2026年1月16日
現代の神経科学は、実験室の齧歯類や人間を含む多くの種の違いを探る必要があります。しかし、大きな脳を持つ哺乳類が関わると技術的な困難が生じます。このアプローチは、非常に異なる哺乳類における神経細胞集団の種間変異に対応し、進化的パターンを明らかにするための類似結果を生み出します。
脳の構造的可塑性は哺乳類間で著しく異なることが発見されました。したがって、体系的な定量的分析が明らかになる必要があります。私たちの体系的な分析は、非常に異なる脳を系統発生的な文脈で示す際にも同様の結果をもたらすことができます。
まず、20度の冷蔵庫から12ウェルのプレートを取り出し、浮遊する脳の断片を入れ、PBS溶液を入れたペトリ皿にスライスを取り出します。セクションを選択してスライドに配置します。組織学的に断片を染色した後、特定の神経解剖学的特徴に基づいて脳レベルを特定します。
レベル1から4に分け、同じ数の40マイクロメートル厚の連続断片を使い、各脳レベルから等間隔の冠状切片を3つ選び、免疫組織化学的染色を行います。ワークステーションのNeurolucidaソフトウェアを開き、選択した対物レンズを使ってスライドを顕微鏡下に置きます。低倍率で、ソフトウェアのトレースメニューにあるフリーハンドの輪郭線ツールを使って皮質層2を輪郭を描きます。
周囲をたどって皮質層2の長さを得ます。古皮質と新皮質の両方が含まれます。マーカーツールバーからセルカウント用の希望シンボルを選択します。カウントタイプ1細胞は、各関心領域で3〜9マイクロメートルの直径を持つ双極性の小さなソーマによって識別されます。
カウントタイプ2細胞は、複雑な樹状樹状の結晶を持つ大きなソーマと直径9〜18マイクロメートルの範囲で識別されます。次に、古皮質、新皮質、大脳皮質から、古皮質と新皮質のデータを組み合わせて得た系統解析のデータを収集します。皮質層2の周囲周長を、ミリメートル単位で測定し、輪郭測定ツールバーで確認できます。
同じスプレッドシートで、マーカーのツールバーに見えるタイプ1セルとタイプ2セルの数を集めます。各脳、領域、脳レベルごとにタイプ1およびタイプ2細胞を追加し、各レベルごとに3つのセクションを使い、合計12個のセクションを用いて細胞数を計算・記録します。収集した値を用いて、各領域の各セクションの線形セル密度を、セル数を周囲をミリメートルで割って計算します。
タイプ1またはタイプ2セル数を総セル数で割り、100を掛けて、タイプ1セルとタイプ2セルの割合を計算します。次に、各標本におけるタイプ1およびタイプ2細胞の割合を式を用いて計算します。スプレッドシートの平均関数を使って、各種ごとに検討された4つの標本間のこれらのパーセンテージの平均値を求めます。
線形細胞密度を用いて系統解析を行い、各冠状切片でカウントされた細胞数を用いて半球あたりの未成熟ニューロン総数を推定します。スプレッドシートの中央値関数を使って、12個の試料あたりの区画の密度中央値を計算します。中央値を中心指標として用いましょう。なぜなら、グループごとのサンプル数は比較的小さく、一部のグループは非対称分布を示すからです。
Neurolucidaソフトウェアのフリーハンド輪郭ツールを使って、主軸に垂直なソーマ直径に線を描きます。各種の少なくとも100個のDCX陽性細胞を、各脳領域の標本あたり25個を用いて測定し、タイプ1およびタイプ2細胞のソーマ直径範囲を得ます。次に、解析した種のリストを学名でノートに作成します。
リストをウェブサイトのTimetreeにアップロードしてください。orgを使い、NWKファイルとしてエクスポートします。Mesquite Project Softwareでは、NWKファイルをアップロードし、データを統合してPDFファイルとして保存します。
最後に、既に作成したデータシートに各種の脳サイズを示す列を追加します。DCX陽性の細胞密度の自然対数と脳サイズの自然対数を計算します。選択した統計ソフトウェアで統計解析を行い、取得したファイルをダウンロードしてください。
残差をデータシートの新しい列に入力すると、残差グラフを作成できます。研究対象となったすべての種の大脳皮質におけるDCX陽性細胞は、皮質層2に沿って単層を形成する地形的配列を示し、主に小型、単極性、または双極性細胞と、ごく少数の大型複合細胞が含まれていました。これらの細胞はKi67発現を欠いていますが、PSAN-NCAMおよびDCXを共発現しました。
そしてNeuNを発現する複雑な細胞の亜集団を含んでいました。皮質未成熟ニューロンの線密度は種によって大きく異なっていました。系統学的比較解析では、ローラシアテリア群はユーアルコントグリレス群よりも皮質未成熟ニューロンの密度が高いことが示されました。
皮質未熟なニューロン密度と脳体積の間に強い共分散が観察されました。そして皮質未成熟ニューロン密度と新皮質層2の周囲の間にも影響があります。私たちの発見は、異なる可塑性の種類や異なる脳領域間での進化的なトレードオフを明らかにすることができます。
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この研究は、異なる哺乳類間の神経細胞集団の種間変異を探求し、特に実験室のげっ歯類と人間に焦点を当てています。大脳を持つ哺乳類の研究における技術的課題に対処し、進化のパターンを明らかにする比較可能な結果を得ることを目的としています。
Quantitative cell counting across diverse mammalian brains addresses a critical gap in translating neurobiological findings from rodent models to humans. Standardizing comparative neuroanatomical measurements enhances predictive confidence in target validation and de-risks early discovery decisions. This approach supports portfolio strategies by enabling more accurate cross-species extrapolation of neuroplasticity and developmental processes.
This comparative cell counting method integrates from early discovery through preclinical research, supporting both hypothesis testing and translational continuity.