2025年11月21日
本プロトコルは、アクチノマイシンD処理、RT-qPCR、非線形回帰解析を用いて、マウス胚性幹細胞における遺伝子間および遺伝子内強化RNAの安定性と半減期を定量的に測定します。位置特異的な正規化戦略を組み込み、文脈依存的なeRNA崩壊動態を正確にモデル化します。
私たちの研究室は、分子レベルでのRNA修飾とエンハンサーに焦点を当てたエピジェネティクスを研究しています。最近、RNAのm5C酵素Nsun2がマウス胚性幹細胞内の遺伝子内強化剤によって調節されることが明らかになりました。まず、6ウェルからなる培養皿のウェルに1ウェルあたり2ミリリットルのゼラチンをプレコーティングします。
プレートを37度の温度で10分間孵化します。各ウェルからゼラチンを吸引し、1ミリリットルのPBSで1回洗浄します。プレートは少なくとも15分間紫外線の下で消毒してください。
1ウェルあたり2ミリリットルの完全培養培地を用いて、ゼラチン被覆プレートにマウス胚性幹細胞を種付けします。細胞は37度の環境で、5%二酸化炭素を含んだ加湿インキュベーターで培養します。次に、アクチノマイシンDをジメチルスルホキシドに溶かし、1ミリグラム/ミリリットル濃度のストック溶液を準備します。
細胞を種まく2日後または収穫日に、アクチノマイシンDストック溶液を培地に加えます。治療後0分、5分、10分、15分、20分、30分でサンプルを採取 転写停止後、増強RNAの発現は5分以内に急激に減少し、メッセンジャーRNAはより緩やかに減少し、30分間は比較的安定した状態を保ちました。半減期解析により、エンハンサーRNAの半減期は約2〜3分、メッセンジャーRNAは60分を超える有意に長い半減期を持つことが明らかになりました。
Pou5f1の遺伝子間エンハンサーRNAについては、TBPメッセンジャーRNAへの正規化やゼロ分時のサイクル閾値への正規化で同様の半減期推定値が得られました。新生RNAシーケンスデータでは、Nsun2エンハンサー領域で陰性対照群と比較してRPKM値が上昇していることが示されました。RT-qPCR解析により、Nsun2エンハンサー領域におけるNsun2 2つの遺伝子間エンハンサーRNAの正規化発現が陰性対照群と比較して高いことが確認されました。
遺伝子間強化子に用いられる正規化方法は、陰の対照群に対する発現パターンがRPKMで観察されたパターンと整合しているため適切です。本研究は、急速に分解される増強剤の短い半線を測定し正規化する方法を提供します。遺伝子間および遺伝子内増強子活性を比較する明確な方法の欠如に対処します。
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本プロトコールでは、アクチノマイシンD処理、RT-qPCR、および非線形回帰分析を用いて、マウス胚性幹細胞における遺伝子間および遺伝子内エンハンサーRNAの安定性と半減期を定量的に測定します。コンテキスト依存的にeRNAの分解ダイナミクスを正確にモデル化するため、ポジション特異的な標準化戦略が組み込まれています。
マウス胚性幹細胞におけるエンハンサーRNA(eRNA)安定性の定量的な評価は、初期探索における転写調節ダイナミクスの理解における重要な欠落を埋めるものです。eRNAの分解キネティクスを正確に測定することで、メカニズム面でのリスク低減が可能となり、遺伝子調節エレメントのターゲットバリデーション戦略に有用な情報を提供します。この能力は、治療薬探索パイプラインに向けてエンハンサー活性を調節する際の予測的な信頼性を支えるものとなります。
この定量的なeRNA安定性解析法は、初期探索からリード化合物同定に至る連続的なプロセスに組み込むことができ、仮説検証とダウンストリームのアッセイ開発の両方を支援します。