Name: アガロースゲルベースのマイクロ流体デバイスを用いた神経幹細胞運動の評価 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2008-02-11T02:20:00.000+00:00
Duration: 12 min 55 s
Description: 学ぶアガロースゲルベースのマイクロ流体デバイスを用いた神経幹細胞運動の評価法。EGF受容体の過発現が細胞運動性を増強することを示し、再生医療への応用可能性を示唆する。

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この作品は、科学、技術及び学術研究（NYSTAR）（先端技術助成のためのセンターの形で）、のニューヨーク州事務所でとナノバイオテクノロジーセンター（NBTC）、ナショナルのSTCプログラムからの補助金によってサポートされています契約書第ECS - 9876771の下で科学財団、およびアメリカの脳腫瘍協会と医学のニューヨークアカデミー（JAB）。

手順フィブロネクチンでコーティングスライドマイクロ流体デバイスの組み立てに先立って、フィブロネクチンでガラススライドを滅菌する。コー​​ト無菌性を維持するためにbiohoodにスライド。スライドのエッジに沿って滅菌PDMSのスペーサーの位置を合わせ、永久的なマーカーで上を向いている側をマーク。スライドガラスの全体にわたってPDMSのスペーサー内部のフィブロネクチンの5μg/ mlの溶液をピペット1ミリリットル（シグマ）。時間邪魔されずにスライドを残し、その後N 2銃を使用して完全に乾燥させます。スライドは、後の実験のために4℃で保存することができる。 装置の組み立てデバイス全体のアセンブリのプロトコルは、次の手順を使用して、無菌条件下でbiohoodで行われます。 <ol><li> 70％エタノールでそれを消去し、N 2ガ ​​ンで乾燥することによりその上にパターニングされたマイクロチャネルを有するシリコンのマスターを清掃してください。マスターのリリーフ機能周り鉗子を使用して1mmの高さの滅菌PDMSのスペーサを置きます。 </li><li>アガロース粉末（フィッシャーサイエンティフィック社）0.3 gと50 mlのビーカーにCO 2に依存しないメディア（Invitrogen社製）10mlを秤量することにより、デバイスで使用されているアガロースゲルを準備します。 HIGHで20秒間電子レンジでへらと熱との混合物をかき混ぜる。未溶解の顆粒が存在する場合は、最後に残った顆粒を取り除くために熱い混合物は、別の10秒とスワールのために混合物を加熱する。 8秒の加熱時間とプロセスを繰り返し、[5秒。 </li><li>すぐにPDMSのスペーサーに囲まれたシリコンのマスターにアガロース溶液を注ぐと直ちに滅菌ガラススライドでアガロースの混合物をカバーしています。アガロースは、PDMSのスペーサーと同じ定数1 mmの高さにゲルすることを保証するために約2分間スライドに一定の、穏やかな圧力を与える。 </li><li>アガロースゲルの後に、シリコンのマスターとスライドが直面しているアガロースゲルのマイクロとフィブロネクチンコーティングしたスライドガラスへの転送からPDMSスペーサーと模様のアガロースゲルをはがす。入口と出口のアクセスのためのマイクロチャネルの貯留領域に穴を開けるために16ゲージのシリンジの先端を使用してください。マイクロチャネルの乾燥を防ぐために、スライド上にパターニングされたアガロースゲルにCO 2 -独立系メディアの500μlを添加します。 </li><li> 70％エタノールでデバイスで使用されるアクリルマニホールドを洗浄し、DI水ですすいでください。マイクロチャネルをアガロースゲルにパンチ穴付マニホールドの穴を合わせます。その後、ゲル、PDMSのスペーサー、およびデバイスの金属フレームとのフィブロネクチンのスライドにマニホールドを合わせます。デバイスにネジを置いて、ドライバーを使って抵抗の点で締めます。これは、デバイスはアガロースのマイクロチャネルを変形の程度に過剰締めされていないことを保証するために行われます。デバイス内部のゲルがずれないことを確認する時計回りの順番でネジを締めます。 1ミリリットル注射器を使用してマイクロチャネルに漏れや閉塞のためのデバイスをテストします。注射器は、マイクロチャネル内のCO 2 -独立系メディアを注入するチューブの端にゲルローディングピペットチップとタイゴンチューブが装備されています。マイクロチャネルは、メディアが、メディアが対応する入口に注入されたときにのみマイクロチャンネルの出口を終了することが観察されている場合、正常に形成みなされます。今、デバイスの使用準備ができています。 </li></ol>デバイス内のセルを準備し、シーディング細胞がコンフルエント70％（100,000細胞/ ml程度の細胞密度）に到達すると、それらはデバイスに播種されるために準備されています。 two DPBS（Invitrogen）を洗浄の対象セルを。細胞を切断するトリプシン- EDTA（Invitrogen社）を200μlを追加。トリプシンを不活性化する血清を含むM2培地5mlを含む15 mlの遠心チューブに細胞を移す。 5分間1000rpmで細胞を増殖培地を遠心分離。