방법 논문

CRISPR 간섭 기반 유전자 침묵: 병원성 렙토스피라에서 유전자 기능의 표적 억제를 위한 기술

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

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출처: Fernandes, L. G. V., et al. Leptospira의 병원성 종에서 유전자 침묵을 위한 CRISPR 간섭(CRISPRi)의 적용. J. Vis. 특급 (2021).

이 비디오는 병원성 Leptospira에서 CRISPR 간섭 기반 유전자 침묵을 보여줍니다. mRNA 형성을 차단하는 CRISPR/Cas 시스템을 사용한 유전자 발현의 표적 억제는 병리학 및 약리학 연구를 위한 후보 유전자를 식별하는 데 도움이 됩니다.

프로토콜

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동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.

1. 프로토 스페이서 정의 및 플라스미드 구성

참고: 이 섹션에서는 sgRNA를 구성하고 pMaOri.dCas9로의 추가 결찰을 위해 적절한 protospacer를 선택하는 첫 번째 단계에 대해 설명합니다(그림 1). 이 프로토스페이서 서열은 원하는 표적에 대한 20개의 뉴클레오티드 서열로 구성됩니다.

  1. GenBank에서 침묵을 위한 관심 유전자의 뉴클레오티드 염기서열을 얻습니다(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/genbank). "Fasta Target"을 선택한 후 Streptococcus pyogenes Cas9 및 protospacer 인접 모티프 NGG에 대해 정의된 매개변수와 함께 CHOPCHOP 웹 서버(http://chopchop.cbu.uib.no/)에 제출합니다. 매개변수를 "CRISPR/Cas9" 및 PAM(protospacer adjacent motif) NGG로 정의합니다.
  2. 얻은 결과를 바탕으로 코딩 영역의 5' 말단에 가능한 한 가깝게 위치하고, 가장 중요한 것은 sgRNA가 완전한 유전자 침묵을 위해 유전자의 코딩 가닥과 쌍을 이루어야 하기 때문에 템플릿(마이너스) 가닥에 포함되어 있는 가능한 가장 좋은 점수(녹색 화살표)를 가진 protospacer를 선택합니다.
    메모: NGG 모티프는 최종 sgRNA 염기서열에 포함되지 않습니다.
  3. lipL32 promoter를 사용하여 5' 말단에 가변 20 뉴클레오티드 염기서열과 보존된 dCas9 스캐폴드 염기서열을 포함하는 단일 가이드 RNA를 발현합니다. protospacer라고 하는 20-nt 염기서열을 lipL32 promoter(5' 말단) 및 sgRNA scaffold(3' 말단)에 병합합니다(그림 1B).
    메모: 잘 정의된 lipL32 promoter의 경우, TSS(Transcription Start Site, Zhukova et al.에 근거)에 -334를 포함하는 promoter region을 활용한다. 최종 sgRNA cassette에 대한 표 1을 확인하십시오.
  4. 순차 PCR로 sgRNA cassette를 생성하거나 상용 제공업체에서 합성할 수 있습니다.
  5. 카세트를 얻은 후 양쪽 끝의 XmaI 제한 부위(cccggg)에서 pMaOri.dCas9 플라스미드에 접합합니다.
    1. sgRNA 카세트와 pMaOri.dCas9 플라스미드를 XmaI 제한 효소로 분해하고 접합을 진행합니다(그림 1B).
    2. pMaOri(및 확장에 의해 pMaOri.dCas9) 복제 기원인 R6K-gamma.
      로 인해 dT 보조영양 대장균 균주 π1에서 클로닝 단계를 수행합니다. 참고: ligation 및 clone selection에 대한 자세한 프로토콜은 Fernandes와 Nascimento의 이전 간행물을 참조하십시오. sgRNA-guided dCas9는 선택한 관심 유전자의 코딩 가닥에 결합하므로 RNA 중합효소 신장을 방해하여(그림 1C) 유전자 침묵을 초래합니다.

2. 활용에 의한 렙토스피라 변환

참고: 이 단계의 그래픽 구성표는 그림 2에 나와 있습니다. HAN 매체 및 HAN 플레이트를 만들려면 Hornsby et al. 및 Fernandes et al.을 참조하십시오.

