인간 참가자와 관련된 모든 절차는 인간 복지를 위한 기관, 국내 및 국제 지침에 따라 수행되었으며 지역 기관 검토 위원회의 검토를 거쳤습니다.
1. 프로브 준비
- 7mm 혼합 모드 흡착제로 코팅된 티타늄-니켈 합금 프로브(길이 40mm, 직경 0.2mm)를 준비합니다. 프로브 수는 전체 절차에서 대상으로 하는 시점과 반복 횟수(시점당 3회 권장)에 따라 다릅니다.
메모: 추출 단계의 길이와 유형은 연구 모드, 대사 산물의 극성 및 샘플 매트릭스에 따라 조정될 수 있습니다.
- 2:1 클로로포름:메탄올(v/v)로 구성된 세척 혼합물을 준비합니다. 용액 1.0mL를 각 2.0mL 유리 바이알에 피펫팅하고 이전에 캡을 뚫은 프로브 하나를 각 바이알에 넣습니다.
메모: 사용하기 전에 모든 프로브를 청소하여 오염 입자를 제거하십시오.
- 바이알을 교반기에 놓고 교반 속도를 1,200rpm으로 설정합니다. 45분 후 장치를 중지하고 LC-MS 등급의 물로 코팅을 헹굽니다.
- 코팅은 코팅을 활성화하기 위해 사전 컨디셔닝 단계를 거쳐야 하므로 1:1 메탄올:물(v/v)로 구성된 프리컨디셔닝 혼합물을 준비합니다. 용액 1.0mL를 각 2.0mL 유리 바이알에 피펫팅하고 각 바이알에 미리 캡을 뚫은 프로브 1개를 넣습니다.
- 바이알을 와류 교반기에 놓고 교반 속도를 1,200rpm으로 설정합니다.
- 60분 후 교반기를 멈추고 LC-MS 등급의 물로 코팅을 헹굽니다.
- 표준 수술 장비 멸균 프로토콜에 따라 프로브를 멸균합니다.
2. 추출
- 멸균 환경을 보장하기 위해 샘플링 직전에 멸균 패키지를 개봉하십시오.
- 각 시점에서 10분 동안 두 개의 프로브를 신장 피질에 직접 삽입합니다. 코팅의 전체 길이는 조직 매트릭스로 덮여야합니다. 특정 각도는 필요하지 않지만 일반적으로 약 90도가 사용됩니다.
메모: 전체 의료 절차는 해당 기관의 표준 프로토콜을 따릅니다. SPME 샘플링과 관련된 수정은 고려되지 않습니다. 이 절차에는 다음과 같은 6가지 샘플링 시점이 포함됩니다: a) 신장 절제 전, 기증자로부터 생체 내; b)–e) 신장 관류 1시간, 3시간, 5시간, 7시간 후, 장기실에서 생체 외; f) 재관류 후, 수용자로부터 생체 내.
- 프로브를 조직에서 빼내어 수축시킨 다음 LC-MS 등급의 물로 코팅을 헹구어 코팅 표면에 남아 있는 혈액을 제거합니다. 수술 부위를 헹구고 프로브를 제거한 직후에 헹굽니다.
3. 운송 및 보관
- 프로브를 별도의 바이알에 넣고 닫습니다.
- 바이알을 드라이아이스로 채워진 스티로폼 상자 또는 액체 질소에 넣어 운반합니다.
- 샘플을 냉동고(-80 °C)에 보관하거나 즉시 탈착 단계를 시작하십시오.
4. 탈착
- 대사체 분석을 위한 80:20 아세토니트릴:물(v/v)과 지질체 분석을 위한 1:1 이소프로판올:메탄올(v/v)로 구성된 탈착 용액을 준비합니다.
- 용액 100μL를 2.0mL 라벨이 붙은 바이알에 삽입물로 피펫팅하고 각 바이알에 이전에 캡을 뚫은 프로브 하나를 배치합니다.
- 바이알을 와류 교반기에 놓고 교반 속도를 1,200분 동안 120rpm으로 설정합니다.
- 바이알에서 프로브를 제거합니다. 얻은 추출물은 이제 기기 분석을 위한 준비가 되었습니다.
5. LC-MS 분석
- 추출물이 들어있는 바이알을 LC-MS 시스템의 자동 시료 주입기에 놓습니다.
메모: 이 연구에는 고분해능 질량 분석법과 결합된 액체 크로마토그래피(RP, HILIC) 및 Orbitrap 질량 분석기가 사용되었습니다. 대사체 분석 파라미터의 경우 5.2단계로 이동합니다. 지질체학 분석 파라미터의 경우 5.6단계로 이동합니다.
