1. 레트로바이러스 구조체 준비
- 2A 링커로 분리된 T-세포 수용체(TCR) 알파 및 베타 사슬을 MSCV 기반 레트로바이러스 벡터(예: pMIAII 또는 pMIGII)로 서브클론화합니다.
메모: 2A 링커는 단일 개방형 판독 프레임에서 알파 및 베타 TCR 체인의 화학량론적 및 일치 표현을 허용합니다. 이 벡터에는 형질도입된 세포와 형질도입 효율을 추적하는 데 사용되는 IRES 형광 단백질 카세트(아메트린 또는 GFP)가 포함됩니다.
- 상업적으로 입수된 plasma prep kit 또는 유사한 제품을 사용하여 Plasmid DNA를 분리합니다. 1-2 μg μl-1의 작업 농도를 사용하십시오.
2. 레트로바이러스 생산자 세포주 생성
- 2단계 공정을 활용하여 레트로바이러스 생산자 세포주를 생산합니다.
- 3개의 플라스미드(pVSVG, pEQ-Pam3(-E) 및 관심 벡터)를 가진 293T 세포의 일시적 transfection을 통해 레트로바이러스를 생성하고 293T 세포에서 레트로바이러스 상등액을 취하여 GP+E86 에코트로바이러스 레트로바이러스 생산자 세포주를 transduction합니다.
- FACS로 형광 발현 GP+E86 생산자 세포의 상위 40%를 분리하고 형질도입된 GP+E86 생산자 세포를 바이러스의 근원으로 증식합니다.
메모: high-titer 생산자의 생성은 골수 세포의 효율적인 transduction에 매우 중요합니다.
3. 레트로바이러스 매개 줄기세포 유전자 이식 (-5일차)
- 이 프로토콜의 Day 0까지 두 개의 confluent 150-mm plate가 충분히 성장할 수 있도록 완전한 DMEM 10%(vol/vol) FBS에서 각 GP+E86 생산자 세포주 0.5 -1.0 x 106을 해동 및 배양합니다.
메모: 10cm 플레이트에서 각 GP+E86 생산자 세포주를 0.5 - 1.0 x 106개씩 해동하면 5일차에 30 - 50%의 포화도를 얻을 수 있습니다. 또한 0일까지 GP+E86 생산자 세포주를 두 개의 confluent 150-mm 플레이트로 확장하기 위해 5일의 배양을 허용합니다.
- 마이코플라스마 오염을 방지하기 위해 5% 태아 송아지 혈청 및 시프로플록사신(10μg/ml)을 포함하는 완전한 조직 배양 배지에서 레트로바이러스 생산자 세포주를 배양합니다.
메모: 골수 형질도입을 위한 바이러스 상등액을 생성할 때 시프로플록사신의 사용을 중단합니다. 생산자 세포주가 과도하게 증식하면 골수 형질 도입 효율에 부정적인 영향을 미칠 수 있으므로 피하십시오.
4. 레트로바이러스 생산자 세포 배양(0일차)
- 플레이트 3 x 10 18ml complete DMEM 20%(vol/vol) FBS의 150mm 플레이트당6개의 레트로바이러스 생산자 세포.
- 레트로바이러스 생산자 세포를 37°C에서 하룻밤 동안 배양합니다. 1,500만 개의 골수 세포(약 2-3개의 기증자 마우스)를 위한 하나의 150mm 플레이트를 예상합니다.
5. 레트로바이러스 상등액(1일차)
- 다음 날(약 24시간 후), 0.45μm 주사기 필터를 사용하여 10ml 주사기 및 필터로 150mm 플레이트에서 레트로바이러스 상등액을 직접 추출하여 생산자 플레이트(4단계에서 설정)에서 레트로바이러스 상등액을 수확합니다.
- 제거한 레트로바이러스 상등액을 18ml의 새로운 완전 DMEM 20%(부피/부피) FBS로 조심스럽게 교체합니다.
- 여과된 레트로바이러스 상등액에 IL-3(20g ml-1), IL-6(50g ml-1), MSCF(50g ml-1) 및 헥사디메트린 브로마이드(폴리브렌)(6μg ml-1)를 보충합니다.
메모: 헥사디메트린 브로마이드는 레트로바이러스 형질도입의 효능이 떨어지지 않도록 2개월마다 신선하게 만들어야 합니다.
6. 레트로바이러스 상등액 및 형질도입(2일차)
- 24시간 후, 바이러스 생산자 세포주에서 새로운 바이러스 상등액을 수집합니다. 10ml 주사기와 0.45μm 주사기 필터를 사용하여 레트로바이러스 상등액을 여과합니다. 여과된 레트로바이러스 상등액에 IL-3(20g ml-1), IL-6(50g ml-1) 및 SCF(50g ml-1) 및 헥사디메트린 브로마이드(6g ml-1)를 보충합니다.
- 다음으로, 골수 세포가 들어 있는 6웰 플레이트의 각 웰에서 피펫으로 조심스럽게 제거하거나 상단 2ml의 배지를 흡인합니다.
메모: 일반적으로 우물 중앙에 집중되어 있는 골수를 흡인하지 않도록 조심스럽게 작업하십시오. 또는 제거된 상층액을 회전시켜 손실된 골수 세포를 회수할 수 있습니다.
- 골수 6웰 플레이트의 각 웰에 사이토카인과 헥사디메트린 브로마이드를 함유한 신선한 바이러스 상등액 3ml를 추가합니다. 플레이트를 비닐로 감싸고 1,000 x g에서 37°C에서 60분 동안 스핀 전달을 반복합니다. 플레이트의 포장을 풀고 37°C 및 5% CO2에서 하룻밤(약 24시간) 동안 세포를 배양합니다.
7. Fresh Supplemented DMEM 추가 (3일차)
- 24시간 후, 6.2단계와 같이 골수 세포가 포함된 6웰 플레이트의 각 웰에서 상단 2ml의 배지를 제거합니다. 제거한 배지를 IL-3(20g ml-1), IL-6(50g ml-1) 및 SCF(50g ml-1)의 최종 농도가 보충된 새로운 DMEM 20%(vol/vol) FBS로 교체합니다.
- 골수 플레이트를 37°C CO2 인큐베이터에서 24시간 더 배양합니다.