2025年9月12日
この研究では、全マウント腸組織と多光子顕微鏡を使用して分泌された粘液を定量化し、塩化カルバモイルコリンなどの刺激に応答した粘液動態の正確な体積分析と視覚化を可能にする 3D イメージング法を提示します。
私たちの研究は、粘膜組織への微生物注入のメカニズムに焦点を当てており、粘液がこれらの相互作用を調節する上で重要な役割を果たすことを強調しています。従来の2次元粘液の定量化では、空間的・体積的な詳細が見落とされています。当プロトコルは、既存の手法で見落とされていた分子介入による構造的および分布の変化を明らかにし、正確な3D解析を可能にします。
このプロトコルはホルモンイメージングと3D定量化を組み合わせ、従来の2D評価を超えた多様な実験条件や分子介入に適用可能な、腸粘液構造の強固で再現性の高い測定を提供します。まず、6〜8週間の麻酔をかけたマウスを温熱パッドの上に置き、体温を保ちます。マウスの皮膚表面をアルコールで消毒し、左下腹部に切開をして盲腸を露出させつつ麻酔を維持させます。
次に、回腸または近位結腸を特定します。腸ループを滅菌ガーゼにかけてください。無菌PBSで洗い流し、両端を動脈クランプで固定して3センチメートルの閉じたループを作ります。
麻酔下で、結紮された腸ループに200マイクロリットルを超えない無菌PBSまたはカルバモイルコリン塩化物試薬を注射します。30分の処置後、安楽死した動物から腸ループを採取します。鉗子を使って腸ループを持ち、無菌PBSで優しくすすぎます。
腸ループを縦方向に切り開き、切断されていない部分を小さく残し、組織を無菌PBSで再度洗い流します。6センチの皿で組織を平らにし、残りの部分を切り開きます。銅線のセグメントを使ってアガロースの基座に固定します。
次に、4%パラホルムアルデヒド溶液10ミリリットルを加えて、組織を12〜24時間固定します。培養後、パラホルムアルデヒド溶液を除去し、組織をPBSで少なくとも3回洗浄して残留したパラホルムアルデヒドを除去します。次に、組織をPBSに0.4%トリトンX-100および3%BSAを補足したブロッキングバッファー10ミリットルに浸し、4度の温度で12〜24時間保存します。
ブロッキングバッファを取り除きましょう。小麦胚凝集素とファロイジンを含む染料溶液で組織を染色します。PBS処理済みの小腸および大腸組織では、WGA陽性粘液は主に上皮表面のゴブレット細胞内に局在していました。
カルバモイルコリン塩化処理後、腸腔内のWGA陽性粘液の量は小腸および大腸の両方で目に見て増加しましたが、粘液は連続した層を形成するのではなく散発的に分散していました。小腸および大腸の両方でカルバモイルコリン塩化処理後、WGA陽性粘液のゴブレット細胞体積が有意に減少し、能動分泌を示しました。PBS処理組織内のすべてのゴブレット細胞粘液量は1,000立方マイクロメートル未満でした。
1,000立方マイクロメートルを超えるWGA陽性の物質は、腔内分泌粘液として分類されました。カルバモイルコリン塩化処理は、小腸および大腸組織の両方で分泌される粘液の総量を約5倍から20倍に増加させました。
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本研究では、全層組織と多光子顕微鏡を用いた、腸粘液の3Dイメージングのための新しいプロトコルを提示します。これにより、さまざまな刺激に反応して起こる粘液の動態を、精密な体積分析および可視化することが可能になります。
腸管粘液の正確な三次元定量化は、粘液分泌の絶対的な体積および空間分析を可能にすることで、創薬探索段階における胃腸研究の決定的な欠落を解消します。この機能により、粘膜バリア機能の評価や分子介入の影響に関する予測精度が向上し、初期のターゲットバリデーションおよびメカニズム解明によるリスク低減において、リスク調整後の意思決定を支援します。本プロトコルの再現性と定量的な出力は、粘膜生物学および免疫学ポートフォリオにおけるパイプライン進展のための基盤的なツールとして位置付けられます。
本プロトコルは、胃腸研究のワークフローにおいて仮説検証、定量的な読み取り、およびメカニズムのデリスキングを可能にすることで、創薬から前臨床までのコンティニュアム(連続体)に組み込まれます。