동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 생체 외 돼지 폐(EVPL) 조직의 해부 및 감염
- EVPL 조직과 함께 사용하기 위한 SCFM을 만들고 표 1에 제공된 1L 변형 SCFM의 레시피를 따릅니다.
- 해부하기 전에 P. aeruginosa/S. aureus에 대한 실험실에서 표준인 한천(예: 용원 육수 + 1.2% 한천)을 사용하여 감염에 필요한 박테리아 균주의 한천 플레이트를 준비합니다.
- 감염되지 않은 대조군 조직 조각을 포함하여 실험에 얼마나 많은 돼지 세기관지 조직 조각이 필요한지 계산합니다. 이 숫자에 2를 곱하여 두 개의 복제 폐에서 실험을 반복하여 결과의 반복성을 확인합니다.
- 필요한 총 조직 조각 수에 0.5를 곱하여 400 μL/조직 조각에 충분한 배지를 만들기 위해 아가로스 패드를 만드는 데 필요한 SCFM 아가로스(mL)의 부피와 준비 중 피펫팅 오류 또는 증발을 설명하기 위한 여분의 SCFM 한천의 부피를 계산합니다.
- 0.8% 중량/부피 아가로스로 원하는 총 SCFM을 만드는 데 필요한 SCFM 15mL마다 0.12g의 아가로스를 추가합니다.
- 아가로스가 완전히 용해될 때까지 SCFM 아가로스 용액을 가열합니다. 저전력의 가정용 전자레인지를 사용하는 것이 좋습니다. 필요한 시간은 전자 레인지의 와트에 따라 다릅니다. 아가로스를 약 50°C로 식힙니다(만지면 따뜻하지만 잡기 편함). 더 이상 식히지 마십시오.
- 피펫을 사용하여 필요한 조직 조각당 24웰 플레이트의 1웰에 400μL의 SCFM 아가로스를 추가합니다.
- SCFM 아가로스 함유 24웰 플레이트를 자외선 아래에서 10분 동안 살균합니다.
- 20mL의 멸균 Dulbecco's modified Eagle medium(DMEM)과 50μg/mL 암피실린이 보충된 20mL의 멸균 Roswell Park Memorial Institute(RPMI) 1640을 사용하여 절개되는 모든 온전한 폐에 대해 3회 반복 세척을 준비합니다.
- 절개되는 모든 손상되지 않은 폐에 대한 최종 세척으로 40mL SCFM의 부분 표본을 만듭니다. 모든 세척은 4°C에서 밤새 보관하거나 즉시 사용할 수 있습니다.
- 도축 후 가능한 한 빨리 지정된 출처에서 폐를 구하여 가정용 냉각 상자에 넣어 실험실로 운송하여 차갑게 보관하십시오.
메모: 도축 당일에 가까운 폐는 보관으로 인한 멍이 적지만 도축 후 최대 4일 동안 냉장 보관된 조직도 사용할 수 있습니다. 쿨박스는 정육점이나 도살장으로 가져와야 하므로 매번 사용 후에는 현지 실험실 지침에 따라 오염을 제거해야 하며 사용하지 않을 때는 미생물학 실험실 외부에 보관하여 오염 및 격리 위반의 위험을 줄여야 합니다.
- 멸균된 표면과 화염 아래에서 작업하면서 오토클레이브 알루미늄 호일로 덮인 깨끗한 플라스틱 도마에 폐를 놓습니다. 세기관지가 손상되지 않았는지 확인하십시오. 도살장이나 운송 중에 손상이 있는 경우 폐는 사용하기에 적합하지 않습니다.
- 팔레트 나이프를 화염 아래에서 가열하고 칼을 세기관지를 둘러싼 폐 부위에 아주 짧게 접촉하여 조직 표면을 살균합니다.
- 멸균 장착된 면도날을 사용하여 세기관지를 둘러싼 표면 조직을 잘라냅니다. 손상을 방지하기 위해 세기관지와 평행하게 절개하십시오.
- 세기관지가 노출되면 세기관지를 빼내기 위해 눈에 보이는 가장 높은 지점에서 세기관지를 통해 단면 절개를 만듭니다.
- 멸균 집게를 사용하여 세기관지의 다른 쪽 끝을 가볍게 잡고 멸균 장착된 면도날을 사용하여 남아 있는 원치 않는 조직을 잘라냅니다. 폐에서 세기관지를 제거하기 위해 가지가 보이기 전에 세기관지를 가로질러 최종 단면 절개를 만듭니다.
- 세기관지를 첫 번째 DMEM/RPMI 1640 세척에 넣습니다. 세기관지를 세척한 상태로 두고 1.12-1.15단계를 반복하여 계획된 실험을 위한 충분한 조직 절편을 생성하는 데 필요한 만큼 동일한 폐에서 추가 세기관지 절편을 채취합니다.
