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1. 장 내 정착 수준 결정
참고: 장 내 정착은 제브라피시 모델에서 가장 유용한 지표로, 다양한 콜레라 균주들의 상대적 적합도나 돌연변이 또는 유전자 결손의 효과를 비교할 수 있습니다.
1. 안락사
1. 실험이 원하는 종말에 도달하면, 감염수(보통 15mL 충분)를 채취하여 배설된 박테리아 수치와 설사(점액 분석, 단백질 함량, OD 등)를 측정할 수 있습니다.
2. 남은 물을 어망으로 (물고기를 모으기 위해) 표백제에 부어 물 속의 V. 콜레라를 죽입니다.
3. 물고기를 감염수와 336 μg/mL의 에틸 3-아미노벤조에이트 메탄설폰산염(트리카인)이 담긴 비커에 넣고, 이 트리카인 용액에 20분간 RT 양육시킵니다.
참고: 망사는 10% 표백제 용액으로 멸균되었습니다.
2. 해부
1. 생선 조리
1. 일회용 플라스틱 숟가락으로 트리카인 용액에서 생선을 떠서 해부 표면에 올려놓습니다.
2. 물고기의 배 쪽이 위를 향하게 하여 하턱을 통해 고정하고, 핀의 둔한 끝은 몸 중심에서 멀어지게 합니다. 항문 바로 뒤쪽, 역시 몸에서 멀어지도록 핀을 하나 더 꽂으세요.
2. 장관 노출
1. 70% 에탄올에 담근 보풀 없는 물티슈로 물의 배 표면을 닦아냅니다.
2. 메스와 바나스 가위를 70% 에탄올에 담근 후 불을 붙여 멸균한다.
3. 비늘을 관통하고 메스를 사용해 피부 바로 아래 배에 세로로 작은 절개를 한다. 장은 피부 바로 아래에 위치하므로 너무 깊게 절개하지 않도록 주의하세요.
4. 가위를 사용해 절개를 몸 전체를 따라 조심스럽게 확장하며, 피부 높이보다 깊지 않게 자르고 항문은 피합니다.
5. 가위로 물고기 머리 쪽으로 두 번 옆으로 잘라 절개 부위를 열어줍니다.
6. 측면 절개 양쪽 피부를 해부 표면에 고정하고, 핀을 몸에서 멀어지게 각도 내어 고정합니다.
참고: 핀 끝은 이전에 알코올로 불을 붙여 멸균한 상태였습니다.
3. 장 제거
참고: 장은 다른 장기 위에 창백하고 매우 가느다란 관처럼 보여야 합니다.
1. 소멸 후 전체 장관(보통 길이 12–15mm)을 제거한다. 장을 유리 구슬( 1.3.1–1.3.2 단계 참조)과 1x PBS 또는 LB 1mL가 들어 있는 균질화 튜브에 얼음 위에 넣습니다.
3. 균질 화
1. 균질화 튜브를 미리 준비하여 1mm 유리 구슬 ~1.5g을 2mL 나사 캡 튜브에 붓고(대략 절반 정도 채우기), 오토클레이핑으로 멸균합니다.
2. 멸균 LB 1mL 또는 PBS 1회 추가.
3. 제브라피시 장이 튜브에 추가된 후( 1.2.3.1단계), 캡을 아주 단단히 고정한 후 튜브를 보텍스 균질기에 고정합니다.
4. 최대 설정으로 1분간 균질화한 후 얼음에서 1–2분간 냉각합니다. 이 균질화 과정을 한 번 더 반복하면 완전한 균질화가 됩니다. 참고: 균질화를 위한 여러 대체 방법도 가능합니다.
4. 장 내 정착 수준 정량화
1. 균질액의 연속 희석을 위해 각 튜브에 900 μL LB 또는 1배 PBS를 첨가하여 튜브(소형 유리 시험관 또는 1.5 mL 마이크로 원심분리관)를 준비합니다. 각 물고기마다 5–6개의 튜브를 준비하고, 첫 번째 튜브에 100 μL의 균질물을 첨가한 뒤 혼합하기 위해 소용돌이로 섞은 뒤, 첫 번째 튜브에서 두 번째 튜브로 100 μL을 추가하여 장 균질류를 10배로 희석합니다.
2. 모든 희석액이 준비될 때까지 이 과정을 반복합니다.
3. LB 한천 판에 100–200 μL 희석액을 플레이트 부착하며, 스트렙토마이신 내성 균주 사용 시 100 μg/mL 스트렙토마이신과 40 μg/mL X-gal(5-브로모-4-클로로-3-인돌릴-β-D-갈락토피라노사이드)을 포함합니다. 플레이트를 30°C에서 16–18시간 배양합니다.
4. 하룻밤 배양 후에는 자동 집체 계수기를 사용하거나 수동으로 집단을 세어 판에 V. 콜레라 군락을 세어; 집단을 표시하는 것이 마커 팁으로 유용합니다.
5. 플레이트 수에 현탁액의 희석 계수를 곱하여 피판된 부피를 고려하여 어류 장당 CFU를 산출합니다.