体は培養中に適切に接着せず、過剰なニューロンのストレスと細胞死につながります。さらに、ニューロンをT-25フラスコから解離させようとするときにトリプシンでニューロンを長時間処理すると、望ましくない細胞死を引き起こす可能性があります(ステップ3.1.2)。これを軽減するために、ニューロンは、胚性脳からの解離後に、所望の細胞密度で96ウェルプレートに直接播種することができる(ステップ2.3.7)。さらに、このプロトコルでは、神経炎症中にCNS微小環境に存在する可能性のあるミクログリアの増加量を部分的に表すために、3:1のニューロン:ミクログリア比が選択されました。あるいは、共培養中の細胞の比率は、実験の必要性ごとに調整してもよい。さらに、共培養ニューロンに選択された時点は、より成熟したニューロンの状態を評価することを目指す場合、延長される可能性があります。
特に、T-25フラスコから96ウェルプレートにニューロンを解離する場合、トリプシンを単独で使用すると、96ウェルプレートで単層培養の代わりに不完全な解離が生じ、細胞塊が形成される可能性があります(図2D)。この問題に対処するために、1 mg/mL DNase Iを含む1x Versene溶液を使用して、ニューロンをT-25フラスコから解離させることができます。ニューロンの凝集と生存率の低下に寄与する他の要因には、細胞懸濁液の不完全なトリチュレーション、熱不活化FBSによるトリプシンの不適切な中和、過度の遠心分離、または細胞ペレット形成の長期化が含まれます。したがって、適切な組織解離と単一細胞懸濁液の生成を確保することは、健康なミクログリアとニューロンの共培養を確立するために重要です。
このプロトコルは、ミクログリアとニューロンの相互作用をin vitroで再現し、CNSにおけるそれらの相互作用の機能的重要性をよりよく理解することを目的としています。他のタイプの共培養システムが開発されている一方で、例えば、2つの細胞集団の独立した治療を可能にするために、異なる表面で個々の細胞集団を培養するなど43,44、この混合培養システムは、ミクログリアとニューロンの直接的かつ密接な接触を可能にする。さらに、3日ごとに半量の培地交換を通じて適切に維持されると、この混合培養システムは12日間(図3F)から潜在的に3週間まで健康を維持でき、ニューロン-ミクログリア相互作用の長期研究を可能にする45。
共培養システムが比較的簡便であることはアクセシビリティにとって有利ですが、このアプローチの主な制限は、二次元細胞培養がCNS組織環境を完全に表現していないことです。実際、ミクログリア、ニューロン、およびアストロサイトの三培養は、ミクログリアまたはアストロサイト-ニューロン共培養よりも確実にin vivo神経炎症反応を模倣することが示されています46,47。さらに、ミクログリアやアストロサイトやオリゴデンドロサイトなどの他のグリア細胞を用いた脳オルガノイド系の最近の開発は、CNS48の3次元(3D)組織構造と相互作用の研究により適しています。同様に、ニューロン、ミクログリア、およびアストロサイトを含むヒト3Dトリカルチャーシステムは、アルツハイマー病の状態をモデル化するのに有効であることが示されています49。他のヒトミクログリア-ニューロン共培養は、神経変性疾患研究に生理学的により関連性がある可能性があります。例えば、ヒト人工多能性幹細胞50に由来するミクログリアと運動ニューロンの共培養は、筋萎縮性側索硬化症51などの疾患の研究に有用であり得る。それにもかかわらず、マウスから初代ニューロンとミクログリアを生成するための相対的な存在量と低コストを考えると、96ウェルプレートでのミクログリア-ニューロン共培養を評価することは、ミクログリア-ニューロン相互作用のメカニズムと機能的意味を研究するためのハイスループットアプローチになる可能性があります。ダウンストリームアッセイには、ライブセルイメージングを使用して細胞の機能変化をリアルタイムで決定する方法、RNAシーケンシングを使用して細胞の転写変化を決定する方法、免疫蛍光顕微鏡法を使用して細胞表現型の変化を決定する方法、質量分析を使用して細胞およびプロテオミクスの変化を決定する方法、または酵素結合免疫吸着アッセイおよびウェスタンブロットを使用して共培養上清に分泌されるタンパク質を測定する方法などがあります。
ミクログリアは中枢神経系の健康と疾患の重要なメディエーターであるため、この共培養は、疾患関連の分子や化合物がミクログリアとニューロンの双方向コミュニケーションに及ぼす影響を調べるためにも使用できます。MSの文脈では、活性化されたミクログリアが破壊的な役割を果たす可能性があり、病理の悪化に寄与する可能性があります52,53。例えば、炎症誘発性サイトカインや活性酸素種を分泌し、アストロサイトの活性化を促進することもある45。このプロトコルは、共培養中のミクログリアをMSで上昇している炎症性サイトカインと治療し、ニューロンの健康の結果を評価することにより、ミクログリアの有害な役割をさらに調査するのに役立つ可能性があります。あるいは、このミクログリア-ニューロン共培養は、MS54で発見された酸化生成物である酸化ホスファチジルコリンに応答してニューロンに対するミクログリアの保護効果を示すために使用されています。さらに、ニューロンのアポトーシスは、ミクログリアの生存と食作用を促進することにより、発生中のミクログリア遺伝子発現をリモデリングします55。したがって、このプロトコルは、ニューロン死がミクログリアの表現型と機能に与える影響を判断するのにも役立つ可能性があります。
要約すると、このプロトコルは、初代マウス由来ニューロンとミクログリアのin vitroでの作製と共培養について説明しています。96ウェルプレートにセットされたミクログリア-ニューロン共培養は、MSを含む中枢神経系の健康と疾患におけるニューロンとのミクログリア相互作用のメカニズムと機能を調べるためのハイスループットアプローチとなります。