上清を吸引し、細胞のペレットをDPBS 5 mlを懸濁します。同じ条件で再びDPBS細胞を遠心分離します。再び上清を吸引し、CO 2の独立したメディアの500μlに細胞のペレットを再懸濁します。 重力駆動型フローを介してデバイスのマイクロ流路中心に種子細胞の得られた懸濁液を。それぞれ、細胞懸濁液60μlおよびCO 2非依存培地の20μlを持つマイクロチャネルセンターの入口と出口を追加。細胞接着を探すために明視野顕微鏡下でマイクロチャネルセンターを守ってください。細胞は通常10分後に付着する。細胞は適切な密度でチャネルの底部に付着した後、入口で、残りの細胞懸濁液と出口でメディアをpipeted。センターチャンネルの入口と出口の両方でCOの場所60μlの2 -独立系メディア。場所PDMSは、番目以上をカバーセンターチャンネルからのメディアの蒸発を最小限に抑えるために、電子センターの入口および出口。 撮像素子のセル顕微鏡の気象観測所（オリンパスX81）を介して滅菌ルティックチューブスレッド、装置の組立に先立ちと蠕動ポンプ（ワトソン - マーロウ205U/CA）で接続します。 4 RPMの速度でチューブをPBSをフラッシュします。装置の組み立て後、15 ml遠心チューブ内のCO 2 -独立系メディアにおける上皮成長因子（EGF）（シグマ）ソリューションの適切な濃度を準備する。 5秒間ボルテックスEGFソリューションを、チューブで接続してください。デバイスに対応するEGF濃度が付いているチューブを接続します。 EGFは、チャネルの尾根を越え拡散し、安定した化学的勾配を確立するためのそれは約1時間かかります。 イメージングソフトウェア、Slidebookは、実験の実行で約5時間10分ごとに時の画像のセットを取得するために使用されます。 XY自動ステージは、このような2同一のセンターチャンネルのサブ領域（400μmx400μmの面積を持つ）、および3つの中心チャネルの合計にプログラムされている特定の時点で撮像する。チューブに記載されて別のセンターチャネル（通常、3一度の実行で）の細胞は、異なるEGF濃度を有する。 材料と機器 細胞株：C17.2細胞は出生後のマウスの小脳6,7の外部胚層から派生したのNSCです。この細胞株を使用して、我々はレトロウイルスのトランスフェクション法を使用して、2つの他のマウスの幹細胞株を開発した。これら二つの安定にトランスフェクトされた細胞株は、（1）wtEGFRです - ヒト野生型EGFRを過剰発現する、と（2）ΔEGFR - その構成的に活性EGFRの変異体である。検出の容易さのために、レトロウイルスは、リボソーム結合（IRES）および緑色蛍光タンパク質（GFP）のための内部サイトに続いて興味の遺伝子を持つバックボーンを運ぶ。 細胞培養：マウスC17.2のNSCとその変種が10％ウシ胎児血清（FBS）（インビトロジェン社）とM2培地（DMEM（Invitrogen社）、5％ウマ血清（HS）（Invitrogen社で6 -ウェルプレートで増殖させた）、および1％ペニシリン/ストレプトマイシン（Invitrogen社）。）細胞は、80％空気、5％CO 2で37℃に維持した。 マイクロ流体デバイス：プラスチックマニホールド、PDMSのスペーサー、所定の位置にデバイスを保持するためのステンレスフレーム。 イメージング倒立蛍光顕微鏡（オリンパスIX - 81）が激化CCDカメラ（オルカ、浜松）に関連して、使用されています。マイクロ流体デバイスは、自動XYZステージ上に搭載され、そして舞台は37 o Cでの温度を維持し、環境チャンバーで囲まれている自動XYZステージを使用して、同じ時点で撮影される同チップ3-4デバイスが通常あります。 維持流量オートはシンクとソースのチャンネルのすべてのフローを維持するために使用される8本の平行線（ワトソン - マーロウ205U/CA）と蠕動ポンプ。 <img src="/files/ftp_upload/old/674_2008_9_29_6/674_Figure-01.jpg" alt="図1" width="573" height="414" /> 図。 1様々なEGF濃度の三NSC株（親、wtEGFR、およびD EGFR）の運動はすべて軌道が5時間の映画を追跡から取得されます（wtEGF 100ng/mlの、4hourを除く）、およびすべてのトラックの原点があった比較のために（0,0）で再配置。 <img src="/files/ftp_upload/old/674_2008_9_29_7/674_Figure-02.jpg" alt="図2" width="576" height="546" /> 図。 EGFRの発現レベルと運動性の2相関 （）100ng/mlのEGFとマイクロ流体チャネルの表面上にwtEGF NSCの二つの画像。 左の画像は、蛍光画像であり、右が送信される明視野像である。 スケールバーは100μmのです、と チャネル幅は400μmである。 細胞は、発現したGFPの明るさによって2つの集団に分けられています。 細胞 青い円は調光器ですで、このように少ないEGFR発現のレベルを持っていると、赤の円内のセルはbrigherです、したがって、より高いEGFRの発現レベルを持っている。低および高EGFRの発現レベルと細胞の（b）の軌道。これらの軌道は4時間の映画から取られます。

