Name: 低コストポリエチレンテレフタレートラミネートラミネートマイクロ流体工学による多重ゼブラフィッシュイメージングのための設計 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2024-09-27T14:45:00.000+00:00
Duration: 5 min 48 s
Description: 学ぶ低コストPETラミネートマイクロ流体デバイスRADISHの作製法。Danio rerio複数胚を同時イメージングし、炎症と創傷治癒における化学・機械刺激の統合メカニズムを解明する革新的アプローチです。

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<ol><li>De Oliveira, S., Rosowski, E. E., Huttenlocher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neutrophil+migration+in+infection+and+wound+repair%3A+going+forward+in+reverse%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Immunol%22%5BJournal%5D)">Neutrophil migration in infection and wound repair: going forward in reverse.</a> Nat Rev Immunol. 16 (6), 378-391 (2016).</li>
<li>Xu, S., Hsiao, T. I., Chisholm, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+wounded+worm%5BTitle%5D)+AND+%22Worm%22%5BJournal%5D)">The wounded worm.</a> Worm. 1 (2), 134-138 (2012).</li>
<li>Belacortu, Y., Paricio, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+as+a+model+of+wound+healing+and+tissue+regeneration+in+vertebrates%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Drosophila as a model of wound healing and tissue regeneration in vertebrates.</a> Dev Dyn. 240 (11), 2379-2404 (2011).</li>
<li>Yoo, S. K., Freisinger, C. M., LeBert, D. C., Huttenlocher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+redox%2C+Src+family+kinase%2C+and+calcium+signaling+integrate+wound+responses+and+tissue+regeneration+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Early redox, Src family kinase, and calcium signaling integrate wound responses and tissue regeneration in zebrafish.</a> J Cell Biol. 199 (2), 225-234 (2012).</li>
<li>Kawakami, A., Fukazawa, T., Takeda, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+fin+primordia+of+zebrafish+larvae+regenerate+by+a+similar+growth+control+mechanism+with+adult+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Dyn%22%5BJournal%5D)">Early fin primordia of zebrafish larvae regenerate by a similar growth control mechanism with adult regeneration.</a> Dev Dyn. 231 (4), 693-699 (2004).</li>
<li>Gault, W. J., Enyedi, B., Niethammer, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Osmotic+surveillance+mediates+rapid+wound+closure+through+nucleotide+release%5BTitle%5D)+AND+%22J+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Osmotic surveillance mediates rapid wound closure through nucleotide release.</a> J Cell Biol. 207 (6), 767-782 (2014).</li>
<li>Huemer, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((zWEDGI%3A+Wounding+and+entrapment+device+for+imaging+live+zebrafish+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">zWEDGI: Wounding and entrapment device for imaging live zebrafish larvae.</a> Zebrafish. 14 (1), 42-50 (2017).</li>
<li>Kaufmann, A., Mickoleit, M., Weber, M., Huisken, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multilayer+mounting+enables+long-term+imaging+of+zebrafish+development+in+a+light+sheet+microscope%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Multilayer mounting enables long-term imaging of zebrafish development in a light sheet microscope.</a> Development. 139 (17), 3242-3247 (2012).</li>
