2024年11月1日
このプロトコルは、AAV8送達small ヘアピンRNAの脾腔内注射が、門脈注射と同じ遺伝子ノックダウン効率を肝臓で達成する方法を説明しており、周術期および術後の死亡率と合併症がはるかに低い、より簡単な手順を表しています。
私たちの研究の焦点は、計算的および実験的手法を使用して複雑な障害の進行の理解を深めることです。私たちは、代謝障害、老化、がんなどの複雑な疾患の進行を遅らせたり逆転させたりするための戦略の開発に重点を置いています。ここで私たちが取り組もうとしている重要な問題は、なぜ一部の前がん病変ががんに発展するのか、なぜ一部の成人組織が損傷後に再生できるのか、そして何が老化プロセスを推進しているのかということです。これらのテクノロジーには、全ゲノム配列決定、単一細胞配列決定、堅牢な計算および機械学習アルゴリズム、AI モデリング、およびヒトの病気に関連する実験動物モデルが含まれます。このプロトコルは、核ステミングを標的とする短いヘアピンRNAコンストラクトを送達したAAV8の脾内注射を使用したIn-vivo遺伝子ノックダウンの方法を記述しています。核ステミングは、胚発生、がん発生、成体組織再生に重要な役割を果たす幹細胞の自己複製因子です。移植において、AAV8の短いヘアピンRNAを送達する移植注射で、同じノックダウン効率を達成することを示しました。AAV8 の門脈注射のセットはコンストラクトを送達しますが、合併症がはるかに少なく、手順もはるかに簡単です。
[講師]まず、麻酔をかけたマウスを右側臥位で無菌手術領域に移します。手術用ブレードを使用して、左上腹部壁に15ミリメートルの切開を行い、続いて腹膜に10ミリメートルの切開を行います。鉗子を使用して脾臓をそっと露出させ、その下に湿ったガーゼを置き、所定の位置に保持します。次に、30ゲージの針を使用して、50マイクロリットルのAAV8ウイルスを30秒間にわたって表面下3ミリメートルの深さで脾臓に注入します。次に、綿棒でその部位を覆い、1分間圧縮します。その後、4-0吸収性縫合糸を使用して腹壁を縫合します。次に、4-0の非吸収性縫合糸を使用して皮膚を閉じます。麻酔後、マウスは皮膚に正中線を切開し、腹膜に開腹術を行います。滅菌生理食塩水に浸した滅菌ガーゼパッドをマウスの左側に置きます。滅菌綿棒を使用して、大腸と小腸をそっと引き抜きます。濡れたガーゼパッドの上に腸を置き、乾燥や皮膚への接触を防ぐために腸を覆います。次に、32ゲージの滅菌針を使用して、50マイクロリットルのAAV8ウイルスを5度未満の角度で門脈に注入します。針を門脈に3〜5ミリメートル挿入し、逆流を防ぐために血液を針を通り過ぎて5秒間流れます。次に、滅菌綿棒を注射部位に置き、静脈が完全に閉じて出血がなくなるまで穏やかな圧力をかけます。その後、内臓をそっと腹腔に戻します。次に、4-0吸収性縫合糸を使用して腹壁を閉じ、4-0非吸収性縫合糸で皮膚を閉じます。脾内注射と門脈注射は、mRNAのノックダウン効率が統計的に同等であり、2つの方法間で有意差は観察されませんでした。
本プロトコールでは、AAV8を用いて送達するショートヘアピンRNA(shRNA)の脾腔内注射による、in-vivoでの遺伝子ノックダウン法について解説します。この手法は、門脈注射と同等の肝臓における遺伝子ノックダウン効率を達成しつつ、操作がより簡便であり、合併症のリスクも低いという利点があります。
肝臓における効率的かつ低侵襲な遺伝子ノックダウンは、代謝、再生、および腫瘍学研究におけるターゲットの検証およびメカニズム的なリスク低減に不可欠です。脾蔵内へのAAV8-shRNA導入プロトコルは、処置上のリスクを軽減しながら強力な遺伝子サイレンシングを可能にし、疾患関連モデルにおける信頼性の高い機能ゲノミクスを支援します。このアプローチは、技術的な障壁と周術期の合併症を最小限に抑えることで、初期探索および前臨床ワークフローを効率化します。
この脾腔内AAV8-shRNAプロトコルは、創薬から前臨床までの連続的なプロセスに組み込まれ、リード化合物の同定およびトランスレーショナル研究のための効率的なターゲットバリデーションとモデル作製を可能にします。