1. 웨스턴 블롯 분석을 위해 전립선 오가노이드에서 단백질 용해물 추출 — 타이밍: 2.5-4
시간
참고: 단백질 용해물 추출을 위해 오가노이드를 수집하기 전에 디스파제 함유 배지를 준비하고 예열합니다(표 1).
- 24웰 플레이트를 45° 각도로 기울이고 매트릭스 겔 링을 피하면서 P1000 피펫을 사용하여 각 웰 중앙에서 기존 배지를 부드럽게 제거하여 각 웰에서 배지를 제거합니다.
- 오가노이드를 수집하려면 전체 링이 제거될 때까지 1mL의 디스파제 함유 배지를 매트릭스 겔 링에 직접 피펫팅하여 매트릭스 겔을 반복적으로 블라스팅하고 1.5mL 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다.
알림: Poly-HEMA 코팅된 웰과의 직접적인 접촉을 피하는 것이 중요합니다. 직접 접촉하면 수집된 물질이 Poly-HEMA로 오염되어 세포 생존에 부정적인 영향을 미칠 수 있습니다.
- 1.5mL 마이크로 원심분리기 튜브를 37°C 5% CO2 인큐베이터에 30분에서 1시간 동안 넣어 디스파제로 매트릭스 겔을 완전히 분해합니다.
- 실온에서 5분 동안 800 x g에서 원심분리하여 오가노이드를 펠렛으로 내리고 마이크로피펫을 사용하여 상층액을 제거합니다.
- 오가노이드 펠릿에 인산염 완충 식염수(PBS)를 추가하고 부드럽게 튕겨 재현탁합니다.
참고: 오가노이드 펠릿을 충분히 재현탁하지 않으면 오가노이드 물질이 잔류 디스페이아제 또는 매트릭스 겔로 오염될 수 있습니다.
- 800 x g에서 RT에서 5분 동안 원심분리하여 오가노이드를 펠렛화하고 마이크로피펫을 사용하여 상층액을 제거합니다.
- 드라이아이스와 메탄올이 들어있는 용액에 각 튜브를 넣어 오가노이드 펠릿을 빠르게 동결합니다. 나중에 -80 °C에서 사용할 때까지 튜브를 보관하십시오. 또는 1.6 단계에 따라 단백질 용해물을 즉시 추출하십시오.
- 패킹된 세포 부피 10μL당 100μL의 단백질 용해 완충액(표 1)에 오가노이드 펠릿을 재현탁합니다. 다시 활성화하려면 튕깁니다.
참고: 급속 냉동 후 다시 시작하는 경우, 포스파타제 및 단백질 분해 효소 활성을 방지하기 위해 즉시 샘플에 용해 버퍼를 추가해야 하므로 -80°C에서 샘플을 제거하기 전에 단백질 용해 버퍼를 해동해야 합니다.
- 얼음 위에서 단백질 용해 완충액의 샘플을 최소 45분 동안 배양합니다.
참고 : 핵 단백질 회수의 효율성을 높이기 위해 얼음에서 배양하기 전에 초음파 처리하는 것이 좋습니다. 그러나 초음파 처리는 필요하지 않습니다. 초음파 처리가 수행되지 않으면 1.10단계로 진행합니다.
- 초음파 처리하려면 튜브를 젖은 얼음에 담그고 음파 차단 장치의 끝을 마이크로 원심분리기 튜브에 부드럽게 적용합니다. 20kHz에서 40초 동안 초음파 처리합니다.
- 확립된 프로토콜에 따라 웨스턴 블롯으로 진행합니다.
표 1: 주요 솔루션 준비를 위한 지침
)
| 레시피 |
| 디스파제 함유 매체 | 고급 DMEM F12의 1 mg/mL dispase + 10 μM ROCK 억제제. 필터는 0.22μm 필터를 사용하여 멸균합니다. |
| 해리 미디어 | RPMI 1640에서 10% FBS + 1x 페니실린-스트렙토마이신. 필터는 0.22μm 필터를 사용하여 멸균합니다. |
| 단백질 용해 완충액 | RIPA 완충액 + 인산가수분해효소 억제제 + 프로테아제 억제제 |
| 차단 솔루션 | PBS의 10% FBS(0.2% 트리톤 X-100 |