2026年3月10日
ここでは、細胞に対して等方的および一軸のひずみ波形を適用しつつ、基質上で培養を支持し、剛性を調整可能かつタンパク質行列をカスタマイズ可能な新しい装置として紹介します。このシンプルで経済的なプラットフォームにより、研究者は基礎研究から疾患関連の文脈において、機械的な手がかりがどのように細胞機能を調節するかを調査できます。
私たちの目標は、低コストのホバーマンに触発された顕微鏡対応の細胞伸縮装置を開発し、機械的伸縮が細胞機能にどのように影響するかを調査することでした。この装置により、研究者は心臓の鼓動や呼吸する肺などの生理システムを模倣し、機械的刺激に対する生命細胞の反応を研究できます。適切な場合、個人用防護具を備えて始めましょう。
シルガード184のベースとキュアリング剤をプラスチック製の皿で10対1の割合で混ぜます。舌圧子を使って、成分を2〜3分間激しく混ぜます。その後、皿をガス除去室に1時間置きます。
次に、準備済みの3Dプリント型を取り、PDMS混合物1.3グラムを等方型に加えます。次に、PDMS混合液を0.5グラムのユニアキシャル型に加えます。ジェルを型に均等に塗り、充填した型のガスを1時間抜き取ります。
型の中のゲルを室温の平らな面に2時間沈着させます。その後、60度のオーブンで一晩カビを硬化させます。次に、NuSilゲル8100のAとBを等しい割合で混めます。
結合ゲルをシルガード184架橋剤と総体積の0.36%で混合し、基質剛性13キロパスカルにします。硬さ0.3キロパスカルの柔らかい基質を作るには、架橋剤の添加を省き、溶液を15分間タンブルで混ぜます。NuSil混合物を脱ガスチャンバーに入れて30分間脱ガスします。
次に、カスタム型からPDMSジェルを慎重に取り出し、破れずに40ミリのカバースリップに置きます。次にPDMSゲルをスピンコーダーに入れます。NuSil混合物を100マイクロリットルのピペットで、等方性PDMSゲルの負の領域に注ぎます。
次に、NuSil混合物50マイクロリットルを単軸PDMSゲルの負の領域にピペットします。その後、7Gで50秒間コードが続きました。厚さ100マイクロメートルに達すること。
被覆されたゲルを室温の平らな面に2時間沈着させます。ジェルをオーブンに入れ、60度で一晩硬化させます。次に、弾性細胞培養ウェルでヒト気道・平滑筋細胞を種付けし、標準的な条件下で培養します。
その後、細胞をFLIPRカルシウム6溶液と混合して画像撮影を行います。牽引力測定のために、PDMS NuSilゲル基板に蛍光ビーズの層を塗り、基準マーカーとして使います。HBSSで直径1マイクロメートルの赤色蛍光カルボキシレート修飾微小球の0.025%溶液を準備します。
ボルテックスミキサーを使ってビーズ溶液を10秒間ボルテックスします。次に、880マイクロリットルのビーズ溶液を等方性ゲルにピペットします。ビーズ溶液を420マイクロリットル、ユニアキシャルゲルに加えます。
ゲルを室温で1時間培養した後、ビーズの分布を保つために慎重にビーズ溶液を取り除きます。その後、綿棒や実験室用ワイプでジェル表面の残留溶液を優しく吸い取ります。次に、カメラ、ライトエンジン、10倍のドライ対物レンズを備えた逆立顕微鏡を使用します。
励起を475×40ナノメートル、発光を555×50ナノメートルに設定します。ストレッチ実験中に2ヘルツのフレームレートで16ビット画像を取得します。次に、ストレッチャーに等方性ゲルを置き、10倍のドライ対物レンズを備えた逆立顕微鏡で蛍光ビーズを画像化します。プレストレッチ状態で画像をキャプチャします。
ストレッチプロトコル全体を通じて、基板の中心部で継続的に画像を撮影します。必要に応じて、顕微鏡を伸ばした位置で再焦点を合わせてから画像を撮影します。フリエ牽引力顕微鏡に基づくカスタムMATLABコードを用いて画像を解析し、変位ベクトルと対応する平面応ずみ場を計算します。
データを最終試験の平均値として表現します。240マイクロメートルの変位を加えると、蛍光ビーズが中心から放射状に外側にずれました。牽引力顕微鏡法により、中心から外側に放射し距離とともに大きさが増す等方性変位場が明らかになりました。
等方変位場は均一な平面転み場を生成しました。変位を1000マイクロメートルに増加させると、変位ベクトルの大きさが増加しつつ、半径方向の方向は維持されました。1000マイクロメートルの対応するひずみ場は、径向対称を保ちながら大きさが増加しました。
250マイクロメートルの変位を受けた単軸ゲルでは、変位ベクトルは主に単軸に沿って整列し、単軸軸ねじれと一致しました。ひずみ波形はプログラムされたモーターの変位を密接に反映し、3回の繰り返しサイクルにわたって同期を維持しました。最大変位時のひずみ値は3つの独立したサンプル間で一貫していました。
最大5,555マイクロメートルまでの一時的な変位を適用すると、0.1%以上から12%までのひずみが生成されました。0.5%の一時的なひずみは細胞内カルシウムの増加を誘発し、伸ばした後の蛍光強度の向上として明らかになりました。担架を用いて、研究者は生細胞カルシウムイメージング、牽引力顕微鏡検査を行い、等方性または単軸伸縮に対する細胞の機械的応答を定量化できます。重要なステップは、ゲルが水平面で硬化するようにすることです。なぜなら、厚さが不均一になると基質のピントがずれ、ライブイメージング時に光学的鮮明さが低下する可能性があるからです。
今後の研究では、伸展誘発性細胞骨格再配置、喘息や肺損傷に関連する病的ストレス状態、多様な細胞タイプを対象に調査できる可能性があります。
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本記事では、ホーバーマン機構に着想を得た、低コストで顕微鏡に対応した細胞伸展デバイスの開発と応用について紹介します。このデバイスにより、研究者は剛性を調整可能なエラストマー基板上で培養された接着細胞に対し、制御された等方的または一軸的な機械的歪みを加えることができ、機械的刺激に対する細胞応答のライブイメージングおよび定量分析が可能になります。本プラットフォームの有用性は、ヒト気道平滑筋細胞を用いて実証されており、機械的伸展下における細胞内カルシウムダイナミクスおよび細胞牽引力の測定が行われています。
メカノトランスダクション(機械刺激受容)は、疾患モデリングおよびターゲットバリデーションにおける重要な軸ですが、ほとんどのin vitroシステムは生理学的妥当性や定量的な厳密さに欠けています。本プラットフォームは、接着細胞に対してプログラム可能な生理学的妥当性のある機械的刺激を、ライブイメージングおよび定量的リードアウトとともに提供することを可能にし、早期創薬およびトランスレーショナルリサーチにおける予測の信頼性を向上させます。そのモジュール性と再現性により、バイオファーマの研究開発(R&D)におけるメカニズムのデリスキングやポートフォリオの優先順位付けに再利用可能な機能として位置付けられます。
本プラットフォームは、定量的出力を伴う仮説駆動型のメカノトランスダクション研究を可能にすることで、初期段階の発見、アッセイ開発、およびトランスレーショナルリサーチを橋渡しします。