동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 준비
- 파골세포 특이적 랩터 결실 마우스(Raptorfl/fl; Ctsk-cre, 이하 RapCtsk)는 Raptorfl/fl 마우스를 Ctsk-cre 마우스와 짝짓기합니다. 이 연구에서는 Raptorfl/fl 마우스를 WT 대조군으로 사용합니다.
- 고립된 뼈를 보관하기 위해 얼음이 담긴 용기를 준비하십시오.
- 배양 배지를 준비합니다.
- 최소 필수 배지 알파(α-MEM)에 1x 글루타민, 페니실린-스트렙토마이신 및 10% 태아 송아지 혈청을 보충하여 α-MEM 배양 배지를 준비합니다.
- 50mL의 α-MEM 배지와 M-CSF로 구성된 골수 대식세포 유도 배지를 20ng/mL로 준비합니다.
- 50mL의 α-MEM 배지에서 각각 20ng/mL의 M-CSF 및 RANKL로 구성된 파골세포 유도 배지를 준비합니다.
- TRAP 염색 전에 다음 완충액을 준비합니다.
- 아세톤 6.5mL, 시트르산염 용액 2.5mL 및 37%(vol/vol) 포름알데히드 용액 0.8mL로 구성된 고정 용액을 준비합니다.
- TRAP 염색액을 준비합니다.
- 탈이온수를 37°C로 예열합니다.
- 1.5mL 마이크로튜브에 100μL의 고속 석류석 GBC 염기 용액과 100μL의 아질산나트륨 용액을 넣고 30초 동안 부드럽게 뒤집어 혼합합니다. 혼합물을 2분 동안 그대로 둡니다.
- 탈이온수 9mL를 37°C로 예열합니다. 단계 1.4.2.2에서 디아조화된 고속 석류석 GBC 염기 용액 200μL, 나프톨 AS-BI 인산염 용액 100μL, 아세테이트 용액 400μL 및 주석산염 용액 200μL를 추가합니다.
- TRAP 염색 혼합물 용액을 37°C의 수조에 보관하십시오.
2. 해부 (1일차)
- 생후 1개월 된 암컷 WT 및 RapCtsk 마우스 3마리를 CO2로 별도로 안락사시킵니다. 교육을 받은 직원이 적절한 장비로 CO2 흡입을 수행합니다.
- 박테리아 오염을 방지하기 위해 6마리의 마우스를 100mL의 75% 에탄올(vol/vol)이 든 비커에 5분 동안 담근 다음 앙와위 자세로 해부 보드에 놓습니다. 경골 원위부를 수직으로 절개하고 안과 가위로 뒷다리를 따라 피부를 절개합니다.
- 가위로 고관절의 관절 인대를 자르고 몸통에서 뒷다리를 탈구합니다.
- 무릎 관절의 관절 인대를 자르고 경골과 대퇴골을 무릎 관절에서 조심스럽게 분리합니다. 가위로 연조직을 부드럽게 제거합니다.
- 한 마우스의 한 유전자형에 있는 모든 뼈를 얼음 위에 2mL의 α-MEM과 함께 6웰 플레이트의 각 웰에 놓습니다.
메모: 세포 생존력을 보존하기 위해 뼈는 이러한 조건에서 1시간 미만 동안 유지되어야 합니다.
3. 격리 (Day-1)
- 6웰 플레이트의 한 웰에 75% 에탄올(3mL)을 채우고 다른 5웰에 α-MEM 배지(3mL)를 채웁니다.
- 한 유전자형의 모든 뼈를 에탄올 세척에 15초 동안 넣고 α-MEM 배지로 5회 10회 뼈를 세척합니다.
- 가위로 골단을 잘라내고 0.45mm 주사기 바늘을 골강에 삽입하고 α-MEM 배지로 골수를 50mL 원심분리 튜브로 씻어냅니다.
- 뼈의 다른 쪽 끝에서 동일한 방법을 사용하여 골강을 세척합니다. 뼈가 창백해질 때까지 골강을 철저히 씻기 위해 최소 두 번 반복합니다.
