Name: SV40ベースのヒトエピソーム内での構造性DNAリピートを介した複製の電気泳動解析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-09-13T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 22 s
Description: 学ぼう、二次元ゲル電気泳動を用いてヒト細胞内の病的DNAリピートによる複製フォーク停滞を解析する方法。遺伝的不安定性のメカニズム解明に有用です。

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注:哺乳類細胞における2DGE分析のために設計されたプラスミドは、構造が起こりやすいリピートの数kb上流にSV40の複製起点を含んでいる必要があります(図2)。リード合成と遅延合成は、リピートをプラスミドにクローニングする原点に対する向きを選択する際に留意する必要があります。
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67229/67229fig02.jpg"> 図2:2DGE分析のためのリピート含有プラスミドの消化。 構造が不安定なリピートは、右に移動するレプリケーションフォークから数kb下流に描かれています。独自のカッター 1 と 2 による分解では、分解されたフラグメントの中間点を超えるシーケンスが与えられ、リピート シーケンスが Y アークの下降アームに配置されます。略語:2DGE = 二次元中性/中性ゲル電気泳動。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67229/67229fig02large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
1. 哺乳動物細胞へのプラスミドトランスフェクション
<ol><li>トランスフェクションの前に、10 cmの組織培養プレートで600,000個のHEK293T細胞を播種します。細胞を37°Cで一晩回復させます。 注:この実験には多くの細胞株を使用できますが、最適な結果を得るにはSV40タグを含む細胞が推奨されます。注意:HEK293T細胞はBSL-2と見なされ、すべての培養作業は、適切な無菌技術と適切なPPEを使用してバイオセーフティキャビネットで実施する必要があります。</li>
	<li>細胞のコンフルエンシーが60%に達したら、メーカーのプロトコールに従って適切なトランスフェクション試薬を使用して、8 μgのリピート含有プラスミドDNAを播種細胞にトランスフェクションします。</li>
	<li>この時点で中間体を単離していない場合は、古い培地を吸引し、24時間後に10 mLの新鮮な培地と交換します。</li>
	<li>トランスフェクションの24〜48時間後に細胞の収集を開始します。<ol><li>培地を吸引し、10 mLのリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で慎重に洗浄します。0.5 mLのトリプシンを使用して細胞を剥離して収集し、340 × g で4分間スピンダウンします。</li>
		<li>上清を吸引し、細胞ペレットをPBSで洗浄します。再度340 × g で4分間回転させ、上清を吸引します。 注:ここでは、細胞ペレットを-80°Cで凍結することにより、実験を一時停止することができます。 トランスフェクションの48時間後に複製中間体を単離する最良の分解能が見つかりました。しかし、24時間では実行可能な結果が得られています。</li>
	</ol></li>
</ol>2. レプリケーション中間体の単離
<ol><li>50 mLコニカルチューブ内の1.5 mLの改変Hirt溶解バッファー[10 mM tris-HCl(pH 7.5)、10 mMエチレンジアミン四酢酸(EDTA)]に細胞を再懸濁し、細胞溶解を開始します。<ol><li>ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)を最終濃度0.6%(ストック2%SDSの約650μL)まで添加し、プロテイナーゼKを最終濃度100μg/mL(プロテイナーゼKストック20mg/mL約10μL)まで添加してヌクレアーゼを除去します。</li>