ミクログリアは、中枢神経系(CNS)における免疫サーベイランスと恒常性を促進する組織常在性マクロファージです1,2,3。それらは、胚発生中に脳にコロニーを形成する卵黄嚢赤骨髄前駆細胞に由来し、4,5,6、増殖とアポトーシス7を含む自己複製を通じて生物の寿命を通じて維持されます。定常状態では、休止中のミクログリアは形態を分岐させ、組織監視に従事しています8,9,10。
ミクログリアは多数の細胞表面受容体を発現するため、中枢神経系の変化に迅速に反応し11,12、感染症や組織損傷の場合12,13,14、多発性硬化症(MS)などの神経変性疾患9,15の際に炎症反応を促進することができます16,17.ミクログリアはまた、さまざまな神経伝達物質や神経ペプチド18,19,20に対する受容体を発現しており、これはそれらがニューロン活動に応答し調節している可能性を示唆しています21,22。実際、ミクログリアとニューロンは、膜タンパク質によって媒介される直接的な相互作用や、可溶性因子や中間細胞を介した間接的な相互作用など、さまざまな形態の双方向コミュニケーション8,23で相互作用します23,24。
例えば、ニューロンによって分泌される種々の神経伝達物質は、ミクログリアの神経保護活性または炎症活性を調節することができる25,26,27。さらに、ニューロンとミクログリアとの間の直接的な相互作用は、ミクログリアを恒常性状態に維持するのに役立ちます28。逆に、ミクログリアとニューロンとの直接的な相互作用は、ニューロン回路を形成し29、ニューロンシグナル伝達30,31,32に影響を与えることができる。これらの相互作用の破綻がニューロン30およびミクログリア反応性33,34の過興奮性を誘発するため、調節不全のミクログリア-ニューロン相互作用は神経疾患の寄与因子として関与している33,35。実際、精神病23,26および神経変性疾患は、機能不全のミクログリア-ニューロン相互作用33を示すと説明されている。これらの観察結果は、中枢神経系におけるミクログリアとニューロンのコミュニケーションの重要性を強調していますが、これらの相互作用が健康や疾患におけるミクログリアとニューロンの機能をどのように制御するかについての具体的なメカニズムは比較的わかっていません。
中枢神経系のような複雑な環境では、複数の環境要因がミクログリアとニューロンの相互作用に影響を与える可能性があり、 そのためにin vivoでの一過性の細胞相互作用を研究する能力が制限されます。ここでは、ミクログリアとニューロン間の直接的な細胞相互作用を研究するために使用できる 、in vitro ミクログリア-ニューロン共培養システムを紹介します。このプロトコルは、出生後0〜2日目と胚性マウス16〜18日目の間に、それぞれ新生児マウスの皮質からの初代ミクログリアとニューロンの生成を説明しています。その後、ニューロンとミクログリアを96ウェルプレートで共培養し、ダウンストリームのハイスループット実験を行います。私たちは以前にこのアプローチを使用して、ミクログリアの食作用が酸化ホスファチジルコリンを介した細胞死からニューロンを保護することを実証しました37、この方法が神経変性およびMSの文脈におけるミクログリアの役割を理解するのに役立つことを示唆しています。同様に、ミクログリア-ニューロン共培養は、ウイルス感染38 やニューロンの損傷および修復39などの他の状況におけるミクログリア-ニューロンクロストークの影響を調査するためにも有用であり得る。全体として、 in vitro ミクログリア-ニューロン共培養システムにより、研究者は操作可能で制御された環境でミクログリア-ニューロンの相互作用を研究することができ、 これはin vivo モデルを補完します。