<li>Hirsinger, E., Steventon, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+versatile+mounting+method+for+long+term+imaging+of+zebrafish+development%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">A versatile mounting method for long term imaging of zebrafish development.</a> J Vis Exp. (119), e55210(2017).</li>
<li>Wielhouwer, E. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Zebrafish+embryo+development+in+a+microfluidic+flow-through+system%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Zebrafish embryo development in a microfluidic flow-through system.</a> Lab Chip. 11 (10), 1815-1824 (2011).</li>
<li>Khalili, A., Rezai, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+devices+for+embryonic+and+larval+zebrafish+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Brief+Funct+Genomics%22%5BJournal%5D)">Microfluidic devices for embryonic and larval zebrafish studies.</a> Brief Funct Genomics. 18 (6), 419-432 (2019).</li>
<li>Choudhury, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fish+and+Chips%3A+a+microfluidic+perfusion+platform+for+monitoring+zebrafish+development%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Fish and Chips: a microfluidic perfusion platform for monitoring zebrafish development.</a> Lab Chip. 12 (5), 892-900 (2012).</li>
<li>An integrated microfluidic system for zebrafish larva organs injection. Zhang, G., et al. Proceedings IECON 2017 - 43rd Annual Conference of the IEEE Industrial Electronics Society, 2017-January, , 8563-8566 (2017).</li>
<li>Erickstad, M., Hale, L. A., Chalasani, S. H., Groisman, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidic+system+for+studying+the+behavior+of+zebrafish+larvae+under+acute+hypoxia%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">A microfluidic system for studying the behavior of zebrafish larvae under acute hypoxia.</a> Lab Chip. 15 (3), 857-866 (2015).</li>
<li>Mani, K., Hsieh, Y. C., Panigrahi, B., Chen, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+noninvasive+light+driven+technique+integrated+microfluidics+for+zebrafish+larvae+transportation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">A noninvasive light driven technique integrated microfluidics for zebrafish larvae transportation.</a> Biomicrofluidics. 12 (2), 021101(2018).</li>
<li>Lee, Y., Seo, H. W., Lee, K. J., Jang, J. W., Kim, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+microfluidic+system+for+stable+and+continuous+EEG+monitoring+from+multiple+larval+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Sensors+%28Basel%29%22%5BJournal%5D)">A microfluidic system for stable and continuous EEG monitoring from multiple larval zebrafish.</a> Sensors (Basel). 20 (20), 5903(2020).</li>
<li>Sonnen, K. F., Merten, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics+as+an+emerging+precision+tool+in+developmental+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Dev+Cell%22%5BJournal%5D)">Microfluidics as an emerging precision tool in developmental biology.</a> Dev Cell. 48 (3), 293-311 (2019).</li>