- 역상 분리를 위해 펜타플루오로페닐(PFP) 컬럼(2.1mm x 100mm, 3μm)을 사용합니다.
- 유속을 300μL/min으로 설정하고 자동 시료 주입기 및 컬럼 온도를 각각 4°C 및 25°C로 설정합니다.
- 이동상 A: 물:포름산(99.9:0.1, v/v) 및 이동상 B: 아세토니트릴:포름산(99.9:0.1, v/v)의 비율에 따라 이동상을 준비합니다. 다음 매개변수에 따라 이동상 흐름을 설정합니다: 100% A 시작 후 10% A(3-25분)로 선형 그래디언트, 34분까지 10% A의 등용매 흐름으로 끝, 6분의 컬럼 재평형 시간
- HILIC 분리의 경우 HILIC 컬럼(2.0mm x 100mm, 3μm, 200A)을 사용합니다. 유속을 400μL/min으로 설정합니다.
- 다음 비율에 따라 이동상을 준비합니다: 이동상 A: 아세토니트릴:암모늄 아세테이트 완충액(9:1, v/v, 유효 염 농도 20mM), 이동상 B: 아세토니트릴:암모늄 아세테이트 완충액(1:1, v/v, 유효 염 농도 20mM).
- 다음 매개변수에 따라 이동상 흐름을 설정합니다: 100% A에서 이동상 흐름(0-3분)을 시작하고 3.0분 동안 유지한 다음 5분 이내에 100% B로 램프합니다. 12분까지 100% B로 유지한 다음 8분 동안 컬럼 재평형 시간을 유지합니다.
- 스캔 범위를 85–1000m/z로 설정합니다. 양이온화 모드에서 HESI 이온 소스 매개변수를 스프레이 전압 1,500V, 모세관 온도 300°C, 시스 가스 40aU, 보조 가스 유량 15au, 프로브 히터 온도 300°C, S-렌즈 RF 레벨 55%로 설정합니다.
- 분석된 각 샘플의 10 μL로 구성된 QC 샘플을 실행하여(정기적으로, 10–12개 샘플마다) 기기 성능을 모니터링합니다.
- 역상 분리의 경우 C18 컬럼(2.1mm x 75mm, 3.5μm)을 사용합니다.
- 유속을 200μL/min으로 설정하고 자동 시료 주입기 및 컬럼 온도를 각각 4°C 및 55°C로 설정합니다. 하기 비율에 따라 이동상을 준비한다: 이동상 A:H2O:MeOH (60:40, v/v), 10 mM 암모늄 아세테이트 및 1 mM 아세트산; 이동상 B : IPA : MeOH (90 : 10, v / v), 10 mM 암모늄 아세테이트 및 1 mM 아세트산.
- 다음 매개변수에 따라 이동상 흐름을 설정합니다: 0–1분(20% B), 1–1.5분(20–50% B), 1.5–7.5분(50–70% B), 7.5–13분(70–95% B), 13–17분(95% B), 17–17.1분(95–20% B), 17.1–23분(20%).
- HILIC 분리의 경우 HILIC 컬럼(100 x 2.1mm, 3μm)을 사용합니다.
- 유속을 400μL/min으로 설정하고 자동 시료 주입기 및 컬럼 온도를 각각 4°C 및 40°C로 설정합니다.
- 다음 비율에 따라 이동상을 준비합니다 : 이동상 A : ACN; 이동상 B : 물 중 5mM 암모늄 아세테이트. 다음 매개변수에 따라 이동상 흐름을 설정합니다: 0–2분(96% B), 2–15분(96–80% B), 15–15.1분(80–96% B), 15.1–21분(96% B).
- 양이온화 모드에서 HESI 이온 소스 매개변수를 스프레이 전압 3,500V, 모세관 온도 275°C, 칼집 가스 20aU, 보조 가스 유량 10aU, 프로브 히터 온도 300°C, S-Lens RF 레벨 55%로 설정합니다.
- 분석된 각 샘플의 10μL(10-12개 샘플마다)로 구성된 QC 샘플을 실행하여 기기 성능을 모니터링합니다.
- 기기와 호환되는 소프트웨어에서 데이터 수집을 수행합니다.
6. 데이터 분석
- 비표적 대사체학 및 지질체학 분석 전용 소프트웨어를 사용하여 데이터 처리, 추정 식별 및 통계 분석을 수행합니다.
메모: 주성분 분석(PCA) 및 상자 수염 플롯을 얻어 데이터 구조를 시각화할 수 있습니다.