<ol><li>Blow, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidics%3A+in+search+of+a+killer+application%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Microfluidics: in search of a killer application.</a> Nature Methods. 4, 665-670 (2007).</li>
<li>Shing-Yi Cheng, S. H., Wassweman, M. ax, Archer, S. hivaun, Shuler, M. ichael L., Wu, M. ingming <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+hydrogel-based+microfluidic+device+for+the+studies+of+directed+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22Lab-on-a-chip%22%5BJournal%5D)">A hydrogel-based microfluidic device for the studies of directed cell migration.</a> Lab-on-a-chip. 7, 763-769 (2007).</li>
<li>Pedersen, M. W., Tkach, V., Pedersen, N., Berezin, V., Poulsen, H. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+a+naturally+occurring+constitutively+active+variant+of+the+epidermal+growth+factor+receptor+in+mouse+fibroblasts+increases+motility%5BTitle%5D)+AND+%22Int+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Expression of a naturally occurring constitutively active variant of the epidermal growth factor receptor in mouse fibroblasts increases motility.</a> Int J Cancer. 108, 643-653 (2004).</li>
<li>Ayuso-Sacido, A., Graham, C., Greenfield, J. P., Boockvar, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+duality+of+EGFR+signaling+and+neural+stem+cell+phenotype%3A+Cell+enhancer+or+cell+transformer%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Stem+Cell+Research+and+Therapy%22%5BJournal%5D)">The duality of EGFR signaling and neural stem cell phenotype: Cell enhancer or cell transformer.</a> Current Stem Cell Research and Therapy. 1, 231-238 (2006).</li>
<li>Eisenbach, M., Constantinou, C., Aloni, H., Shinitzky, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Repellents+for+Escherichia+coli+operate+neither+by+changing+membrane+fluidity+nor+by+being+sensed+by+periplasmic+receptors+during+chemotaxis%5BTitle%5D)+AND+%22J+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Repellents for Escherichia coli operate neither by changing membrane fluidity nor by being sensed by periplasmic receptors during chemotaxis.</a> J Bacteriol. 172, 5218-5224 (1990).</li>
<li>Snyder, E. Y., Deitcher, D. L., Walsh, C., Arnold-Aldea, S., Hartwieg, E. A., Cepko, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotent+neural+cell+lines+can+engraft+and+participate+in+development+of+mouse+cerebellum%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Multipotent neural cell lines can engraft and participate in development of mouse cerebellum.</a> Cell. 68, 33-51 (1992).</li>
<li>Snyder, E. Y., Yoon, C., Flax, J. D., Macklis, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipotent+neural+precursors+can+differentiate+toward+replacement+of+neurons+undergoing+targeted+apoptotic+degeneration+in+adult+mouse+neocortex%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Multipotent neural precursors can differentiate toward replacement of neurons undergoing targeted apoptotic degeneration in adult mouse neocortex.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 94, 11663-11668 (1997).</li>
</ol>