  1. 29 또는 37 °C에서 병원성 렙토스피라 세포를 신선한 HAN에서 포화 배양액을 1:100으로 희석하여 교반 하에서 HAN 배지에서 성장시키며, 일반적으로 L. interrogans serovar Copenhageni 균주 Fiocruz L1-130은 적절한 세포 밀도에 도달하는 데 4-6일이 걸립니다.
    1. conjugation.
      에 사용하기 전에 배양액이 420nm(2 - 5 x 108 cells/mL)에서 O.D. 0.2-0.4에 도달하도록 합니다. 메모: 세포 밀도가 증가함에 따라 HAN 배지의 색이 변하기 때문에(DMEM 배지에 함유된 페놀 레드로 인해) 원심분리기(4,000 x g, 15분, 실온)의 배양 배지 1mL를 사용하여 렙토스피어를 제거하고 상등액을 O.D. 측정을 위한 블랭크로 도포합니다.
  2. sgRNA 카세트를 포함하는 플라스미드 pMaOri.dCas9를 사용하여 Diaminopimelic acid (DAP)에 대한 보조영양 conjugative E. coli strain β2163을 형질전환시킵니다. 대장 변형을 위해서는 열 충격 프로토콜 또는 전기천공법을 사용하십시오. sgRNA 카세트가 없는 플라스미드 pMaOri.dCas9를 대조군으로 사용하여 형질전환을 포함합니다.
    1. 열 충격 변형을 위해 플라스미드 DNA(100ng)를 화학적으로 적합한 대장균 세포와 혼합하고 얼음에서 30분 동안 배양합니다. 42°C에서 90초 동안 열 충격을 가한 후 다시 얼음 위에 5분 동안 놓습니다. LB 배지 1mL를 추가하여 세포를 회수하고 37°C에서 1시간 동안 배양한 후 도금을 진행합니다.
    2. 전기천공을 위해서는 100ng의 플라스미드 DNA와 혼합된 전기 역량 세포를 사용하십시오. 펄스에 대해 1.8kV, 100 Ω 및 25μF 매개변수를 사용합니다. 위에서 설명한 대로 셀을 복구합니다.
    3. Diaminopimelic acid(DAP)(0.3mM) 및 spectinomycin(40μg/mL)이 보충된 LB 한천 배지에 형질전환된 donor E. coli 세포를 플레이트화하여 플라스미드를 선택합니다.
  3. 접합의 경우, 접합일 하루 전에 각 플레이트에서 하나의 콜로니를 선택합니다(이는 렙토스피어 배양의 O.D.를 모니터링하여 결정됨).
    1. 빈 pMaOri.dCas9에서 E. coli β2163 콜로니 하나를 선택하고 pMaOri.dCas9sgRNA 플레이트에서 하나를 선택합니다. 37°C에서 10mL의 LB와 DAP 및 스펙티노마이신을 하룻밤 동안 자라게 합니다.
    2. 다음날, 포화 배양액을 10mL의 신선한 LB와 DAP(여기에 항생제는 포함하지 않음)에 0.2-0.4의 OD420nm까지 1:100으로 희석합니다. 일반적으로 대장균이 이 밀도에 도달하는 데 2-3시간이 걸립니다.
  4. BSL2 생물 안전 후드 내부에 유리 베이스 상단에 직경 25mm, 공극 크기 0.1μm, 혼합 셀룰로오스 에스테르 멤브레인 필터를 배치하여 여과 장치를 조립합니다. 상단에 15mL 유리 깔때기를 놓고 스프링 클램프로 두 조각을 모두 잡습니다. 유리를 진공 펌프에 연결하고 여과를 위해 깔때기에 배양물을 추가합니다.
  5. 깔때기에 렙토스피라 배양액 5mL를 추가합니다. 두 배양의 OD420nm 값을 기준으로 1:1 비율을 구성하기 위해 E. coli의 부피를 추가합니다. 진공 펌프를 켜고 여과로 셀을 농축합니다. 멤브레인 필터에서 세포를 농축한 후 조심스럽게 회수합니다. 매체가 멤브레인을 통해 여과되었는지 확인합니다.
    메모: 여과에는 5분에서 10분 정도 걸립니다.
  6. DAP(0.3mM)가 보충된 시중에서 판매되는 EMJH 플레이트(재료 표 참조)에 필터를 놓습니다. 박테리아 쪽이 위로 향하는지 확인하십시오. 플레이트를 29 °C에서 24 시간 동안 배양
    메모: HAN 또는 보충된 사내 EMJH 플레이트를 사용하면 E. coli가 증식하여 의도한 1:1 비율을 극복할 수 있으며, 이로 인해 접합 효율이 감소할 수 있습니다.
  7. 24시간 후 플레이트에서 필터를 회수하고 각 필터를 50mL 원뿔형 튜브에 넣습니다.
  8. 1mL의 액체 HAN 배지를 사용하여 광범위한 피펫팅 및 볼텍싱을 통해 필터 표면에서 세포를 분리합니다.
  9. 세포의 생존력과 운동성을 확인하기 위해 암시야 현미경으로 회수된 혼합 박테리아 용액을 시각화하고 Leptospira:E. coli proportions.
    메모: 이 단계에서는 동일한 수의 E. coliLeptospira를 볼 수 있습니다.
  10. 이 배양액 100-200 μL를 0.4% 불활성화 토끼 혈청과 40 μg/mL 스펙티노마이신이 함유된 HAN 플레이트에 펴 바릅니다. 37 ° C에서 3 % CO2 기압으로 플레이트를 배양합니다 .
    strong>참고: 일반적으로 L. interrogans serovar Copenhageni 균주 Fiocruz L1-130 세포는 대조판에서 5-7일, 스펙티노마이신 판에서 8-10일 이내에 군체를 형성합니다. 이 단계에서 대장균은 DAP에 대한 보조영양성이기 때문에 성장하지 않습니다.
  11. 대조군으로, 배양액을 104 leptospires/mL로 희석하고 항생제 없이 플레이트에 100μL를 첨가하여 렙토스파이럴 성장을 모니터링합니다.