		<li>ピペッティングで均質になるまで穏やかに混合し、混合物を37°Cで少なくとも90分間インキュベートします。</li>
	</ol></li>
	<li>NaCl濃度を1 M(ストック5 M NaClの約540 μL)に増やし、均一になるまで穏やかに混合します。4°Cで一晩(18-24時間)インキュベートし、塩析により細胞破片、RNA、およびタンパク質が沈殿するのを待ちます。 注:混合物は非常に粘性が高いため、よく混合しながら注意して忍耐強くください。</li>
	<li>翌日、細胞の破片、RNA、およびタンパク質からDNAを分離します。<ol><li>混合物を29,500 × g で45分間、4°Cで遠心分離します。</li>
		<li>DNAを含む上清を移し、フェノール:クロロホルム:イソアミルアルコール25:24:1(v / v)を1容量加え、均一になるまで短時間混合します。 注意:フェノール:クロロホルム:イソアミルアルコールは危険物であり、化学ドラフト内で適切なPPEで取り扱う必要があります。</li>
		<li>再び15,000 × g で室温で5分間遠心分離します。水性層を新しい円錐管に移します。</li>
	</ol></li>
	<li>単離されたDNAを沈殿させて洗浄します。<ol><li>1容量の純粋なイソプロパノールを加え、室温で少なくとも5分間インキュベートします。DNAを15,000 × g で4°Cで30分間スピンダウンします。</li>
		<li>上清をデカントし、ペレットを冷たい70%エタノールで洗って余分な塩分を取り除きます。</li>
		<li>もう一度 15,000 × g で 4 °C で 30 分間遠心し、風乾させてから、ペレットを Tris-EDTA (TE) バッファー (10 mM Tris-HCl、1 mM EDTA) に穏やかに再懸濁します。 注:実験はここで一時停止でき、サンプルは-20°Cで凍結できます。ただし、凍結融解サイクルはDNA複製中間体の品質を低下させる可能性があるため、避ける必要があります。</li>
	</ol></li>
</ol>3. サンプル調製と2次元ゲル電気泳動
<ol><li>プラスミド複製の単離された中間体を消化します。<ol><li>適切な制限酵素を100ユニットをサンプルに加えてプラスミドDNAを消化し、特に反復を含む配列を線状フラグメントの起源-遠位半分に配置します(図2)。さらに、DpnIを添加してメチル化DNAを切断し、培養ヒト細胞で完全に複製されなかったプラスミドDNAを除去します。 注:最良の結果を得るためには、制限酵素は、Yアークの下降アーム上に構造が進行しやすい配列を配置する3〜5 kbのフラグメントを生成するユニークなカッターである必要があります。</li>
		<li>サンプルを37°Cで6〜10時間インキュベートして、完全なプラスミド分解を可能にします。</li>
		<li>2.5容量の冷清純エタノールでDNAを沈殿させ、-20°Cで一晩インキュベートするか、または1容量のイソプロパノールを添加して室温で5分間インキュベートします。</li>
		<li>分解および沈殿したサンプルを 15,000 × g で 4 °C で 30 分間遠心分離します。</li>
		<li>上清をデカンタントし、サンプルを冷たい70%エタノールで洗浄します。再度、15,000 × g で4°Cで30分間遠心します。</li>
		<li>上清をデカンタントし、10分間風乾させてから、サンプルを15 μLのTEバッファーに再懸濁します。</li>
	</ol></li>
	<li>1x トリス-ホウ酸-EDTA(TBE)(89 mMトリス塩基、89 mMホウ酸、2 mM EDTA)で0.4-0.5%の1次元アガロースゲルを調製します。溶液が少なくとも1時間固化するのを待ちます。</li>
	<li>サンプルを 1 次元に読み込み始めます。<ol><li>はしごをゲルの左端に対して最初の3cm以内にロードします。次に、準備したサンプル全体をロードし、各ペアの間隔を3cm確保します。</li>
		<li>ゲルを1x TBEで0.85 V/cmで19-24時間泳動し、中間体をそのサイズに対して分離します。DNAに損傷を与える可能性のある光からサンプルを保護するために、チャンバーが覆われていることを確認してください。</li>
	</ol></li>