図。 1は3つのNSC株、親細胞、wtEGFRとΔEGFR（コントロール）の軌跡を示しています。軌跡の各セットは、5時間の長い映画から得た。 EGFの濃度は〜10ng/mlだったとき、親の細胞の場合は、細胞の運動性は、ピーク、wtEGFR細胞について、細胞運動のピークは100ng/mlのまたは上記にシフトし、期待通りにΔEGFR細胞について、細胞の運動性は、EGFの濃度とは独立していた。 100ng/mlの持つwtEGF細胞はほとんどの運動性細胞である、彼らは約1.5倍の速さ10ng/mlと親細胞より移動。これは、（1）EGFRの過剰発現細胞の運動性を高めることを示し、（2）EGFリガンド - 受容体のbidingイベントの数は、細胞の運動性に直接影響を与えます。 ΔEGFRの細胞株では恒常的に活性化EGFRの変異体である。この変異体は、ヒト神経膠芽腫の約60％で表示されます。それは、恒常的活性リガンド非依存性キナーゼになった切り捨て細胞外ドメインを持っています。自己リン酸化の強さは、野生型EGFR（wtEGFR）4活性化リガンドと比較して（約10％）小さくなります。この根底にΔEGF細胞は親とwtEGFR（EGFの存在下で）よりわずかに高...

<table><tbody><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s Modified Eagle Medium (DMEM) (1X)</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>11971-025</td><td></td></tr><tr><td>CO2独立培地</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>18045-088</td><td>大気条件下でさまざまな上皮細胞、線維芽細胞、およびリンパ球系細胞株の増殖をサポートするのに適した、HEPESを含まない独自の培地。L-glutamineを含まない</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>25200-072</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>14190-144</td><td>リン酸緩衝生理食塩水、カルシウムおよびマグネシウム不含</td></tr><tr><td>Pen/Strep</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td>0.85%生理食塩水を用い、penicillin G (sodium salt)およびstreptomycin sulfateを含有。1mlあたりpenicillin (base) 10,000 unitsおよびstreptomycin (base) 10,000 gを含む</td></tr><tr><td>FBS</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>10437-028</td><td>ウシ胎児血清、Qualified</td></tr><tr><td>馬血清</td><td>試薬</td><td>Invitrogen</td><td>16050-130</td><td>馬血清、EIA検査済み（陰性）血清</td></tr><tr><td>フィブロネクチン</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F0895</td><td>ヒト血漿由来フィブロネクチン、cold insoluble globulinとも呼ばれる</td></tr><tr><td>EGF</td><td>試薬</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>E4127</td><td>マウス顎下腺由来上皮成長因子、凍結乾燥品</td></tr><tr><td>アガロース</td><td>試薬</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP1356-500</td><td></td></tr></tbody></table>

アガロースゲルベースの​​マイクロ流体デバイスを用いた神経幹細胞運動の評価

Assessing Neural Stem Cell Motility Using an Agarose Gel-based Microfluidic Device

マイクロ流体技術は、高分子のアッセイのために新たな成熟レベルに達している間は、細胞ベースのアッセイは、乳児の第1段階ではまだです。これは、1つは、従来の微細加工技術と材料を使用して、セルと互換性があり、安定した微小環境を作成できる難しさによるところが大きい。我々は、マイクロ流体デバイスのための基材として、新たな微細加工材料、アガロースゲルの導入を介してこの問題に対処しています。アガロースゲルは非常に可鍛性、および細胞の生存、およびそのためのセルベースアッセイのための理想的な材料のために必要なガスと栄養素の透過性です。我々は、アガロースゲルベースのデバイスは、細菌や好中球細胞遊走2を研究することに成功していることが以前に示されている。このレポートでは、つのパラレルマイクロ流体チャネルは、約1mm厚のアガロースゲル膜にパターニングされています。メディア/バッファ付き定数フローは、蠕動ポンプを使用して2つのサイドチャンネルに保持されます。細胞は、観察のためのセンターチャンネルに保持されます。サイドチャネルにおける栄養素や化学物質がサイドからセンターチャンネル、センターチャンネルの化学的環境に絶えず拡散なので簡単にサイドチャネルに沿った流れを介して制御されます。このデバイスを使用して、我々は神経幹細胞の動きは、様々な化学的条件下で容易に光学的にモニターできることを示している、との実験結果は、上皮成長因子受容体（EGFR）の過剰発現は、神経幹細胞の運動性を高めることを示している。神経幹細胞の運動性は、このように、腫瘍形成因子3細胞の攻撃性を評価するための重要なバイオマーカーです。 NSCの運動の根底にあるメカニズムを解読する神経発達の両疾患に、脳のがん幹細胞の浸潤への洞察が得られます。

