방법 논문

리스테리아 모노사이토제네스 꼬리정맥 주입 후 마우스 심장 내 박테리아 부하 정량화

2026년 3월 31일

이 논문에서

초록

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출처: McMullen, P. D., Freitag, N. E. 리 스테리아 모노사이토제네를 이용한 감염 생쥐의 심장 세포 배양 내 박테리아 침범 및 심장 정착 평가. J. Vis. 경험 (2015)

이 영상은 쥐의 꼬리정맥에 리스테리아 모노사이토제네스 를 주입하여 전신 감염을 확립하는 과정을 시연합니다. 이 영상은 박테리아 순환, 장기 정착, 그리고 조직 균질 처리, 연속 희석, 플레이트 부착을 통한 심장 내 박테리아 부하 정량화를 보여줍니다.

프로토콜

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동물 모델이 포함된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 심사 위원회에서 검토되었습니다.

1. 꼬리 정맥 주사를 통한 쥐에 리스테리아 모노사이토제네스 접종 및 간, 비장, 심장 내 박테리아 부하 평가

참고: 모든 동물 관련 작업은 CDC 생물안전 2단계 지침에 따라 수행됩니다. 쥐는 보통 일주일 전에 주문되어 5마리의 동물과 함께 우리에 넣습니다. 쥐들은 주입 전 4일간 새로운 실험실 환경에 적응하도록 합니다. 이 실험들은 6-8주 된 암컷 스위스-웹스터 쥐를 5마리씩 한 우리에 장벽 환경에 넣고 제한 없는 식단을 먹였다.

