동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. FP635 또는 FP720 구조체를 사용한 교모세포종 세포의 라벨링
- 아래 설명된 프로토콜에 따라 렌티바이러스를 생산하고 정제합니다.
- 1일차에 씨를 뿌린 요리를 관찰하십시오. 세포가 80–90% 융합되면 transfection을 할 준비가 된 것입니다.
참고: 세포는 여전히 1-2개의 세포 분열을 거칠 수 있는 공간이 있어야 합니다
- 4개의 플라스미드를 50mL 튜브에 분주하여 플라스미드 혼합물을 준비합니다. 12 × 15cm 조리 요법의 경우 전달 벡터 270μg, pMDL(Gag/Pol) 176μg, pVSVG(수포성 구내염 바이러스 당단백질) 95μg 및 pREV 68μg을 사용합니다.
- 0.25M CaCl2 (여과 된 ddH2O로 희석) 13.5mL를 준비하고 플라스미드 혼합물에 첨가한다. 13.5mL 2× BBS 용액을 추가합니다. 여러 번 뒤집어서 부드럽게 혼합하고 실온(22–26°)에서 15분 동안 배양합니다.
- 트랜스펙션 혼합물(방울 단위로 퍼짐)을 각 플레이트(플레이트당 2.25mL)에 추가합니다. 플레이트를 부드럽게 휘젓고 3% CO2, 37 °C에서 하룻밤(16-20시간) 동안 배양합니다.
- 세포를 관찰하십시오. 그들은 합류점에 도달해야 합니다. 렌티벡터 플라스미드에 가시적 마커(예: GFP)가 존재하는 경우, transfection 효율을 육안으로 평가할 수 있습니다. 이상적으로는 transfection 효율이 >90%여야 합니다.
- 미디어를 제거하고 각 접시에 15mL의 신선한 DMEM + 2% FBS를 추가하고 10% CO2, 37 °C로 옮깁니다.밤새 배양합니다.
- 상층액의 첫 번째 수확물 수집: 접시에서 상등액(12개 요리 × 15ml/접시 = 180mL)을 수집하고 풀링합니다.
- 각 접시에 신선한 DMEM 15mL + 2% FBS를 추가합니다. 10% CO2, 37 °C에서 밤새 접시를 배양합니다. 렌티바이러스 상등액이 들어 있는 용기는 2차 격납용기(밀봉된 비닐 봉지)에 넣고 4°C에서 보관해야 합니다.
- 바이러스 제제 농축: 초원심분리로 바이러스 입자를 농축합니다. 20°C에서 2시간 동안 70,000 x g에서 상층액을 원심분리합니다. 원뿔형 튜브(둥근 바닥 튜브와 반대)와 스윙 버킷 로터(고정 각도 로터와 반대)가 권장됩니다(이 조합으로 인해 거의 보이지 않는 펠릿을 더 쉽게 찾을 수 있기 때문). 당사는 Beckman SW28 로터(튜브 6개 용량)가 있는 원뿔형 튜브를 19,400rpm에서 20°C에서 2시간 동안 사용합니다. 튜브에 30mL의 상등액을 채웁니다. 12 × 15cm 접시 준비에서 상등액의 총 부피는 360mL입니다. 따라서 전체 볼륨을 처리하려면 두 번의 연속 스핀이 필요합니다. 튜브를 로드하고, 첫 번째 스핀을 수행하고, 펠릿을 방해하지 않고 상층액을 붓고, 새로운 바이러스 상등액을 다시 로드하고 두 번째 스핀을 수행합니다.
- 상층액을 붓고 거꾸로 된 튜브를 종이 타월에 올려 나머지 액체를 배출합니다. 펠릿에서 모든 액체를 제거하기 위해 흡입기를 사용하여 남아 있는 물방울을 빨아들입니다. 펠릿은 작은 반투명 점으로 거의 보이지 않아야 합니다.
- 바이러스 펠릿을 100μL의 1× HBSS에 재현탁합니다. 거품을 피하십시오. 100μL의 1× HBSS로 튜브를 헹굽니다. 두 부피를 모두 풀링하여 200μL 최종 부피를 얻습니다.