我々は、上皮成長因子受容体（EGFR）の過剰発現は、小説アガロースゲルベースの​​マイクロ流体デバイスを用いた神経幹細胞（NSC）の運動性を高めることを示している。この技術は、ヒト神経幹細胞などの細胞源が不足している他の哺乳動物細胞系、に容易に適応することができ、時間のターンアラウンドが重要です。

マイクロフルイディクス技術は高分子アッセイにおいて新たな成熟段階に達しつつありますが、細胞ベースのアッセイは依然として初期段階にあります1。これは...

こんにちは、ケビン・ウォンです。コーネル大学バイオ流体研究室の工学修士課程に在籍しています。本日は、アガロースベースのマイクロ流体デバイスを用いて、マウス神経幹細胞に対するEGF（上皮成長因子）の影響を研究する方法についてお話しします。このデバイスは、基本的に幅150 µmの3本のマイクロ流体チャネルで構成されています。一方のサイドチャネルにEGFを、もう一方のサイドチャネルにバッファーをポンプで注入します。これにより、中央チャネルにわたって静的な線形化学勾配が形成されます。EGFはアガロゲル内を容易に拡散するため、神経幹細胞をセンターチャネルに播種し、その遊走の経過を顕微鏡で観察します。したがって、本デバイスは基本的に、チューブ接続用のすべての入口および出口を備えたプレキシグラスの上層と、その下に4つのパターンデバイスを含むアガロゲル膜で構成されています。これはPDMSスペーサーで囲まれており、これによりデバイス全体の厚さが一定に保たれます。PDMSとゲルは、ectでコーティングされたガラススライド上にアセンブルされます。これにより、細胞がガラススライドに接着しやすくなります。さらに、ステンレスプレートを使用してデバイス全体を固定し、ネジでデバイスを挟み込みます。野生型細胞株には、野生型EGF受容体を過剰発現させるレトロウイルスベクターを導入し、デルタ細胞株には、EGFリガンドがなくとも恒常的に活性化する変異型EGF受容体を導入しています。それでは、まずマイクロ流体デバイスの組み立て工程について説明します。まず、マスターのシリコンマイクロチャネルのレリーフ構造の周囲にPDMSスペーサーを配置しました。次に、Agaroseを0.3 g量り取ります。そして、CO₂インデペンデント培地を10 mL用意し、それをAgaroseに加えます。ピペッティングを行い、AgrosパウダーをCO2独立培地と混ぜ合わせます。これで電子レンジにかける準備ができました。ご覧の通り、Agrosは液状になりましたが、まだいくつかの顆粒が残っています。顆粒を溶解させ、気泡を取り除くために、全体をゆっくりと回転させます。次に、溶融したAgaroseをシリコンマスターのレリーフ構造の上に注ぎ、滅菌済みのガラススライドを取り出してPDMSスペーサーの上に置きます。このとき、Agaroseゲルの大部分の気泡を押し出すように、角度をつけて配置します。圧力を加え、Agaroseシェルが凝固するまで圧力を加え続けます。1〜2分後、凝固しました。ここで、スライド上の余分なAgaroseを取り除きます。次のステップは、ガラススライドをそっと滑らせて取り出すことであり、このガラススライドは廃棄して構いません。次に、あらかじめフィブロネクチンでコーティングしておいたガラススライドへ、パターン化されたハイドロゲルを慎重に転写します。具体的には、このプラスチック製滅菌シートを使用して、PDMSスペーサーと共にパターン化されたハイドロゲルを持ち上げ、チャネル側を下にしてスライドへと転写します。これがガラススライドにしっかりと固定されたので、プラスチック製マニホールドがチャネルに到達できるよう、個々のリザーバーに穴を開けます。これには小型の金属製穴あけパンチを使用します。これで、デバイスへの穴あけ作業が完了しました。マイクロチャネルの乾燥を防ぐため、CO2独立培地を 500 µL 加え、1〜2分間静置します。1〜2分後、余分な培地を除去し、パターン・アガロスのパンチ穴をプレキシグラス・マニホールドの入口および出口の穴に合わせて整列させます。穴が正しく配置されたら、しっかりと押し付けて密閉します。次に、ステンレス製マウントの上にプレキシグラス製マニホールドを配置し、ネジを用いてデバイスを緩やかに挟み込みます。ネジを締めすぎるとチャネルが潰れてしまうため、細心の注意を払います。