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방법 논문

감염 연구를 위한 쥐 비장 내 박테리아 부하 평가

247 조회수

2026년 2월 26일

이 논문에서

초록

출처: 마덴스파허, J. H. 및 페슬러, M. B. 쥐에서 실험적 세균성 폐렴을 유도하고 표현형을 구분하는 비침습적이고 기술적으로 비집약적인 방법. J. Vis. 경험 (2016)

이 영상은 감염된 쥐의 비장 내 박테리아 부하를 정량화하여 감염의 심각성을 평가하는 과정을 보여줍니다. 균질화된 비장은 연속적으로 희석되어 도판을 하여 총 박테리아 부하를 측정합니다. 그 결과 얻은 데이터는 전신 조직 내 숙주-병원체 상호작용에 대한 통찰을 제공합니다.

프로토콜

동물 모델이 포함된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 심사 위원회에서 검토되었습니다.

1. 구인두에서 발생클렙시엘라 폐렴의 기관내 흡인 마우스

  1. 쥐는 꼬리 표시, 문신 또는 기타 승인된 식별자로 고유하게 식별되도록 하세요.
  2. 이소플루란에서 쥐를 제거하기 전에 P200 피펫으로 박테리아 투여 접종액을 채취하여 절차를 신속하게 진행하세요. 이송 흡인 시 최상의 결과를 위해서는 넘침을 방지하기 위해 <100 μl의 부피를 사용하세요. 여기서는 2000 콜로니 형성 단위(CFU)/50 μl K. pneumoniae를 사용하세요.
  3. 쥐를 투명한 챔버에서 아이소플루란 가스(예: 1 L/min 유속 2% 아이소플루란)로 마취하거나 기관 지침에 따라 마취합니다. 함께 마취할 쥐 수는 실험자의 편안함 수준에 따라 결정되며, 보통 한 번에 1-2마리씩 이루어집니다. 호흡을 관찰하고 깊은 호흡이 보이고 호흡 사이에 2-3초가 있으면 마취 정도를 확인하세요. 참고: 휘발성(흡입) 마취제의 혼란 효과가 우려된다면, 대신 케타민/자일라진의 복막 내 주사로 마취를 할 수 있습니다. 위에서 설명한 방법에서는 깊은 마취가 몇 분밖에 지속되지 않습니다. 더 오랜 기간 마취가 유도될 경우, 안구 건조를 방지하기 위해 눈 연고를 사용해야 합니다.
  4. 마취 후에는 반쯤 누운 자세로 눕히고, 상악 앞니로 고무줄을 고정해 기울어진 플렉시글라스 보드의 핀 사이에 매달아 놓습니다(그림 1).
  5. 무딘 무딘 융기가 없는 겸자로 마우스 혀를 부드럽게 옆으로 당기고, P200 피펫으로 구강에 투여량을 주입하세요. 혀나 구인두에 외상을 유발하지 않도록 매우 주의하세요.
  6. 혀를 접은 채 장갑 낀 손가락으로 코를 부드럽게 막아 쥐가 숨을 들이쉴 때까지 기다립니다. 쥐가 두 번 이상 흡입할 때까지 코를 계속 덮고, 구강 안에 액체가 보이지 않을 때까지 계속 덮으세요. 코를 가리면 쥐가 박테리아를 폐로 흡입하도록 도와주는데, 쥐는 코로 숨 쉬는 것이 강렬하기 때문입니다.
  7. 쥐를 접종판에서 꺼내 다시 케이지로 돌아가, 마취에서 회복하는 동안 침대나 이물질이 콧구멍을 막지 않도록 등을 대고 눕히세요.
  8. 모든 쥐가 투여받고 마취에서 깨어나면, K. pneumoniae 에 주사된 쥐만 있는 칸막이나 방에 쥐를 가둡니다. 감염 후 48시간을 넘기면 체중을 포함한 쥐를 매일 모니터링하세요.
  9. 쥐가 48시간을 넘길 경우 매일 매시나 보충 가열을 사용하세요.

2. 폐 및 말초 조직의 박테리아 부하 측정

  1. 시작 전에: 폐와 비장에 1x 인산염 완충 생리식염수(PBS) 900 μl, 혈액에 1x PBS 90 μl 희석관을 준비하세요. 박테리아 배양용 라벨 플레이트를 실온에 두세요; 따라서 조직이 채취되면 균질화와 박테리아 배양 도금 사이의 시간이 최소화됩니다.
    참고: 흡인으로 인해 폐에 박테리아가 이질적으로 침착할 수 있기 때문에, 전체 기도 세포 또는 총(양측) 폐 세균 부하 분석에는 개별 마우스를 사용하는 것이 권장됩니다.
  2. 기관 지침에 따라 쥐를 안락사하세요. 여기서는 150 mg/kg 펜토바르비탈나트륨 또는 상급 용량의 상업용 안락사 용액을 치명적으로 주사한 뒤, 출혈을 시행하는데, 이는CO2 흡입과 경추 탈구로 인한 폐 합병증을 피하기 위함입니다.
  3. 비장을 제거하고 1x PBS 2ml에 넣으세요. 튜브를 얼음 위에 올려놓으세요. 각 조직과 쥐 사이에 에탄올로 기구를 깨끗이 청소하세요.
  4. 조직을 얼음 위에 균질화하고, 가능하면 샘플마다 교체할 수 있는 일회용 균질제로 만듭니다. 일회용 균질화 팁은 실험 간 재사용을 위해 오토클레이션할 수 있습니다.
  5. 조직이 균질화되면 연속 희석과 판을 수행합니다. 특정 조직/희석액의 샘플을 단일 트립틱 대두 한천(TSA) 플레이트에 분할선을 그려 샘플링합니다. 아래 판금 및 희석 제안은 다음과 같으며(모든 경우 10μl의 샘플이 판에 퍼집니다), 감염 후 24시간 부검을 기반으로 합니다. 48-72시간 샘플을 분석할 경우, 이후 시점에 박테리아 부하가 증가하여 더 많은 희석액을 도판해야 할 수 있습니다
    1. 비장의 경우, 균질화된 비장 100 μl을 멸균 1x PBS 900 μl에 연속적으로 첨가하여 1:10에서 1:100으로 희석합니다. 플레이트를 깨끗하게 균질화하고 두 희석을 모두 두 번 섞어 넣으세요.
  6. 스프레드 샘플을 잠시 건조시키세요.
  7. TSA 플레이트를 뒤집어 37°C 정식 인큐베이터에 하룻밤 보관하세요.
  8. 플레이트 양면과 각 희석 시점의 박테리아 집락 수를 평균하여 집집 박테리아 수를 결정합니다. 폐에 5ml, 비장에 2ml의 초기 희석을 고려하여 전체 조직 CFU를 산정합니다.

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결과

Figure_1.jpg

그림 1: 쥐 흡인성 폐렴 절차 게시판. 연구 마우스는 머리를 위로 등지고 보드에 붙여(, 반쯤 누운 자세) 앞니에 매달려 두 개의 핀 사이에 고정된 고무줄에 매달려 있습니다.

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재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
ATCC43816 
벡턴 디킨슨211825 
사내에서 준비해당 없음증류수 (5L), NaCl (40 g), KCl (1 g), Na₂HPO₄ (5.75 g), KH₂PO₄ (1 g)

태그

CFU