- 스크류 캡 마이크로퓨지 튜브로 옮기고 파라필름으로 감싸고 15-30분 동안 저속으로 와류를 일으킵니다. 재현 유 된 바이러스 제제는 맑은 것부터 약간 유백색까지 어디에서나 보입니다.
- 탁상용 마이크로 원심분리기에서 10초 동안 회전하여 서스펜션을 청소합니다. 상층액을 새 스크류 캡 마이크로분리 튜브로 옮깁니다. 상층액의 20μL 분취량을 만듭니다. 이 바이러스 상등액은 체외 등급의 품질입니다.
- 15cm 접시에 DMEM과 10% 소 태아 혈청(FBS)을 함유한 인간 신경교종 세포주에서 약 2.0 x 106 세포를 배양하거나, T75 플라스크에서 DMEM/F12 1:1 배지와 B27 보충제를 함께 사용하여 인간 교모세포종 환자 유래(GBM-PDX) 구체 2.0 x 10 6개를 배양합니다.
- 모든 셀을 37°C, 5% CO2 및 100% 상대 습도로 유지합니다.
- 세포를 분리하십시오.
- 신경교종 세포의 경우: 플레이트에서 상등액을 제거하고 신경교종 세포에 3-5mL의 트립신 1X를 첨가합니다.
- GBM 구의 경우: 세포를 15mL 튜브에 피펫팅하여 세포를 수집합니다.
- 실온에서 탁상용 원심분리기를 사용하여 200 x g에서 5분 동안 GBM 구를 스핀다운합니다.
- 상층액을 제거하고 3-5mL의 세포 분리 용액을 추가합니다.
- 모든 세포를 37°C에서 10-15분 동안 배양합니다.
- 여러 번 위아래로 피펫팅하여 세포를 조심스럽게 해리하고(구체와 신경교종 세포가 완전히 분리되었는지 확인) 200 x g에서 5분 동안 스핀다운합니다.
- 상층액을 제거하고 위아래로 여러 차례 피펫팅하여 5mL의 배지로 세포를 재현탁합니다. 트리판 블루 제외를 통해 세포 생존율을 결정합니다.
- 1.0 x 106개의 타겟 세포를 10cm 접시에 5mL의 배지와 함께 피펫팅하여 플레이트화합니다.
- multiplicity of infection (MOI) 5에서 형광 단백질을 발현하는 렌티바이러스로 세포를 형질주입하고 37 °C에서 배양합니다.
- 24시간 후, 형질도입된 세포에서 배지를 제거하고 새로운 배지 5mL를 첨가한 후 37°C에서 추가로 48시간 동안 배양합니다.
- 위에서 설명한 대로 트립신을 사용하여 감염된 세포를 단일 세포 현탁액으로 해리합니다. 200 x g에서 5분 동안 세포를 스핀다운하고 500μL의 분류 용액(1% FBS를 함유한 인산염 완충 식염수(PBS))에 재현탁합니다.
- 세포 현탁액을 FACS 튜브에 피펫팅합니다. 죽은 세포를 배제하기 위해 1μL/mL의 4',6-디아미디노-2-페닐린돌(DAPI) 디하이드로클로라이드로 세포를 공동 염색합니다. 유세포 분석기 게이트(비형질도입 세포 및 비형질 주입 세포/DAPI 염색)를 설정하려면 음성 대조군이 필요합니다.
- 형광 양성/DAPI 음성 세포를 분류 용액으로 분류하고 분류된 세포를 15mL 원뿔형 튜브에 모읍니다.
- 분류된 세포를 200 x g에서 5분 동안 스핀다운하고 상층액을 제거한 다음 5mL의 배양 배지에 재현탁합니다. 피펫팅으로 분류된 세포를 10cm 접시에 파종합니다. 37 ° C에서 최소 48-72 시간 동안 배양하십시오.
- 상기한 바와 같이 세포를 해리하고 in vivo 실험을 위해 여러 접시로 플레이팅하여 분류된 세포를 확장합니다.