また、内部のアグロスゲルのパターンがずれるのを防ぐため、時計回りにネジを締めていきます。1 mLの培地を吸引し、このシリンジを使用してデバイスのテストを行います。ご覧のように、各マイクロチャネルに液体を注入し、各出口から液体が出てくるかを確認しています。現在、組み立てたデバイスを顕微鏡の環境チャンバー内に設置しています。ここは37 °Cに維持されており、これによりデバイスを温めて、細胞を播種する準備を整えます。ご覧のように、すでに2本のペリスタルティックポンプ用チューブを装置に通してあります。現在は、実験の準備としてチューブ内をPBSでフラッシングしています。それでは、チューブのセットアップを行います。あらかじめ穴が開けられたキャップに、パラソルポンプのチューブを通します。各チューブには、入口と出口を識別できるように、それぞれ特定の数のノッチ（切り込み）が入っています。例えば、ノッチが4つあるチューブには、10 ng/mLの溶液を注入します。次に、EGF溶液のチューブをデバイスに取り付けます。各デバイスのノッチの数に応じてチューブを取り付けることで、取り込む溶液の種類と対応させます。次に、流出チューブを取り付けます。培地が実際に流出チューブを流れており、チャネル内に閉塞がないことを確認するため、透明なタイゴンチューブを使用します。それでは、ペリスタルティックポンプを起動します。それでは、センターチャネルへの細胞播種の手順を開始します。まず、センサーチャネル内の余分な培地を除去します。これで細胞が確認できます。細胞はすでにCO2非依存性培地中で懸濁されています。次に、センターチャネルの入口に60 µL、出口に20 µLを播種しました。これにより、重力駆動流によって細胞が播種されることが期待されます。この手順を他の2つの感度チャンネルでも繰り返し、細胞の定着が成功したか顕微鏡下で観察します。これで細胞がガラススライドに接着しました。数分後には細胞が広がり始め、固有の形態へと変化していきます。本日は、実際のデバイスの組み立て、試薬の調製、およびデバイス内での細胞遊走をイメージングするために使用した顕微鏡技術について解説しました。結論として、このデバイスが、特に臨床現場においてより幅広く適用されることを期待しています。図1の横軸はC 17.2細胞の軌跡を、縦軸は増加するEGF濃度を示しています。ここでは、同一のEGF濃度を用いて実験に使用したC 17.2細胞のさまざまな株の軌跡を示しています。親細胞のデータからは、10 ng/mLのEGF濃度勾配で運動性にピークがあることが分かり、これはより高いEGF濃度では受容体がリガンドで飽和したことを示しています。また、野生型のデータでは、100 ng/mLのEGF濃度で運動性の増加が見られます。これは、高濃度のEGFにおいて受容体が飽和していないことを示しています。EGF受容体を過剰発現するように設計されているため、この結果は妥当であると言えます。最後に、delta細胞株のデータから、細胞の遊走性はEGF濃度にほぼ依存しないことが示唆されます。変異型EGF受容体は、EGFの存在に関わらず活性化するように設計されているため、これは予想通りの結果です。

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出典: Scheidweiler, D., 他 流体装置と顕微鏡、フローサイトメトリーを組み合わせて、空間スケールを超えた多孔質培地内の微生物輸送を研究すること。 J. Vis.

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住セルイメージ投射アッセイ研究神経膠腫脳腫瘍幹細胞の遊走と浸潤に

機械的な力は、細胞の移動を制御するために重要です。このプロトコルは、ガラスマイクロピペットとマイクロマニピュレータを使用して変形できる弾性ヒドロゲルの使用を示し、細胞構造および移行の変化を引き起こすために局所的な剛性勾配を持つ細胞を刺激する。...

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アガロースゲルベースの​​マイクロ流体デバイスを用いた神経幹細胞運動の評価

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