	<li>翌日、ゲルをバッファーから取り出し、定規を使用して消化された線状フラグメントの位置を推定します。<ol><li>はしごを含むゲルの最初の3 cmを切除し、0.3 μg/mLの臭化エチジウムを含む1x TBEでゲルセグメントを10〜15分間染色します。ゲルドキュメンテーションシステムを使用してラダーを視覚化します。</li>
		<li>推定位置に 1.3 cm を加算すると、値 a が得られます。次に、値 aから7.5cmを引くと、値 bが得られます。定規を1次元のゲルに合わせ、 値a と bで水平にカットします。次に、各サンプル用に確保された3cmのスペースを垂直に切り取ります。視覚的な回路図については、 図3 を参照してください。</li>
		<li>新しいキャスティングトレイで、セグメントを時計回りに回転させ、サンプルウェルの位置に置きます(図3)。</li>
	</ol></li>
	<li>2次元アガロースゲルを1x TBE中、0.3 μg/mLのエチジウムブロマイド溶液中で1〜1.3%の濃度で調製します。<ol><li>約55°Cに冷却した後、回転した1次元セグメントに2次元ゲルを注ぎ、少なくとも1時間固化させます。</li>
		<li>2 次元目を 1x TBE のチャンバーに 0.3 μg/mL のエチジウムブロマイドで移し、ゲルを少なくとも 30 分間平衡化させます。</li>
		<li>再び蓋をしたゲルを4.23 V/cm、4°Cで9〜10時間泳がせ、中間体をその形状に対して分離します。</li>
	</ol></li>
</ol><img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67229/67229fig03.jpg"> 図3:2次元分離前の1次元中間体の切除。 ラダーを可視化した後、複製されていないフラグメントの移動度を推定できます。(I)この値は、それとそれに複製された対応物(II)を切除するための適切なカットサイト(a および b)を決定するために使用できます。次に、ゲルの切片を回転させ、2次元分離のためにウェルの位置に配置する必要があります。略語:CW =時計回り。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67229/67229fig03large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
4. 放射性標識プローブによるサザンブロッティングとハイブリダイゼーション
<ol><li>2次元ゲルをチャンバーから取り出し、0.24 M HCl溶液中でDNA断片を10分間、穏やかに揺さぶって脱精製します。ゲルを脱イオン水ですすぎ、0.4 M NaOHに10〜15分間浸します。 注意:HClとNaOHは腐食性があるため、化学薬品ドラフトで適切なPPEを使用して取り扱う必要があります。</li>
	<li>サザンブロットの組み立てを開始して、分離した中間体をゲルからメンブレンに移すのを容易にします。包括的な回路図については、 図4 を参照してください。<ol><li>十分な大きさの容器に0.4 M NaOHの1 Lを満たします。</li>
		<li>長いガラスシートを容器全体に整列させ、2枚の長いクロマトグラフィー紙をガラスシートを垂直に折ります(長さに沿って)NaOHの容器に伸びます。</li>
		<li>紙の上部をNaOHで濡らし、表面の下の気泡を慎重に取り除きます。</li>
		<li>クロマトグラフィーペーパーを3枚NaOHに浸し、折りたたんだペーパーの上に置き、再び気泡を取り除きます。</li>
		<li>2次元ゲルを逆さまにして、紙の上に転写します。</li>
		<li>正に帯電したナイロンメンブレン(孔径0.45μm)をDI水で濡らし、ゲルの上に置きます。</li>
		<li>最後に、DI水で濡らした紙をさらに3枚、メンブレンの上に加えます。</li>
		<li>底の容器に露出したNaOHをプラスチックラップで覆い、蒸発を防ぎます。ナプキンまたはペーパータオルをブロットの上に重ねて置き、ブロットの高さが0.3〜0.5mであることを確認します。上部に重りを置き、ブロット全体を圧縮して、キャピラリーのタイトな作用を促進します。DNAがメンブレンに移動するまで少なくとも2日かかります。 注:クロマトグラフィーペーパーとメンブレンの長さと幅は、2次元目に使用されるアガロースゲルのサイズによって異なります。最も効率的な転写のためには、ゲルと同じ寸法の紙とメンブレンを使用してください。</li>