<li>Levis, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics+on+the+fly%3A+Inexpensive+rapid+fabrication+of+thermally+laminated+microfluidic+devices+for+live+imaging+and+multimodal+perturbations+of+multicellular+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Biomicrofluidics%22%5BJournal%5D)">Microfluidics on the fly: Inexpensive rapid fabrication of thermally laminated microfluidic devices for live imaging and multimodal perturbations of multicellular systems.</a> Biomicrofluidics. 13 (2), 024111(2019).</li>
<li>E3 medium (for zebrafish embryos). <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Cold+Spring+Harbor+Protocols%22">Cold Spring Harbor Protocols</a>. 2011 (10), (2011).</li>
<li>Matthews, M., Varga, Z. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+and+euthanasia+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22ILAR+J%22%5BJournal%5D)">Anesthesia and euthanasia in zebrafish.</a> ILAR J. 53 (2), 192-204 (2012).</li>
<li>Cronan, M. R., Tobin, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+tagging+at+the+cdh1+locus+for+live+visualization+of+E-cadherin+dynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">Endogenous tagging at the cdh1 locus for live visualization of E-cadherin dynamics.</a> Zebrafish. 16 (3), 324(2019).</li>
<li>Thiele, T. R., Donovan, J. C., Baier, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Descending+control+of+swim+posture+by+a+midbrain+nucleus+in+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Descending control of swim posture by a midbrain nucleus in zebrafish.</a> Neuron. 83 (3), 679-691 (2014).</li>
<li>Yoo, S. K., Huttenlocher, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatiotemporal+photolabeling+of+neutrophil+trafficking+during+inflammation+in+live+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Spatiotemporal photolabeling of neutrophil trafficking during inflammation in live zebrafish.</a> J Leukoc Biol. 89 (5), 661-667 (2011).</li>
<li>Chen, T. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasensitive+fluorescent+proteins+for+imaging+neuronal+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Ultrasensitive fluorescent proteins for imaging neuronal activity.</a> Nature. 499 (7458), 295-300 (2013).</li>
<li>Li, L., Yan, B., Shi, Y. -Q., Zhang, W. -Q., Wen, Z. -L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+reveals+differing+roles+of+macrophages+and+neutrophils+during+zebrafish+tail+fin+regeneration%5BTitle%5D)+AND+%22J+Biol+Chem%22%5BJournal%5D)">Live imaging reveals differing roles of macrophages and neutrophils during zebrafish tail fin regeneration.</a> J Biol Chem. 287 (30), 25353-25360 (2012).</li>
<li>Mathias, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Resolution+of+inflammation+by+retrograde+chemotaxis+of+neutrophils+in+transgenic+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J+Leukoc+Biol%22%5BJournal%5D)">Resolution of inflammation by retrograde chemotaxis of neutrophils in transgenic zebrafish.</a> J Leukoc Biol. 80, 1281-1288 (2006).</li>
<li>Levis, M., Ontiveros, F., Juan, J., Kavanagh, A., Zartman, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+fabrication+of+custom+microfluidic+devices+for+research+and+educational+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Rapid fabrication of custom microfluidic devices for research and educational applications.</a> J Vis Exp. 2019, (2019).</li>
</ol>