<table><tbody><tr><td>10cmシャーレ&nbsp;</td><td>フィッシャー&nbsp;</td><td>07-202-011</td><td>滅菌</td></tr><tr><td>1x Versene</td><td>Gibco</td><td>15040-066</td><td></td></tr><tr><td>B-27 Plus Neuronal Culture System&nbsp;</td><td>ギブコ&nbsp;</td><td></td><td></td>A3653401</tr><tr><td>解剖顕微鏡</td><td>VWR</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNase I</td><td>Roche</td><td>11284932001</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)</td><td>Gibco</td><td>11960-044</td><td></td></tr><tr><td>ウシ胎児血清&nbsp;</td><td>ThermoFisher Sci</td><td>12483-020</td><td></td></tr><tr><td>HBSS (10x)</td><td>Gibco</td><td>14065-056</td><td></td></tr><tr><td>血球計算盤</td><td>Hausser Scientific</td><td>1475</td><td></td></tr><tr><td>HEPES&nbsp;</td><td>サーモフィッシャー サイ</td><td>15630080</td><td></td></tr><tr><td>リーボビッツs L-15 ミディアム (1個入り)</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック&nbsp;</td><td></td><td></td>21083027</tr><tr><td>マクロファージコロニー刺激因子&nbsp;</td><td>Peprotech</td><td>315-02</td><td></td></tr><tr><td>マイクロ鉗子</td><td>RWD</td><td>F11020-11</td><td>オートクレーブ/滅菌</td></tr><tr><td>非必須アミノ酸</td><td>Cytiva</td><td>SH3023801</td><td></td></tr><tr><td>PBS (10x)</td><td>ThermoFisher Sci</td><td>AM9625</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin Streptomycin Glutamine (100x)</td><td>Gibco</td><td>103780-16</td><td></td></tr><tr><td>Poly-L-ornithine 臭化水素酸塩&nbsp;</td><td>シグマ</td><td>P3655-100MG</td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム (100 mM)</td><td>Gibco</td><td>11360-070</td><td></td></tr><tr><td>スプリングハサミ</td><td>RWD</td><td>S11008-42</td><td>オートクレーブ/滅菌</td></tr><tr><td>外科用ブレード</td><td>フェザー</td><td>08-916-5D</td><td>滅菌</td></tr><tr><td>T-25 フラスコ</td><td>フィッシャー</td><td>10-126-9</td><td></td></tr><tr><td>T-75 フラスコ&nbsp;</td><td>フィ</td><td>ッシャー13-680-65</td><td></td></tr><tr><td>組織鉗子コ</td><td>ッドマン</td><td>30-4218</td><td>オートクレーブ/滅菌</td></tr><tr><td>組織ハサミ</td><td></td>RWDs12052-10<td></td><td>オートクレーブ/滅菌</td></tr><tr><td>トリパンブルー&nbsp;</td><td>サーモフィッシャーサイエンス&nbsp;</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>トリプシン(2.5%)</td><td>ThermoFisher Sci</td><td>15090046</td><td></td></tr><tr><td>広視野免疫蛍光顕微鏡</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

マウス初代ミクログリアと皮質ニューロンの作製と共培養

Generating and Co-culturing Murine Primary Microglia and Cortical Neurons

ミクログリアは、中枢神経系(CNS)の組織に常在するマクロファージであり、ニューロンの健康とCNSの恒常性をサポートする多くの機能を果たしています。彼らは、CNS疾患の活動性に関連する免疫細胞の主要な集団であり、多発性硬化症(MS)などの慢性神経変性疾患における神経損傷に寄与する可能性のある反応性表現型を採用しています。ミクログリアが健康および疾患中のニューロン機能と生存を制御する明確なメカニズムは、ミクログリア、ニューロン、およびその他のCNS環境因子との間の複雑な in vivo 相互作用を解決する上での課題のために、依然として限られています。したがって、ミクログリアとニューロンを共培養する in vitro アプローチは、ミクログリアとニューロンの相互作用を研究するための貴重なツールであり続けています。ここでは、マウスから初代ミクログリアとニューロンを作製し、共培養するためのプロトコールを紹介します。具体的には、ミクログリアは、出生後0〜2日の間に新生児マウス由来の脳ホモジネートから確立された混合グリア培養物から in vitro で9〜10日後に単離されました。ニューロン細胞は、胚の16-18日の間にマウス胚の脳皮質から単離された。 in vitroで4〜5日後、ニューロン細胞を96ウェルプレートに播種し、続いてミクログリアを添加して共培養を形成しました。このプロトコルでは、両方の細胞タイプが共培養を確立するために実験的成熟に達する必要があるため、慎重なタイミングが重要です。全体として、この共培養はミクログリアとニューロンの相互作用の研究に有用であり、免疫蛍光顕微鏡法、ライブイメージング、RNAおよびタンパク質アッセイなど、複数の読み出しを提供できます。