	</ol></li>
	<li>移載後、UVクロスリンカーを用いて120 μJ/cm2 でDNAをメンブレンに架橋します。 注:実験は、メンブレンを室温で気密性があり、乾燥した清潔なシートプロテクターに置くことにより、ここで一時停止することができます。</li>
	<li>メンブレンを2倍生理食塩水クエン酸ナトリウム(SSCバッファー)(0.3 M NaCl、0.03 Mクエン酸ナトリウム)で5分間2回洗浄します。</li>
	<li>0.18 mL/cm2 のChurch &amp; Gilbert's hybridization buffer[1 mM EDTA, 1% boly serum albumin (BSA), 0.5 M sodium phosphate, 7% SDS]を65°Cでメンブレンにプレハイブリダイズし、ハイブリダイゼーションインキュベーター内で少なくとも2時間回転させます。 注:メンブレンは数日間プレハイブリダイズすることがあります。</li>
	<li>α-32P dATPまたはdCTPとDNA標識キットを使用して、メーカーのプロトコルに従って放射性標識プローブを調製します。 注意: 放射性標識されたdNTPは危険であり、取り扱うときは適切なPPEを着用する必要があります。すべての放射性作業はシールドの背後で実施されるべきであり、訓練を受けた個人は線量計を使用して放射線の取り込みを監視する必要があります。<ol><li>制限酵素消化配列に相補的な400-900 bpの直鎖状DNAフラグメントを設計し(図2)、ポリメラーゼ連鎖反応(PCR)を使用してフラグメントを増幅します。 注:ストックPCRフラグメントを50-100 ng/μLにすることをお勧めします</li>
		<li>100 ngの相補的PCRフラグメントをDNA Pol I、Klenowフラグメント(3' 5' exo-)バッファー、およびランダムデカヌクレオチドオリゴと組み合わせます。</li>
		<li>フラグメントを100°Cで10分間変性させます。</li>
		<li>5ユニットのDNA Pol I、Klenowフラグメント(3' 5' exo-)、50 μCiのα-32P dNTP、および放射性標識dNTPタイプが欠損した30-50 μmolのdNTPミックスをサンプルに加えます。</li>
		<li>37°Cで10分間インキュベートし、重合と放射性標識dNTPの取り込みを行います。</li>
		<li>以前に存在しないdNTPタイプを30〜50 μmolサンプルに加え、37°Cで10分間インキュベートします。</li>
		<li>放射性標識フラグメントをスピンカラムを用いて3,000 × g で2分間精製します。</li>
	</ol></li>
	<li>放射性標識プローブを50 mLのハイブリダイゼーションバッファーに加え、ハイブリダイゼーションインキュベーター内でメンブレンを65°C回転させて一晩インキュベートします。</li>
	<li>翌日、プローブを取り外し、メンブレンを洗浄バッファー1(0.1x SSC、0.1% SDS)で42°Cで2回、洗浄バッファー2(2x SSC、0.1% SDS)で65°Cで2回洗浄します。 注:すべての洗浄は、インキュベーター内で15分間高速回転で行う必要があります。</li>
	<li>メンブレンを10分間乾燥させ、薄くて透明なシートプロテクターに入れます。密封されたメンブレンは、蛍光体に敏感なスクリーンを備えた制御された耐放射線性カセットに保管します。メンブレンを1〜10日間スクリーンにさらします。</li>
	<li>蛍光体イメージングに設定された生体分子イメージャーを使用して、結果を可視化します。必要に応じて洗浄し、再度露出させます。</li>
</ol><img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67229/67229fig04.jpg"> 図4:サザンブロットの組み立て。 二次元からナイロン膜への中間体のサザンブロット転写に使用される典型的な装置の包括的な概略図。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67229/67229fig04large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>