  1. 뚜껑과 먹이/물통을 열기 위해 한 번에 한 마리씩 쥐를 준비하고, 우리를 열 램프 아래에 5분간 두세요. 이 과정은 꼬리 정맥을 확장시켜 주사 시술을 더 쉽게 할 수 있게 합니다.
  2. 주사 중 동물을 제지하기 위해 한 마리의 동물을 제거해 하네스(또는 끝이 잘린 매관 형태)에 착용하세요.
  3. 주사 부위를 알코올 패드로 청소하고 알코올이 증발하도록 기다려 두세요. 이 방법은 부위를 정화할 뿐만 아니라 꼬리 정맥을 더욱 확장시킵니다.
  4. 27.5게이지 바늘이 장착된 1ml 주사기를 사용해 원하는 배양액 200μl을 꼬리정맥에 부드럽게 주입합니다.
  5. 주사 후 발생할 수 있는 출혈을 막기 위해 거즈를 사용하고, 동물을 새 우리에 넣으세요.
  6. 이 과정을 남은 동물과 품종에 대해 반복합니다. 각 우리에 접한 품종을 반드시 라벨링하세요.
  7. 매일 동물들을 점검하며, 아픈 것으로 보이는 동물을 제거하고 희생시키세요. 동물이 아픈 징후를 보이지 않는다면, 감염이 진행된 후 72시간 동안 모든 동물을 희생시키도록 두세요.
  8. 희생 시에는 모든 호흡이 멈출 때까지 병에 담긴CO2 마취를 사용한 후, 경추 탈구를 사용해 동물이 완전히 죽었음을 확인시켜야 합니다.
  9. 희생 후 동물들을 조직 배양 후드로 옮겨 해부합니다.
  10. 해부 블록을 사용해 동물의 각 다리를 굵은 바늘로 고정하고, 70% 에탄올을 분사하여 포화 상태가 되도록 하세요.
  11. Y 자형 절개를 통해 복부와 흉부 피부를 뒤로 자르는데, 이 절개는 질 개구에서 상골 돌기까지 이어지고, 그 후 각 팔의 겨드랑이까지 이어집니다.
  12. 피부를 뒤로 젖히고 각 다리의 바늘을 제거해 해부를 열어 두세요.
  13. 복막을 부드럽게 절단하여 장, 위, 간, 비장을 노출시킵니다.
  14. 먼저 간 상단의 간정맥과 관상인대를 절단하여 간을 제거하기 시작하세요. 추가 인대는 간 아래에 위치해 소장의 첫 번째 부위와 등 근육과 연결됩니다.
  15. 간을 50ml 팔콘 튜브에 5ml 멸균 ddH2.0에 넣으세요.
  16. 다음으로, 비장을 분리하여 혈관과 인대를 부드럽게 절단하여 제거합니다. 비장은 간보다 더 쉽게 제거됩니다. 비장을 5ml 멸균 ddH20이 들어 있는 별도의 팔콘 튜브에 넣으세요.
  17. 횡격막을 찾아 갈비뼈를 따라 부드럽게 자르면서 흉부를 시각화하세요. 흉골 돌기와 흉골을 목 높이까지 절단하여 흉부를 열어 심장과 폐를 노출시킵니다.
  18. 겸자를 사용해 심장 꼭대기를 부드럽게 잡고 대동맥과 폐혈관이 장력을 갖도록 들어 올립니다. 이 혈관들을 잘라서 심장을 풀어주세요.
  19. 심장을 50ml 팔콘 튜브에 넣고, 그 안에 5ml의 멸균 ddH2.0이 들어 있습니다.
  20. 쥐 사체를 버리고, 각 장기마다 5ml 멸균 ddH2.0이 포함된 깨끗한 팔콘 튜브를 사용해 모든 동물에게 이 과정을 반복하세요.
  21. 모든 장기를 제거한 후에는 작업대를 청소하고 작업대로 돌아가세요.
  22. 5마리 쥐의 각 장기 세트별 균질제를 세척하고 멸균하는 데 사용할 5개의 관 세트를 준비하세요(, 5개의 간 5개 세트, 5개의 비장용 5개 튜브, 5개의 심장 5개 세트). 각 튜브 4개에는 30ml 멸균 DDH20, 1개는 30ml 90% EtOH로 채워야 합니다.
  23. TissueMaster(또는 동등한 균질기)를 사용해, 1.21단계에서 준비한 튜브에 균질기를 담가(작동 중) 프로브를 세척하는 방법:
  24. 튜브 1 (ddH2O) 튜브 2에서 5초 (ddH2O) 튜브 3에서 5초 (EtOH) 튜브 4에서 5초 (ddH2O) 튜브 5초 (ddH2O)
  25. 균질제를 사용해 최소 2분 이상 또는 장기의 보이는 부분이 사라질 때까지 한쪽 간을 균질화합니다. 핀셋을 사용해 프로브에서 큰 이물질을 제거하세요.
  26. 설명한 청소 과정을 반복하세요.
  27. 다른 간에도 균질화 과정을 반복하며, 설명된 방법으로 각 간 사이에서 프로브를 세척하세요.
  28. 모든 간이 완전히 균질화된 후에는 간을 위한 세척관(1-5)을 버리세요.
  29. 비장과 심장 모두에 대해 균질 및 세척 과정을 반복하며, 각 장기 시리즈마다 새로운 세척관을 사용하세요. 세척관이 탁해지면 버리고 새 튜브로 교체하여 시리즈를 마무리하세요.
  30. 모든 장기가 균질화된 후, 균질제에 마지막으로 세척 사이클을 한 번 더 하고 잘 건조시켜 보관하세요.
  31. 각 기관의 약 200μl을 96웰 플레이트의 개별 웰에 배치합니다.
  32. 장기 샘플에 대해 연속 희석을 수행하는데, 1:10 희석을 연속으로 하여 최대 1:10,000 희석(간 및 비장) 또는 최대 1:1,000 희석(심장)까지 희석합니다.
  33. 희석 계열을 미리 데운 LB 한천에 스팟 플레이트로 바릅니다. 또한 희석되지 않은 각 장기와 플레이트를 각각 20 ul 추출하여 별도의 LB 한천 플레이트에 올려 약한 정식 장기에서 CFU를 계수합니다.
  34. 균질화된 장기가 담긴 팔콘 튜브는 버리고, 희석 시리즈가 포함된 96웰 플레이트를 파라필름으로 감싼 후 -80 °C의 냉동고 상자에 보관합니다.
  35. 얼룩이 마르도록 하세요. 이 과정은 판을 후드에 넣고 뚜껑을 열어 빠르게 진행됩니다.
  36. 반점이 마른 후에는 플레이트를 37°C 인큐베이터에 하룻밤 넣어두세요.
  37. 다음 날 아침 각 지점의 군집 수를 세고 희석 수열을 사용해 장기별 박테리아 총 수를 계산하세요.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
디프코아가르2145102kg 과립 한천
체외 체외체 내LB 브로스 베이스12975-084루리아 육수 베이스 파우더 2kg (한천 제외)
팔콘96웰 U-바텀 플레이트35-3077비조직 배양 처리된 96웰 플레이트

재인쇄 및 허가

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