ミクログリアの混合グリア培養の主要なステップを示すフローチャートを 図1Aに示します。全体として、1日目にはスパースな細胞と過剰な細胞破片が予想されます(図1B)。4日目までに、特に接着性アストロサイトの生成とともに、細胞数の増加が観察されるはずです(図1C)。アストロサイトの上には、いくつかのミクログリアが観察されるか、培地に浮かぶ小さな丸い細胞として観察されます。8日目までに、アストログレッテのコンフルエント層が細胞の接着層を形成しますが、ミクログリアはアストロサイトに半付着しているか、培地に浮遊している丸くて明るい細胞として現れます(図1D)。ミクログリアの密度が8日目までに低い場合は、収穫前に培養物をさらに数日間インキュベートすることができます。
ニューロン培養の主要なステップを示すフローチャートを 図2Aに示します。健康な培養物では、ニューロンは in vitro で1〜3日後に神経突起に付着して形成されます(図2B)。同様に、ニューロンを96ウェルプレートに播種すると、最初は丸く見えますが、3日目までにニューロンは接着し、隣接するニューロンと結合する神経突起プロセスを形成するはずです(図2C)。逆に、不健康なニューロン培養物には細胞の凝集物や細胞の破片が含まれ、これは細胞の解離不全やニューロンの誤った取り扱いに起因する可能性があります(図2D)。
ミクログリア-ニューロン共培養プロトコルの主要なステップを示すフローチャートを図3Aに示します。2.5 x 104ミクログリアを7.5 x 104ニューロンに加えると、ニューロンと神経突起の上部または間に丸くて大きなミクログリアが現れるはずです(図3B)。ミクログリア-ニューロン共培養をさらに可視化するために、ミクログリアおよびニューロン単独または共培養中に、免疫蛍光顕微鏡法のためにイオン化カルシウム結合アダプター分子1(IBA-1、赤)およびチューブリンβIII(TUJ1、緑)抗体37で標識した(図3C-F)。
<img alt="細胞培養プロセス:マウス皮質からの単一細胞懸濁液;図に示す手順。顕微鏡画像。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67078/67078fig01.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 1"> 図1:初代ミクログリア培養の概要 (A)混合グリア培養の生成における主要なステップのフローチャート。(B-D)1日目(B)、4日目(C)、および8日目(D)の混合グリア培養の代表的な10倍明視野顕微鏡画像。スケールバー:100μmこの<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67078/67078fig01large.jpg" target="_blank">図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="神経培養プロセス図;T25,96ウェルプレートにおけるマウスはい細胞の調製とイメージング。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67078/67078fig02.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 2"> 図2:一次ニューロン培養の概要 (A)ニューロン生成の主要なステップのフローチャート。(B)T-25フラスコで培養されたニューロンを示す代表的な10倍明視野顕微鏡画像。(C)代表的な96ウェルプレートで培養したニューロンの10倍明視野顕微鏡。(D)96ウェルプレート内の不健康なニューロンクラスターの代表的な10倍明視野顕微鏡。スケールバー:100μmこの <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67078/67078fig02large.jpg" target="_blank">図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="ミクログリア分離ワークフローと顕微鏡分析。免疫蛍光画像は細胞マーカーを示します。" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67078/67078fig03.jpg" data-altupdatedat="1754922859000" data-alt="Figure 3"> 図3:ミクログリア-ニューロン共培養の概要 (A)ミクログリア-ニューロン共培養の主要ステップのフローチャート。(B)96ウェルプレート中のミクログリア-ニューロン共培養の代表的な10倍明視野顕微鏡画像。スケールバー:100μm.(C,D) ニューロンのみ(C)、ミクログリアのみ(D)、2日目のニューロンとミクログリアの共培養(E)、または96ウェルプレート内の12日間のニューロンとミクログリアの共培養(F)の代表的な免疫蛍光顕微鏡画像。ミクログリアとニューロンは、それぞれIBA-1(赤)とチューブリンβIII(緑)で標識されています。核はDAPI(青)で染色されています。免疫蛍光画像は、25倍、0.8 NAの水浸対物レンズと広視野蛍光顕微鏡を使用して取得しました。スケールバー:50μmこの <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67078/67078fig03large.jpg" target="_blank">図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>

このプロトコルは、胚の日15-16でマウスの胚から単離された初代ニューロン細胞から確立されたミクログリア-ニューロン共培養と、出生後1-2日に新生児マウスの脳から生成された初代ミクログリアを説明しています。

Microglia are tissue-resident macrophages of the central nervous system (CNS), performing numerous functions that support neuronal health and CNS ...

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