- 동일한 폐의 추가 세기관지 절편을 세척제에 넣습니다(단계 1.17). 최소 2분 동안 세탁물에 그대로 두십시오.
- 첫 번째 DMEM/RPMI 1640 세척에서 세기관지를 제거하고 샘플을 멸균 페트리 접시에 넣습니다.
- 멸균 집게를 사용하여 각 세기관지를 가볍게 잡고 조직이 손상되지 않도록 합니다. 남아있는 연조직을 최대한 제거하고 멸균 해부 가위를 사용하여 조직을 ~5mm 너비의 스트립으로 자릅니다.
- 모든 세기관지 조직 스트립을 두 번째 DMEM/RPMI 1640 세척에 넣습니다. 최소 2분 동안 세탁물에 그대로 두십시오.
- 멸균 집게를 사용하여 두 번째 세척에서 조직 스트립을 제거하고 조직이 손상되지 않도록 주의하십시오. 깨끗하고 멸균된 페트리 접시에 티슈를 넣습니다.
- 세기관지에 붙어 있는 남아있는 연조직을 제거하고 멸균 해부 가위를 사용하여 스트립을 정사각형(~5mm x 5mm)으로 자릅니다.
- 세 번째 DMEM/RPMI 1640 세척제를 페트리 접시에 추가합니다. 접시를 휘젓고 세척할 때 티슈 조각을 가볍게 섞습니다.
- 티슈 조각을 제거하지 않고 페트리 접시에서 세 번째 세척을 붓습니다.
- 티슈가 포함된 페트리 접시에 최종 SCFM 세척제를 추가하여 모든 티슈 조각이 덮이도록 합니다.
- SCFM의 조직 조각을 자외선 아래에서 5분 동안 살균합니다.
- 멸균 겸자를 사용하여 멸균된 각 세기관지 조직 조각을 SCFM 아가로스 패드가 포함된 24웰 플레이트의 개별 웰로 옮깁니다.
- 각 조직 조각을 원하는 박테리아 균주로 감염시키려면 멸균 0.5mL 인슐린 주사기에 부착된 29G 바늘 끝으로 한천 플레이트에서 자란 집락을 만집니다. 그런 다음 군체를 조직 조각에 대고 조직 표면을 부드럽게 찌릅니다.
메모: 29G 바늘이 장착된 인슐린 주사기를 사용하면 바늘과 폐 조직에서 손가락을 안전한 거리에 유지하면서 바늘을 정확하고 편안하게 잡을 수 있습니다. 주사기에 부착되지 않은 29G의 바늘을 사용하여 이 단계를 수행할 수 있지만, 이 경우 더 많은 손재주가 필요하고 주사바늘 찔림 부상의 위험이 높아집니다. 인슐린 주사기는 쉽게 구할 수 있습니다.
- 감염되지 않은 대조군의 경우, 멸균 0.5mL 인슐린 주사기에 부착된 29G 바늘 끝으로 각 조직 조각의 표면을 부드럽게 찌릅니다.
- 피펫을 사용하여 각 웰에 500μL의 SCFM을 추가합니다.
- 자외선 아래에서 각 24웰 플레이트에 대해 통기성 밀봉 멤브레인을 10분 동안 살균합니다(재료 표).
- 24웰 플레이트에서 뚜껑을 제거하고 통기성 멤브레인으로 교체합니다.
- 흔들림 없이 원하는 배양(감염) 시간 동안 37°C에서 플레이트를 배양합니다. 감염되지 않은 대조군에서 접종된 병원체의 눈에 띄는 성장이 없는지 확인합니다(오염 대조군).
메모: 원하는 경우, 암피실린을 SCFM 아가로스 패드에 첨가하고 단계 1.31에서 SCFM을 20μg/mL의 최종 농도로 덮을 수 있습니다. 이것은 녹농균(P. aeruginosa) 또는 황색포도상구균(S. aureus) 성장에 영향을 주지 않고 폐에 있는 대부분의 내인성 박테리아의 성장을 억제하지만, 암피실린의 존재가 다른 항생제에 대한 감수성에 영향을 미칠 수 있기 때문에 독자는 테스트하고자 하는 균주와 항생제에 따라 이러한 선택을 할 수 있습니다.
표 1
1. 생체 외 돼지 폐 모델과 함께 사용하기위한 합성 CF 가래 매체 (SCFM) 준비
일단 만들어지면 SCFM을 필터 멸균해야 하며 최대 한 달 동안 4°C에서 보관할 수 있습니다.
하십시오.
