2026年4月24日
本研究は、土壌微生物バイオマスおよび菌類と細菌の比率を定量化するための迅速なddPCR法を提示します。ddPCR由来の微生物バイオマス炭素はクロロホルム燻蒸推定値との相関は弱いものの、追加の土壌サンプリングや厳しい手法を用いずに微生物の存在量を評価するための感度が高くスケーラブルな分子アプローチを提供します。
本研究では、ドロップレットデジタルPCRと全ゲノムシーケンスを用いて、さまざまな土壌タイプにわたる微生物バイオマスを正確に定量しています。従来の方法は大量の土壌サンプルと有害な化学物質を必要とします。ddPCRは絶対的な遺伝子およびバイオマス炭素定量のために最小限の土壌を使用します。
まず、土壌DNA抽出キットの試薬を組み立て、室温20度の環境で土壌微生物からDNAを分離します。2ミリリットルのビーズビードチューブを短く回して、ビーズが底に沈んでいるか確認します。土100ミリグラムを加え、次に800マイクロリットルのSolution CD1を加え、短時間ボルテックスして混ぜます。
ビーズミルホモジナイザーを秒速6メートルの速度で40秒間使い、試料を徹底的に溶解し、ビードビードチューブを室温で1分間遠心分離して機械式細胞溶解を実現します。まだ土壌粒子を含む可能性のある上清液を、きれいな2ミリリットルのマイクロ遠心分離機チューブに移します。溶液CD2を200マイクロリットル追加します。
渦を5秒間、遠心分離機を15,000gで1分間。最大700マイクロリットルの上清液を、ペレットを乱さずにきれいな2ミリリットルのマイクロ遠心分離機チューブに移します。上澄液に600マイクロリットルの溶液CD3を加え、5秒間ボルテックスします。
混合液650マイクロリットルをスピンカラムに積み込み、遠心分離機で15,000gで1分間加熱します。フロースルーを廃棄し、残った溶解液の処理を繰り返します。次に、スピンカラムをきれいな2ミリリットルの収集管に入れます。
スピンカラムに500マイクロリットルのソリューションEAを加え、室温で15,000gの遠心分離機で1分間行います。フロースルーを廃棄し、スピンカラムを同じ集水管に戻します。前述のように、スピンカラムと遠心分離機に500マイクロリットルのC5溶液を加えます。
流し抜けを捨てた後、スピンカラムを新しい2ミリリットルの収集管に入れ、室温で16,000gで2分間遠心分離機に入れます。スピンカラムを新しい1.5ミリリットルの洗脱チューブに入れます。スピンカラムのフィルター膜の中心に溶液C6を50〜100マイクロリットル加えます。
遠心分離機で15,000gで1分間。スピンカラムを廃棄した後、溶出液入りのチューブは4度の温度で保管します。製造元の指示に従い、蛍光計と二本鎖DNA広範囲アッセイキットを用いて抽出したDNAを定量します。
細菌や菌類の解析には、特定の16S rRNAおよび18S rRNAプライマーを選択してください。解凍後、すべての試薬を氷の上に渦巻きます。デジタルドロップレットポリメラーゼ連鎖反応(ddPCR)をセットアップします。
ドロップレットジェネレーターカートリッジ(DG8)をカートリッジホルダーに入れます。カートリッジ内の各サンプルウェルに合計20マイクロリットルの反応混合物を加えます。次に、Evagreen用のDroplet Generation Oilを70マイクロリットル、よくラベルの付いたオイルに加えます。
カートリッジをドロップレットジェネレーターに入れ、ガスケットで覆います。生成された液滴40マイクロリットルを96ウェルの半スカートプレートの各ウェルに移し、PCR増幅を行います。プレートシーラーを180度に設定したもので5秒間密封します。
熱サイクルプロファイルを設定し、加熱蓋を105度に設定します。PCR終了後、96ウェルプレートをプレートリーダーに移します。QuantaSoftバージョン2.1を使って振幅のしきい値を調整し、負の滴と正の滴を分けます。
各井戸から、DNAナノグラムあたりの遺伝子コピー数、抽出されたDNAナノグラムあたりの総遺伝子コピー数、抽出時に処理された土壌の乾燥重量あたりの遺伝子コピー数、土壌乾燥重量あたりの細胞数などのパラメータを評価します。さらに、1井戸あたりの乾燥重量あたりの細菌と菌類の割合に対応する微生物バイオマス炭素(MBC)を計算します。5か所の土壌DNAを三重分析したところ、サンプルあたり乾燥土壌あたり平均32ナノグラムから4,590ナノグラムの範囲の微生物DNA濃度が示されました。
土壌Bは16S rRNA遺伝子コピーが最も少なく、平均8.8×10の乗7の乗、18S rRNA遺伝子コピーは乾燥土壌1グラムあたり平均4.6×10の6の乗であった。対照的に、土壌Eは乾燥土壌1グラムあたり16Sおよび18S rRNA遺伝子コピーの平均数が4.4×10の9乗、2.5×10の9の乗と最も多く、他のすべてのサンプルと大きく異なっていました。菌類のコピーは土壌A、B、C、Dでほぼ同じでしたが、土壌Dの細菌個体数はBおよびEと有意に異なっていました。土壌Eで最も高い微生物含有量が観察され、土壌Bから採取したサンプルではA、D、Eと大きく異なって最も低い微生物含有量が観察されました。このプロトコルにより、微生物バイオマスおよび菌類と細菌の比率を通じて土壌群集の動態や構造を測定できます。
ドロップレットデジタルPCRに用いられる同じテンプレートDNAは、DNAシーケンスにも利用され、微生物群集解析や機能分析を可能にします。
本記事では、16Sおよび18S rRNA遺伝子を標的としたデジタルドロップレットPCR(ddPCR)を用い、土壌中の細菌および真菌の量を定量するための最適化されたワークフローを提示します。このプロトコルにより、微生物遺伝子コピー数の絶対定量、細胞数への換算、および微生物バイオマスカーボン(MBC)の推定が可能になります。本手法を従来のクロロホルム燻蒸抽出法と比較し、世界的に分散した5つの農業システムから採取した土壌を用いて実証しています。
土壌微生物バイオマスの正確な定量は、炭素循環や栄養塩代謝の生態学的な駆動因を理解する上で極めて重要であり、環境マイクロバイオーム研究におけるバイオ医薬品の探索に役立てることができます。デジタルドロップレットPCR(ddPCR)は、細菌および真菌の存在量を絶対的かつ高解像度で測定することを可能にし、初期段階の研究開発における堅牢な仮説検証とメカニズムのリスク低減を支援します。この分子生物学的アプローチにより、土壌由来の微生物システムを扱うトランスレーショナル研究における予測の信頼性が向上します。
このddPCRベースのワークフローは、環境およびマイクロバイオームに焦点を当てたR&Dの、探索から前臨床に至る一連の流れに統合されます。