<table><tbody><tr><td>直径25mmの丸いカバーガラス#1</td>厚さの<td>Chemglass Life Sciences</td><td>CLS-1760-025</td>ベース<td>取り付け材料。厚さは顕微鏡レンズの仕様に基づいて選択されました。</td></tr><tr><td>Adobe Illustrator v28.5</td><td>デバイスパターンをデザインするための</td><td>Adobe</td><td>N / A</td>ベクターエディター。</tr><tr><td>塩化カルシウム二水和物</td><td>フィ</td><td>ッシャーC79E3</td><td>培地を作るため。</td></tr><tr><td>デザインPNGファイル(オンラインミラー)</td><td>N/A</td><td>N/A</td> https://i.ibb.co/QPYj7BL/multipositionalv7-1.png<<td>br/> https://i.ibb.co/FDpQYXc/multipositionalv7-2.png https://i.ibb.co/5TG4SB6/multipositionalv7-3.png</td></tr><tr><td>Design Space for Desktop v8.39</td><td>Cricut</td><td>N/A</td><td>クラフトカッターを駆動するための独自のソフトウェア。</td></tr><tr><td>Fusion Plus 7000L</td><td>GBC</td><td>1703098</td><td>サーマルラミネーター。この特定のモデルは、最大シートスタックサイズなどの生活の質の機能のために選択されました。</td></tr><tr><td>ドイツの超硬プレミアムブレード</td><td>Cricut</td><td>10396595</td><td>クラフトカッター用の交換用ブレード。</td></tr><tr><td>グレーベーシックツールセット</td><td>Cricut</td><td>10307854</td><td>刈り取り、マットのクリーニング、PETシートの取り付け用のツールセットです。オプション。&nbsp;</td></tr><tr><td>塩化マグネシウム六水和物</td><td>アクロス有機</td><td>223211000</td><td>E3培地を作るため。</td></tr><tr><td>メーカー3</td><td>Cricut</td><td>10669040</td><td>Craftカッター。Cricut Maker 3 は、ソフトウェアの使いやすさのために Silhouette Cameo 4 よりも選択されましたが、白黒画像を読み取ることができるクラフト カッターであれば何でも機能します。</td></tr><tr><td>MemGlow 560</td><td>細胞骨格</td><td>MG02-10</td><td>細胞膜用の赤色生細胞色素。洗濯は不要です。図3で使用。</td></tr><tr><td>No. 22 カーボンメスブレード</td>サー<td>ジカルデザイン</td><td> 22-079-697</td>手動<td>カット調整用のメスブレード。同様のクラフトナイフ(X-acto #2ナイフなど)も機能します。</td></tr><tr><td>塩化カリウム</td><td>フィッシャーBP366E3</td><td></td><td>媒体の製造用。</td></tr><tr><td>塩化ナトリウム</td>フィ<td>ッシャーBP358E3</td><td>媒体を作るため。</td><td></td></tr><tr><td>StandardGrip 粘着カッティングマット</td><td>Cricut</td><td>10138842</td><td>クラフトカッター用取り付けマット。LightGrip カッティング マットも機能しますが、除草や除去中に接着剤の強度により最終的なカットが反る可能性があるため、StrongGrip および FabricGrip カッティング マットは避けてください。マットの接着剤は、使用を続けると最終的には摩耗します。必要に応じてマットを交換します。</td></tr><tr><td>ステーショナリーテープ 12 mm</td><td>Deli</td><td>30014</td><td>オフィステープ。デリブランドは、ラミネート後の取り外しの容易さについてテストによって選択されました。</td></tr><tr><td>瞬間接着剤、液体</td><td>ロックタイト</td><td>1364076</td><td>シアノアクリレート接着剤。<強力>使用する接着剤は液体でなければなりません。</強力>ゲル配合物は、デバイスのエッジを十分に密閉または防水しません。</td></tr><tr><td>PETサーマルラミネートポーチ、3ミル</td>ス<td>コッチ</td><td>TP3854</td><td>PETシート、熱接着剤付き。シーツはサンドイッチされたペアとして届くため、使用前に分離する必要があります。粘着面を下にしてカットします。</td></tr><tr><td>PETサーマルラミネートパウチ、5ミル</td>ス<td>コッチ</td><td>TP5854</td><td>PETシート、熱接着剤付き。シーツはサンドイッチされたペアとして届くため、使用前に分離する必要があります。粘着面を下にしてカットします。</td></tr><tr><td>トリカイン (MS-222)</td><td>シンデル</td><td>IC10310680</td><td>魚の麻酔薬。</td></tr></tbody></table>

低コストポリエチレンテレフタレートラミネートラミネートマイクロ流体工学による多重ゼブラフィッシュイメージングのための設計

Low-cost Polyethylene Terephthalate Lamination Microfluidics Designs for Multiplexed Zebrafish Imaging

レーザー走査型共焦点をRADISHの有無で作製した画質を比較するため、インテンシオメトリックカルシウムバイオセンサーGCaMP6f22,24を外側上皮層に発現する胚をMemGlow 560で染色し、尾びれの全体の厚さを覆う逆レーザー走査型共焦点で1フレームあたり1分間隔でイメージングしました(動画2)。デバイスを使用しない場合(図3A)、デバイスを使用したイメージングと比較して、Zスタックを指定された時間分解能内に収まるようにZスタックを25スライスに制限した結果、サンプルが大幅にドリフトし、バンディングアーティファクトが見られました(図3B)。さらに、Tg(krt4:Gal4, UAS:GCaMP6f) x (cdh1-dTomato)xt1821を発現する胚の創傷直後のカルシウム過渡現象を調べるために大根を使用し、内因性E-カドヘリンを赤で、頂端上皮の細胞質カルシウムを緑で強調した。胚は、メスの刃(図4Aおよびビデオ3)またはIRレーザーによる直接レーザーアブレーション(図4B)を使用して中央チャンバーの側面と平行に損傷を与え、その後、尾びれの折り目の全厚さを通して画像化しました。 