<meta charset="utf8"></head><body>DNA複製およびフォークストールイベントの解析のための2Dゲル電気泳動

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ショートタンデムリピート(STR)は小さく、通常は2〜9塩基対(bp)のDNAの反復配列で、ヒトゲノムの約3%を占めています1。STRは遺伝子調節において重要な役割を果たします2;しかし、それらの反復的な組成は、非標準的なDNA二次構造の形成とそれに続く遺伝的不安定性を引き起こしやすい3,4。左巻きヘリックスからヘアピン/十字形、3本鎖および4本鎖ヘリックスまで、これらの代替DNA構造はレプリソームに固有の課題を引き起こします。二次構造形成の自然な前提条件は、DNA複製の前提条件であるDNAの巻き戻しです。これは、これらの構造の多くが複製中に形成され、レプリソームの進行を妨げ、最終的に複製フォークのストール5,6,7を引き起こし、深刻な場合にはフォークの崩壊とDNAの切断8,9を引き起こす可能性があるため、ゲノム機能にとってユニークな難問を示しています。停止したフォークの再開とDNA修復経路の両方が、反復拡張10,11や複雑ゲノム再構成(CGR)12,13などの反復不安定性につながることが示されています。これらの事象は、脆弱X症候群、ハンチントン病、フリードライヒ運動失調症などを含む反復拡大障害として知られる約60のヒト疾患14,15、およびエマニュエル症候群16などのCGR疾患を発症する可能性があります。したがって、反復不安定性によって引き起こされるヒト疾患のメカニズムをよりよく理解するためには、それらの反復による複製フォーク進行の詳細を研究することが不可欠です。
複製進行を研究する技術は、1980年代半ばにBrewerとFangmanが 、出芽酵母 の複製開始が自律的な複製配列(一般にARSとして知られている)要素17で起こるという直接的な証拠を提供しようとしたときに登場しました。その際、彼らはアガロース中で酵母複製中間体の構造を分離し、2次元中性/中性ゲル電気泳動(2DGE)として知られるBell and Byersの以前の方法を適応させた18。この手法は、非線形DNAがアガロースゲル中を同じ質量の線形同等物とは異なる方法で移動するという事実を利用しました。より具体的には、2DGEでは、単離されたDNAが2つの垂直な次元で分離され、最初は主にサイズによって、次に主に形状によって分離され、特定の関心領域での複製の包括的なマップが作成されます。Brewer氏とFangman氏は、これを「単純なY」構造または複製されていないDNAと複製されたDNAを橋渡しする複製フォークで構成される弧として示しました。さらに、他の観測された中間体を「バブル」と「ダブルY」と表現し、それぞれ複製の起源と収束するフォークを表している。
2DGEは、特定の時間におけるDNA複製中間体の相対的な集団を研究するために使用できます。したがって、中間体の1つの集団が他の集団よりも一般的である場合、これは視覚化すると明らかになります。そのため、2DGEは、構造形成リピートなどの困難な配列による複製進行を研究するのに特に便利なツールとなります。たとえば、分析された領域にレプリケーションフォークのストールを誘発できるシーケンスが含まれている場合、これはアーク上のバルジとして表示され(図1A)、その遺伝子座にレプリケーションフォークが蓄積していることを示します。これは、酵母19,20,21におけるヘアピン形成反復配列およびヒト細胞22,23,24における三重形成反復配列の両方の複製で見ることができる。失速に加えて、2DGEは、組換え中間体25の場合のように、複製中に形成される標準的な単純Ysに適合しないDNA構造を観察するために用いることができる。これらの中間体は、より重く、より分岐したX字型の構造を持っているため、標準的なレプリケーションフォークよりも1次元と2次元の両方でゆっくりと移動します。同様の結果は、レプリケーションフォークの反転20,24,26に関しても観察できます。強い複製ストレスに応答して、真核細胞は複製フォークの反転を利用して停止したフォークを救助することが示されています。これらの逆フォークは、ストールフォークと同様の分子量を持っています。しかし、その鶏足構造は、Y字型の補体に比べて2次元での電気泳動移動度が遅くなり、円弧から伸びます。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67229/67229fig01.jpg"> 図1:DNA複製の2Dゲル電気泳動解析 (A)フォークストールを誘発できる構造形成リピートを介した複製を示す典型的な2DGEの概略図。中間サイズと構造は、電気泳動の移動性に影響を与えます。(B)上昇アームと下降アームがそれぞれラベル付けされたサンプルYアーク。略語:2DGE = 二次元中性/中性ゲル電気泳動。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67229/67229fig01large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
当然のことながら、2DGEの最も重要な側面の1つは、複製中間体の質と量に関係しています。しかし、哺乳類細胞における内因性遺伝子座を介した複製の2DGE解析の分解能は、6 × 109 bp二倍体ヒトゲノム内の単一コピー標的配列には不十分であるが、重度に増幅されたDHFR遺伝子座27やリボソームRNA28などのマルチコピー遺伝子に対しては行われている。SV40ベースの複製は、真核細胞における複製を研究するための効率的で十分に特徴付けられた手段である29。これは、感染時にヌクレオソームに分割されるウイルスゲノムを複製するために宿主のレプリソーム機構の大部分を利用する真核生物複製の信頼性の高いモデルを提供する30,31。哺乳類のレプリソームからの2つの注目すべき例外は、宿主CMG複合体の代わりにT抗原(Tag)が複製DNAヘリカーゼとして機能し、DNAポリメラーゼデルタが先行DNA鎖と遅延DNA鎖の両方を合成することである32。このシステムを利用して、Massimo Lopes研究室で最初に作成されたプラスミド内に、SV40の複製起点の下流に病原性の構造形成リピートを配置しました22。重要なことに、このプラスミドにはTag自体をコードする遺伝子も含まれているため、さまざまな培養ヒト細胞へのトランスフェクション時にその構成的で非常に強力な複製がもたらされます。この特徴により、ヒト細胞における病原性反復反応の複製中およびそれに応答して形成される中間体の2DGE分析に最適な大量の製品が生まれます。ここでは、2次元ゲル電気泳動を用いて、SV40ベースのヒトエピソーム内での構造形成リピートの複製を可視化する詳細な方法について説明します。