- 골수를 원심분리하여 800 x g 및 4°C에서 5분 동안 세포 펠릿을 얻습니다. 상층액을 흡인합니다.
- 적혈구 용해 완충액 3mL를 원심분리 튜브에 넣고 골수를 다시 부유시키도록 부드럽게 피펫팅합니다. 원심분리기 튜브를 얼음 위에 8분 동안 두어 적혈구를 용해시킵니다.
- 6mL의 α-MEM 배지를 원심분리 튜브에 추가하여 세포 용해를 중지합니다. 500 x g 및 4°C에서 10분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다.
- 3mL의 α-MEM 배양 배지에 재현탁하고 세포를 6웰 플레이트(일반적으로 웰당 마우스 1개)에 넣습니다.
- 37°C의 5% CO2 인큐베이터에서 하룻밤 동안 배양합니다.
4. 도금(0일차)
- 상층액을 15mL 원심분리 튜브로 옮겨 다음날 아침에 부착되지 않은 세포를 채취합니다.
- 800 x g 및 4°C에서 5분 동안 원심분리기를 하고 상층액을 흡입합니다.
- 4mL의 α-MEM 배양 배지에 재현탁합니다.
- 20 μL의 세포 용액을 20 μL의 Trypan Blue와 혼합합니다. 혼합물 10μL를 계수 챔버에 추가하고 용액 mL당 세포 수를 얻습니다.
- 적절한 부피의 α-MEM 배양 배지를 첨가하여 500,000 cells/mL의 세포 용액을 얻을 수 있습니다.
- 500μL 및 50μL의 골수 대식세포 유도 배지를 각각 24웰 플레이트와 96웰 플레이트의 각 웰에 추가합니다.
- 500μL 및 50μL의 세포 용액을 각각 24웰 플레이트와 96웰 플레이트의 각 웰에 추가합니다.
- 37 °C에서 5 % CO2 인큐베이터에서 3 일 동안 배양합니다.
5. 차별화 (3-7 일차)
- 도금 3일 후 96웰 플레이트의 각 웰에서 50μL 배지를 채취하여 -20°C에서 동결한 다음 잔류 배지를 흡인합니다.
- 1mL 및 100μL 파골세포 유도 배지를 각각 24웰 플레이트와 96웰 플레이트의 각 웰에 추가합니다.
- 37 °C에서 2 일 동안 배양하십시오.
- 각 웰에서 50μL의 배지를 수집하고 잔류 배지를 흡인합니다.
- 각 웰에 파골세포 유도 배지를 추가합니다.
- 37 ° C에서 1 일 동안 배양하십시오 .
메모: 이 시점에서는 도립 현미경으로 크고 다핵이 많은 파골세포를 볼 수 있어야 합니다(그림 1A).
- 파골세포가 보이지 않으면 파골세포 유도 배지를 변경하고 파골세포가 보일 때까지 매일 관찰합니다.
- 파골세포가 형성된 후 96웰 플레이트의 각 웰에서 50μL의 배지를 수집합니다.
6. 주석산염 내성 산성 인산가수분해효소(TRAP) 염색
참고: 성숙한 파골세포는 체외 배양 6-7일 후에 존재할 수 있습니다(4단계).
- 중간 흡입 후 1x PBS로 3회 부드럽게 씻습니다.
- 96웰 플레이트의 각 웰에 있는 세포를 실온에서 30초 동안 100μL의 고정 용액으로 고정합니다.
- 고정 후 고정 용액을 흡인하고 37°C로 예열된 탈이온수로 부드럽게 3회 세척합니다. 탈이온수를 흡입합니다.
- 96웰 플레이트의 각 웰에 100μL의 TRAP 염색을 추가하고 플레이트를 37°C의 인큐베이터에 30분 동안 넣고 빛을 차단합니다.
- 염색 후 TRAP 얼룩을 흡인하고 탈이온수로 3회 부드럽게 씻어냅니다.
- 40X 배율에서 도립 현미경을 사용한 파골세포의 이미지.