大根の長期イメージングの有効性を実証するために、創傷後24時間、創傷端への免疫細胞の動員を調査しました。3 dpfのゼブラフィッシュ胚4個、Tol2(mpx:Dendra2)を発現して好中球を緑色23で標識するために、尾部離断により損傷を受け、24時間連続して画像化しました(図5)。傾きや浮遊など、通常3dpfから4dpfの胚に関連するイメージングアーチファクトは著しく欠如しており(ビデオ4)、実験では組織の再成長が妨げられることなく継続されました。創傷縁への好中球動員は画像全体を通して継続し(図5B)、ほとんどの遊走細胞は創傷後24時間までに離脱し(図5C)、予想される炎症の解消と一致します25,26。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67313/67313fig01.jpg"> 
図1:PETラミネートマイクロ流体デバイス(RADISH)の設計と使用 (A)個々のPET層の配置と厚さ、組み立て、デバイスの取り付けと使用を示す概略図。(B)最終製品、35mmの皿の3/4インチのカットアウトに取り付けられています。(C)3 dpf胚、(D)5 dpf胚、(E)14 dpf胚をデバイス内に収容。スケールバー = 1,000 μm (C,D,E)。略語:PET =ポリエチレンテレフタレート。RADISH = その後の治癒のダニオイメージングのための回転アシスタント。dpf = 受精後日数。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/67313fig01large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67313/67313fig02.jpg"> 
図2:PETデバイスアセンブリのステップバイステップの写真イラスト(A)ラミネート前の個々のPET層。(B)オフィステープを使用して25mmのカバーガラスに固定されたPET層。(C)ラミネート用のプラスチックバッキングに固定された進行中のデバイス。(D)完成したPETラミネート装置。(E)デバイス取り付け前の35mmディッシュを変更。(F)完成したデバイス。略語:PET=ポリエチレンテレフタレート。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/67313fig02large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67313/67313fig03.jpg"> 
図3:RADISHデザインにおける3 dpf胚のレーザー走査型共焦点画像の品質向上 (A)RADISHを使用せずにMemGlow 560で染色した3 dpf Tg(krt4:Gal4, UAS:GCaMP6f) 胚の代表画像。(B)ラディッシュにマウントしたMemGlow 560で染色した Tg(krt4:Gal4, UAS:GCaMP6f) 胚の代表画像。スケールバー = 100 μm。略語:RADISH =その後の治癒のダニオイメージングのための回転アシスタント。dpf = 受精後日数。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/67313fig03large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67313/67313fig04.jpg"> 
図4:RADISH設計と複数の創傷技術との互換性。 (A) 3 dpf Tg(krt4:Gal4, UAS:GCaMP6f) x (cdh1-dTomato)xt18 胚は、手動尾びれ離断によって負傷した。(B)レーザーアブレーションによって負傷した胚。(C,D)同じ胚が4分後に現れ、傷害後のカルシウム過渡現象の進行を示しています。スケールバー = 100 μm。略語:RADISH =その後の治癒のダニオイメージングのための回転アシスタント。dpf = 受精後日数。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/67313fig04large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/67313/67313fig05.jpg"> 
図5:食細胞遊走のイメージングのための胚の長期捕捉。 (A) Tol2(mpx:Dendra2) 胚は創傷直後、同じ胚は(B)25分後、(C)12時間後、(D)24時間後。スケールバー = 100 μm。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/67313fig05large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
補足ファイル1:図1Aに示すように、RADISHデバイス設計用のベクターファイルとPNGファイル。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/67313_Supp%20File%201.zip" target="_blank">このファイルをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
ビデオ1:RADISHデバイス設計を使用した手動尾フィン切断の明視野ビデオ。 略語:RADISH = その後の治癒のダニオイメージングのための回転アシスタント。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/Movie%201.mp4" target="_blank">このビデオをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
ビデオ2:図3の非マウント3 dpf Tg(krt4:Gal4、UAS:GCaMP6f)胚の非マウント胚とマウントされた3 dpf Tg(krt4:Gal4、UAS:GCaMP6f)胚の比較、1フレーム/分で取得。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/Movie%202.mp4" target="_blank">このビデオをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
ビデオ3:図4のメス切断またはレーザーアブレーションによって負傷したTg(krt4:Gal4、UAS:GCaMP6f)x (cdh1-dTomato)xt18胚のカルシウム過渡現象、1フレーム/分で取得。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/Movie%203.mp4" target="_blank">このビデオをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>
動画4:Tol2(mpx:Dendra2)胚における白血球動員と尾びれ再生の長期イメージング 略語:RADISH =その後の治癒のダニオイメージングのための回転アシスタント。HPW = 負傷後数時間。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/67313/Movie%204.mp4" target="_blank">このビデオをダウンロードするには、ここをクリックしてください。</a>

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