2025年5月9日
新規抗HER2モノクローナル抗体を用いた検証済みのサンドイッチELISAアッセイを紹介します。このアッセイにより、 in vitro 培養細胞や血液や組織などのサンプルから、細胞結合および遊離したHER2タンパク質の正確な定量が可能になります。
私たちは、新しいモノクローナル抗体を使用した検証済みのサンドイッチであるELISAを紹介し、in vitro培養細胞および患者サンプルのHER2タンパク質の細胞結合および放出細胞外ドメインの正確な定量を可能にします。
このプロトコルは、診断および研究における循環 HER2 タンパク質の濃度と疾患の臨床症状を相関させるための正確で検証済みのアッセイの必要性に対処します。
アッセイの広い作業範囲、さまざまなサンプルタイプ、および結果の信頼性により、in vitroおよびin vivoモデルでの受容体状態の包括的な分析に新たな機会が開かれる可能性があります。
開発されたELISAは、がん組織から血液、腹水、粘液などのさまざまな人体排泄物に放出されるHER2の定量化に使用されます。
[講師]開始するには、細胞が80%のコンフルエントに達したらトリプシンを使用して細胞を分離し、別の15ミリリットルの円錐形チューブに集めます。自動セルカウンターを使用して細胞をカウントした後、1ミリリットルの増殖培地を含む12ウェルプレートにウェルあたり5細胞の5乗に10倍の3倍を播種します。培養物を5%の二酸化炭素を含む加湿雰囲気で摂氏37度でインキュベートします。24時間培養から、各細胞株の1つのウェルから培地を1.5ミリリットルのチューブに集めます。採取したサンプルを摂氏4度で10分間10,000 Gで遠心分離し、上清を新しいチューブに移して摂氏マイナス20度で保存します。各ウェルの残りの細胞を1ミリリットルの冷たいPBSで洗浄し、穏やかに吸引してPBSを廃棄します。次に、1%プロテアーゼ阻害剤を添加した200マイクロリットルのRIPAバッファーを各ウェルに加え、5分間インキュベートします。次に、細胞スクレーパーで細胞をこすり落とし、数回ピペッティングして溶解物を混合して均質化します。溶解した細胞を新しいチューブに集め、0.8 x 40 mmの21ゲージ針が取り付けられた2ミリリットルのシリンジにサンプルをゆっくりと吸引します。5〜10回吸引した後、採取したサンプルを10,000 Gで摂氏4度で10分間遠心分離し、上清を新しいチューブに移して摂氏マイナス20度で保存します。抗HER2捕捉抗体をコーディングバッファーで1ミリリットルあたり1マイクログラムに希釈します。マルチチャンネルピペットを使用して、100マイクロリットルの捕捉抗体溶液を96ウェルELISAプレートの各ウェルに加えます。プレートをシールフィルムで覆います。プレートを摂氏4度で一晩インキュベートします。一晩インキュベートした後、プレートを室温で水平マイクロプレートシェーカーに1時間置きます。マイクロプレート洗浄機を使用して、コーティング溶液を吸引し、各ウェルを300マイクロリットルのPBSTで3回洗浄します。次に、マルチチャンネルピペットを使用して、PBS中の5%脱脂粉乳を含む100マイクロリットルのブロッキングバッファーを各コーティングウェルに加え、非特異的結合部位をブロックします。次に、検量線とポジティブコントロールを準備します。1ミリリットルあたり1ミリグラムの2マイクロリットル、HER2ストック溶液を1,998マイクロリットルのPBSに加えて、1ミリリットルあたり1000ナノグラムの作業標準溶液を作成します。標準2の場合は、500マイクロリットルの標準1を500マイクロリットルのPBSに加え、完全に混合して50ナノグラム/ミリリットルの濃度を達成します。連続希釈を調製して、標準試料 3 から 7 を生成します。次に、PBS細胞溶解物と既知のHER2濃度をスパイクした培地を使用してマトリックスサンプルを調製します。細胞ライセートを2.5マイクロリットルのライセートと5ミリリットルのPBSで1〜2000に希釈して、検出限界を下回るHER2レベルを取得します。1ミリリットルあたり2ナノグラムの溶液を調製するには、8マイクロリットルの標準1を392マイクロリットルのPBS培地または細胞溶解物に加え、完全に混合します。シングルチャンネルピペットを使用して、100マイクロリットルの標準PBSブランクとテストサンプルをそれぞれ3回ずつ、コーティングおよびブロックされたELISAプレートのそれぞれのウェルに加えます。湿度チャンバーで摂氏37度で1時間後、マイクロプレート洗浄機を使用してプレートを洗浄します。抗体結合を検出するには、PBS中のビオチン化検出抗体を1ミリリットルあたり1マイクログラムの作業濃度に希釈します。次に、マルチチャンネルピペットを使用して、この検出抗体溶液を100マイクロリットルの各ウェルに加えます。次に、AVIDおよびHRP結合体1を40ミリリットルのPBSTで40,000に希釈します。マルチチャンネルピペットを使用して、100マイクロリットルの希釈したコンジュゲートを各ウェルに加えます。プレートをインキュベートして洗浄した後、マルチチャンネルピペットを使用して、100マイクロリットルの3,3 5,5テトラメチルベンジジン基質を各ウェルに加え、カラーメトリック反応を開始します。次に、プレートをシールフィルムで覆います。 プレートを摂氏37度で1〜5分間インキュベートし、発色を監視しながら光から保護します。所望の色の強度に達したら、各ウェルに100マイクロリットルの停止溶液を加えて反応を終了します。最後に、マイクロプレートリーダーを使用して450ナノメートルの吸光度を測定します。4 つのパラメーターの検量線を使用して、曲線式に基づいてサンプル濃度を計算します。開発されたサンドイッチであるELISAは、HER2タンパク質の作業範囲が1.56〜100ナノグラム/ミリリットルであることを実証し、決定係数は1で優れたマッチングを示します。培地中のHER2濃度は、72時間で最も高い値で、すべての試験細胞株で時間とともに増加しました。SK-OV-3およびSK-BR-3細胞は、24時間で培地中のMDA-MB-231細胞と比較して、それぞれ約10倍および50倍高いHER2濃度を示しました。同様に、ライセート中のHER2レベルは、SK-OV-3とSK-BR-3でそれぞれ約3倍と5倍高かった。興味深いことに、細胞培養培地には、全細胞溶解物に含まれる膜結合タンパク質と比較して、1000倍低い濃度の試験抗原が含まれていました。
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この記事では、新しい抗HER2モノクローナル抗体を利用したサンドイッチELISAアッセイについて説明しています。このアッセイにより、in vitroで培養された細胞や血液、組織などの様々なサンプルからの細胞結合および遊離HER2タンパク質を正確に定量化することができます。
Validated quantification of both cell-bound and released HER2 using a sandwich ELISA directly addresses the need for robust biomarker measurement in oncology discovery and translational research. This capability enhances predictive confidence in target engagement and supports risk-adjusted decisions at key inflection points in the oncology pipeline. Reliable HER2 quantification across diverse sample types enables portfolio-wide standardization and cross-study comparability.
This validated ELISA method integrates from early discovery through translational research, supporting lead identification and preclinical evaluation in oncology pipelines.