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결과

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표 테두리 ="1" cellpadding ="0" cellspacing="0" 너비 ="623">

sgRNA 카세트는 다음과 같아야 합니다.
cccgggGAACAAGAAAGAGTCAGAGAATTATTGAAGAGATACTCTTATACTACCGTTTGGAAGAATTTTCGCATGGATTTTAGATTTGCTGGACTGGTTGAAGCGATTTTTTCAAAAAAAATAATCAATTTGTGTCTGAGATTTGAAAACGCTTGTTTGATAGTTTTTTTTTTTTTTTGATGTTTCAATCGTATCGTATGAAATTCTAAAATTTAGAAATCATCCTTTACTTTTTTCTCTAAGACTTATATAACAATCGCTTTAAACTTTAAACTCAAATTATAATTTCAGATAAAAAATTATTCAATATTGATTTACAAAAAATTCCTAAGTTCATACCGTGATTTTCNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNNN...

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공개 사항

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이해 상충이 선언되지 않았습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
0.1 &마이크로; M 기공 크기 혼합 셀룰로오스 에스테르 멤브레인밀리포어VCWP02500세균 접합을 위한 여과
2,6-디아미노피멜산(DAP)시그마D1377보조영양성의 성장 E. 대장균  &베타; 2163
한천 귀족BD & 회사214230고체 EMJH 및 HAN 플레이트 준비에 사용
Bacto AgarBD & 회사214010고체 LB 플레이트 준비에 사용
유리 미세분석 필터 홀더밀리포어XX1012530세균 접합을 위한 여과
LB 육수, 밀러BD & 회사244620용원 액체 매체 E. 대장균  배양
렙토스피라  농축 EMJHBD & 회사279510EMJH 미디어 보충
렙토스피라  미디엄 베이스 EMJHBD & Company279410렙토스피라용 EMJH 배지
광학 밀도 판독기분자 장치SpectraMax M2박테리아 배양의 광학 밀도 측정용
SpectinomycinSigmaS0692pMaOri 백본 선택 플라스미드
티미딘(dT)시그마T9250보조영양 대장균의 성장  &파이; 1
XmaI 제한 효소New Englan BioLabsR0180L플라스미드 및 삽입물의 분해

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CRISPR InterferenceGene SilencingdCas9 ProteinShuttle VectorConjugation ProtocolLeptospira BacteriaDark Field MicroscopySpectinomycin SelectionHAN MediaPlasmid Construct

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