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호
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일
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년
호
분
| a) 메인 레시피 |
| 단계 1 | 화학 | 분량 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| 염화나트륨 | 3.03 지 | SCFM 준비에만 사용되는 깨끗한 병에 소금과 물을 첨가 | 51.85 |
| 케이클 | 1.114 지 | 14.94 |
| 디H2O | 640 밀리리터 | 해당 사항 없음 |
| 단계 2 | 화학 | 물에서 만든 스톡의 몰 농도, 필터 멸균 및 4°C에서 보관 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| 나2HPO4 | 0.125 엠 | 1단계에서 준비한 소금과 물에 각 육수 10ml를 추가합니다 | 1.25 |
| 나H2PO4 | 0.13 미터 | 1.30 |
| NH4Cl | 0.228 엠 | 2.28 |
| KNO3 | 0.0348 엠 | 0.35 |
| K2이렇게4 | 0.0271 엠 | 0.27 |
| 걸레 | 1 미터 | 10월 00 |
| 단계 3 | 화학 | | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| 섹션 B에 따라 제조된 19개의 아미노산 용액) | 1단계와 2단계에서 준비한 용액에 각 육수 10ml를 추가합니다. | 섹션 b 참조) |
| 단계 4 | 화학 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| HCl 또는 필요에 따라 NaOH | 1-3 - 6.8 단계에서 준비된 용액의 pH를 조정하는 데 사용합니다. 추가된 산/염기의 기록적인 부피. | 해당 사항 없음 |
| 단계 5 | 화학 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| dH2O | 1-4단계에서 준비한 용액에 최종 부피 960ml까지 추가합니다. | 해당 사항 없음 |
| 단계 6 | 화학 | 물에서 만든 스톡의 몰 농도, 필터 멸균 및 4°C에서 보관 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| 염화나트륨2 | 0.175 엠 | 1-5단계에서 준비한 용액에 각 육수 10ml를 추가합니다 | 1.75 |
| 마그네슘Cl2 | 0.0606 엠 | 0.61 |
| 단계 7 | 화학 | 물에서 만든 스톡의 몰 농도, 필터 멸균 및 4°C에서 보관 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| L-젖산 | 0.93 미터 | 5M NaOH로 pH를 7로 물에서 육수하십시오. 1-6단계에서 준비한 용액에 10ml를 추가합니다. | 9.30 |
| 단계 8 | 화학 | 레시피에 추가하기 직전에 물에서 만든 작업 재고의 몰 농도 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| 철(III)SO4.7H2O | 0.00036 엠 | 0.036M 마스터 스톡을 만들고, 용액에 침전물이 없는 한 필터를 멸균하고 4°C에서 보관할 수 있습니다. 작업 스톡을 만들려면 110 μl의 마스터 스톡을 9.890 ml dH2O에 추가하고 1-7 단계에서 준비된 용액에 작업 스톡을 추가합니다. | 0.0036 |
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아오이트
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| b) 아미노산 원료의 준비; 필터는 사용 전에 살균하고 4°C에서 보관하십시오. |
| 아미노산 | mM 주식 | 지시 | 1L SCFM의 최종 mM |
| 알라닌 | 178 | 물에 녹이십시오 | 1.780 |
| 아르기닌 | 30.6 | 물에 녹이십시오 | 0.306 |
| 아스파르테이트 | 82.7 | 0.5m NaOH에 용해 | 0.827 |
| 시스테인 | 16 | 물에 녹이십시오 | 0.160 |
| 글루타민산 | 154.9 | 1M HCl에 용해 | 1.549 |
| 글리신 | 120.3 | 물에 녹이십시오 | 1.203 |
| 히스티딘 | 51.9 | 물에 녹이십시오 | 0.519 |
| 이소류신 | 112.1 | 셰이커에서 50°C로 30분 동안 가열하여 물에 녹입니다 | 1.121 |
| 신 | 160.9 | 물에 녹이십시오 | 1.609 |
| 라이신 | 212.8 | 물에 녹이십시오 | 2.128 |
| 메티오닌 | 63.3 | 물에 녹이십시오 | 0.633 |
| 오르니틴-HCl | 67.6 | 물에 녹이십시오 | 0.676 |
| 페닐알라닌 | 53 | 물에 녹이십시오 | 0.530 |
| 프롤린 | 166 | 물에 녹이십시오 | 1.660 |
| 세린 | 144.6 | 물에 녹이십시오 | 1.446 |
| 트레오닌 | 107.2 | 물에 녹이십시오 | 1.072 |
| 트립토판 | 1.3 | 0.2m NaOH에 용해 | 0.013 |
| 티로신 | 80.2 | 1M NaOH에 용해 | 0.802 |
| 발린 | 111.7 | 물에 녹이십시오 | 1.117 |