<table><tbody><tr><td>10x TBE バッファー</td><td>Bio Rad</td><td>1610733</td><td></td></tr><tr><td>20x SSC バッファー</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1325-1</td><td></td></tr><tr><td>293T cells</td><td>ATCC</td><td>CRL-3216</td><td></td></tr><tr><td>a-32P dATP, 3000 Ci/mmol&nbsp;</td><td>Revvity</td><td>BLU512H250UC</td><td></td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP160-500</td><td></td></tr><tr><td>Amersham Hybond-N+</td><td>Fisher Scientific</td><td>RPN303B</td><td></td></tr><tr><td>BAS Storage Phosphor Screens</td><td>Fisher Scientific</td><td>28956482</td><td></td></tr><tr><td>Church and Gibert's hybriddization buffer</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>50-103-5408</td><td></td></tr><tr><td>DecaLabel DNA ラベリングキット</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>K0622</td><td></td></tr><tr><td>DMEM、高糖糖、GltaMAX Supplement、ピルビン酸</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10569010</td><td></td></tr><tr><td>DpnI</td><td>New England Biolabs</td><td>R0176S</td><td>追加の制限酵素も購入する必要があります</td></tr><tr><td>EDTA 0.5 M、pH 8</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック <td>BP2482500</td><td></td></tr><tr><td>エタノール、70%</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td><td>ック</td><td></td>BP82031GAL</tr><tr><td>ウシ胎児血清&nbsp;</td><td>VWR</td><td>97068-085</td><td></td></tr><tr><td>塩酸溶液、12 M</td><td>ミリポア Sigma</td><td>13-1683</td><td></td></tr><tr><td>イソプロパノール</td><td>フィッシャー サイエンティフィック</td><td>BP26184</td><td></td></tr><tr><td>jetPRIME DNA および siRNA トランスフェクション試薬</td><td>バッファー付き VWR</td><td>101000027</td><td></td></tr><tr><td>MycoZap Plus-CL</td><td>VWR</td><td>75870-448</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>ミリポア シグマ</td><td>746398-500G</td><td></td></tr><tr><td>Nalgene Oak Ridge 高速遠心チューブ</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>3139-0050</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝液生理食塩水、pH 7.4</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10010023</td><td></td></tr><tr><td>リン酸緩衝液生理食塩水、pH 7.5</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>10010024</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>EO0491</td><td></td></tr><tr><td>Proteinase K</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>EO0492</td><td></td></tr><tr><td>ピュアセルロースクロマトグラフィーペーパー</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>05-714-4</td><td></td></tr>ピ<tr><td>ュアセルロースクロマトグラフィーペーパー</td><td>フィッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>05-714-5</td><td></td></tr>定<tr><td>規</td>フィ<td>ッシャーサイエンティフィック</td><td>09-016</td><td></td></tr>メスフィ<tr><td></td><td>ッシャーサイエンティフィ</td>ック<td>12-460-451</td><td></td></tr>ド<tr><td>デシル硫酸ナトリウム</td><td>ミリポアシグマ</td><td>436143-25G</td><td></td></tr><tr><td>水酸化ナトリウム</td><td>フィッシャー・サイエンティフィック</td><td>S25548</td><td></td></tr><tr><td>ソーバル LYNX 4000 超高速遠心分離機</td><td>サーモフィッシャー・サイエンティフィック</td><td>75006580</td><td></td></tr><tr><td>サブセル水平電気泳動システム</td><td>バイオ・ラッド</td><td>1704401</td><td></td></tr><tr><td>TH13-6 x 50 スイングバケットローター</td><td>サーモフィッシャー・サイエンティフィック 75003010</td><td></td><td></td></tr><tr><td>トリスHCl 1 M、pH 7.5</td><td>フィッシャーサイエンティフィック</td><td>BP1757-500</td><td></td></tr>トリ<tr><td>プシンEDTA(0.25%)、フェノールレッド</td><td>サーモフィッシャーサイエンティフィック</td><td>25200056</td><td></td></tr></tbody></table>

sv40ベースのヒトエピソーム内での構造性dnaリピートを介した複製の電気泳動解析

Electrophoretic Analysis of Replication Through Structure-Prone DNA Repeats Within the SV40-Based Human Episome

