1. 장 해리 및 미생물 종의 PCR 식별
1. 동물을 20°C에서 3-4일간 배양하여 굶주리게 하고 OP50-1(대장 균 OP50-1) 박테리아의 양을 줄입니다. 굶은 벌레 접시에 5mL의 M9 배지를 추가하세요.
2. 멸균 유리 피펫과 전구를 사용해 플레이트에서 M9+웜을 피펫으로 채취하여 멸균 15mL 원심분리관으로 옮깁니다.
3. 임상 원심분리기를 사용해 관 안의 벌레를 1000 x g에서 실온에서 30초 동안 회전시킵니다.
4. 멸균된 15mL 피펫을 사용해 튜브 바닥의 살아있는 벌레를 방해하지 않고 상원액을 제거합니다.
5. M9 + 0.05% Triton X-100 100 10mL를 추가하고, 튜브를 뉴테이터 위에서 20분간 배양하여 외부 미생물을 제거합니다. 벌레를 씻기 위해 네 번 반복하세요.
6. 마지막 세척 후, 멸균 피펫 팁을 사용해 100 μL 용액 내에서 펠릿 바닥을 흐트러뜨리지 않고 상원액을 제거합니다.
7. 멸균 피펫 팁을 사용해 M9과 벌레를 씨앗이 없는 NGM 플레이트에 옮기고, 벌레가 기어 다니는 동안 20분간 건조시켜 큐티클과 장에서 OP50-1을 제거하는 데 도움을 줍니다.
8. 건조판에 250 μL M9를 추가하고 유리 피펫을 사용해 M9+벌레를 새로운 시드 없는 NGM 판에 옮깁니다. 다시 말하지만, 접시를 마른 후 벌레들이 20분간 기어 다니게 하세요.
9. 플레이트에 250 μL M9를 추가하고, 깨끗한 시계 유리에 M9 + 웜 100 μL을 옮긴다.
10. 멸균된 26G 주사기 바늘 두 개를 사용해, 한 바늘로 벌레를 눌러 붙잡고 다른 바늘로 벌레를 절단하여 선충을 제거한다. 참수 후에는 장(과립)과 생식샘(투명한 상태)이 자연스럽게 몸 밖으로 나옵니다.
11. 한 바늘로 장을 누르고 다른 바늘로 절단하여 노출된 장자 일부를 잘라냅니다.
참고: 가능하다면 노르마스키 현미경, 형광 현장 하이브리다이제이션(FISH), 면역조직화학 등을 사용하여 관심 미생물이 뒤집힌 장에 여전히 존재하는지 확인하십시오.
12. 단일 해리된 장을 0.5mL PCR 튜브에 10 μL 멸균수를 넣어 옮긴다. 총 5개 이상의 PCR(중합효소 연쇄 반응) 튜브에 대해 반복하여 다양한 동물의 장을 포함합니다.
13. PCR 튜브를 -80 °C에서 최소 5분간 냉동합니다. 냉동실에서 PCR 튜브를 꺼내 샘플을 해동하세요.