成功した場合、視覚化すると、レプリケーションフォークの鋭い弧が巨大な1nスポットから上下に伸びていることが観察できます(図5A)。フラグメントのサイズ、またはレプリケートされる割合によって、最初の次元でのフラグメントの移動性が決まります。中間体がより接合された構造を発達させると、中間体は2次元でよりゆっくりと移動し始めます。したがって、中間体が両方の次元でゆっくりと移動した場合、それは従来の複製フォークから大きな接合部の変化を持つ高度に複製された分子であると主張できます。(GAA)100 リピートのラギングストランド合成の場合、フォークのストールは、リピートの遭遇時のレプリケーションフォークの付着を表す円弧(I)上の暗く定義されたスポットで示され、おそらくトリプレックス形成によるものです。これには、ストールサイトの上に、より重く、より分岐した中間体(IIおよびIII)が伴います。これらの中間体の性質については、Rastokina et al. 2023,24 で詳しく説明しています。要するに、これらは、収束フォーク(図5B)(III)の出現に加えて、失速(II)に応じて反転するフォークの組み合わせを表している可能性があります。
視覚化によって観察できる 1 つは、理想的とは言えない、広い弧です。最悪の場合、これはアークの完全な倍増として現れる可能性があります。通常、これは 1 次元での中間体の分離が不十分であることを表します。これにはいくつかの要因が考えられますが、最も可能性の高いのは、複製中間体サンプルの塩またはタンパク質の汚染です。中間体を消化した後のフェノール:クロロホルム精製と、それに続く70%エタノールによる広範な洗浄により、このリスクを最小限に抑えることができます。ただし、追加のフェノール曝露は、中間体が変性する可能性を高める可能性があり、これはアークの下の線状DNAの強度が暗くなり、複製中間体が崩壊することを表す可能性があることに注意する必要があります(図5C)。
最悪のシナリオでは、視覚化により、アークの欠如によって証明されるように、レプリケーション中間体が完全に欠如する可能性があります(図5D)。アークの予想される領域の下に暗いスポットがないため、アークの欠如が変性レプリケーション中間体に起因する可能性は低いです。特に小さな1nスポット(IV)が存在することを考えると、この図の例に存在するDNAの全体的な量は最小限であり、したがって、この問題はプラスミドの複製不足またはDNAの全体的に不十分なトランスフェクションまたは単離によって引き起こされる可能性があります。
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67229/67229fig05.jpg"> 図5:2DGE解析の潜在的な結果 (A)HEK293T細胞における構造形成(GAA)100 リピートによる複製の2DGE解析の成功。(I)はリピートで失速したフォークを指し、(II)と(III)は失速に応答して発生するより構造化された中間体を指します。2.7 kb のフラグメントの図を上に示しています。(B)(GAA)100 リピートの複製中に生じる代表的な中間体。複製フォーク反転遺伝子とリスタート遺伝子のsiRNAノックダウンを用いて、これらの中間体の性質を同定するための遺伝的制御を確立しました。(C)分離中にフォークが変性した場合に現れる可能性のある未解決の複製中間体の描写。(D)複製中間体が完全に存在しないことから示される2DGE実験の失敗。IVは、消化されたプラスミドの線形で複製されていないフラグメントを表します。略語:2DGE = 二次元中性/中性ゲル電気泳動。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67229/67229fig05large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>

SV40ベースのヒトエピソーム内での構造性DNAリピートを介した複製の電気泳動解析

Two-dimensional neutral/neutral gel-electrophoresis (2DGE) emerged as a benchmark technique to analyze DNA replication through natural impediments. This ...

electrophoretic-analysis-replication-through-structure-prone-dna

Research

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SV40ベースのヒトエピソーム内での構造性DNAリピートを介した複製の電気泳動解析

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