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미토콘드리아 칼슘 흡수 분석법: 분리된 미토콘드리아에서 칼슘 흡수를 측정하기 위한 플레이트 리더 기반 방법

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

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출처: Maxwell, J.T., et al., 고립된 미토콘드리아 및 배양 세포의 미토콘드리아 칼슘 유입 분석. J. Vis. 특급 (2018).

이 비디오는 분리된 미토콘드리아에서 미토콘드리아 칼슘 흡수를 측정하기 위한 플레이트 리더 기반 분석에 대해 설명합니다. 이 분석은 칼슘에 민감한 형광 염료의 형광 신호를 분석하여 미토콘드리아 칼슘 흡수 및 칼슘 과부하의 역학을 연구합니다.

Protocol

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1. 시약 및 용액

  1. 미토콘드리아 분리를 위한 MS-EGTA 완충액 500mL 만들기: 225mM 만니톨, 75mM 자당, 5mM 4-(2-하이드록시에틸)-1-피페라진에탄술폰산(HEPES), 1mM 에틸렌 글리콜-비스(β-아미노에틸 에테르)-N,N,N',N'-테트라아세트산(EGTA), KOH로 pH 7.4로 조정. 0.22μm 필터를 통해 멸균하고 4°C에서 보관합니다. 사용하기 전에 MS-EGTA 버퍼를 4°C로 예냉각해야 합니다.
  2. 100mL의 KCl 완충액을 준비합니다: 125mM KCl, 20mM HEPES, 1mM KH2PO4, 2mM MgCl2, 40μM EGTA 및 KOH로 pH를 7.2로 조정합니다. 실온에서 보관하십시오.
  3. 디메틸 설폭사이드(DMSO)에 1mM 칼슘 그린-5N 스톡을 준비합니다. calcium green-5N 스톡은 -20 °C에서 분취하여 보관할 수 있습니다.
  4. Ca2+ 흡수를 위한 기질을 준비합니다.
    1. pH 7.4의 피루브산 나트륨 1M를 준비합니다. -20 °C의 부분 표본에 보관하십시오.
    2. 500mM 말레이트, pH 7.4를 준비합니다. -20 °C의 부분 표본에 보관하십시오.

2. 심장 미토콘드리아의 분리

  1. 제도적 기준에 따라 쥐를 안락사시키십시오.
    메모: 제도적으로 승인된 안락사 방법의 경우, 생쥐는 이소플루오란 흡입으로 마취되고 자궁경부 탈구로 희생되었습니다.
  2. 흉강을 열고, 갈비뼈의 양쪽을 따라 절단하고, 심장 측면을 절단하고, 횡격막을 절단하고, 심장 조직을 절제하여 심장을 수집합니다.
    메모: 이 프로토콜에서는 성체 마우스(약 120mg)에서 채취한 전체 심장에서 미토콘드리아 분리를 수행하며, 이는 3-4개의 실험에 충분해야 합니다. 간과 같은 다른 미토콘드리아가 풍부한 조직으로부터 미토콘드리아 분리를 위해 설명된 프로토콜에 따라 최대 200mg의 조직을 사용할 수 있습니다.
  3. 얼음처럼 차가운 25mL의 1x 인산염 완충 식염수(PBS)로 조직을 철저히 헹구어 모든 혈액이 심실 밖으로 짜내도록 합니다.
    메모: 심장에서 짜낸 액체가 맑아지면 심장이 충분히 헹궈집니다.
  4. 날카로운 가위를 사용하여 얼음처럼 차가운 1x PBS 5mL에 심장을 작은 조각으로 다집니다.
  5. PBS를 버리고 다진 심장 조직을 0.10-0.15mm 간격의 사전 냉각된 7mL 유리-Teflon Dounce 균질화기로 옮깁니다.
  6. 얼음처럼 차가운 MS-EGTA 완충액 5mL를 추가하고 조직 조각이 더 이상 보이지 않을 때까지(약 11스트로크) 샘플을 균질화합니다.
    메모: 온전하고 기능적인 미토콘드리아를 얻는 것이 목표이므로 조직을 과도하게 균질화하지 마십시오.
  7. 균질액을 15mL 튜브로 옮깁니다.
  8. 균질액을 600 x g, 4°C에서 5분 동안 원심분리하여 핵과 깨지지 않은 세포를 펠릿화합니다.
  9. 상층액을 새 15mL 튜브에 옮기고 10,000 x g, 4°C에서 10분 동안 원심분리하여 미토콘드리아를 펠릿화합니다.
  10. 상등액을 버리고 미토콘드리아 펠릿을 얼음 위에 보관하십시오.
  11. 얼음처럼 차가운 MS-EGTA 버퍼를 사용하여 미토콘드리아 펠릿을 두 번 세척합니다. 세척할 때마다 미토콘드리아 펠릿을 5mL의 MS-EGTA 완충액에 재현탁하고 10,000 x g에서 4°C에서 10분 동안 원심분리한 다음 상등액을 버립니다.
  12. 최종 세척 후 상층액을 버리고 미토콘드리아를 100μL의 얼음처럼 차가운 MS-EGTA 완충액에 재현탁합니다. 미토콘드리아를 얼음 위에 두세요.
    메모: 미토콘드리아는 1시간 이내에 실험에 사용해야 합니다.
  13. Bradford Protein Assay를 사용하여 미토콘드리아 단백질 농도를 측정합니다.

3. 플레이트 리더 기반 미토콘드리아 칼슘 흡수 측정

참고: 여기에서는 인젝터가 장착된 다중 모드 플레이트 리더를 사용하여 미토콘드리아 Ca2+ 흡수를 분석하는 프로토콜에 대해 설명합니다. 반응물을 빛으로부터 보호하기 위해 자동 시약 주입기를 사용하여 운동 모드에서 calcium green-5N 형광(여기/방출 506/532nm)을 판독할 수 있는 모든 플레이트 리더를 사용할 수 있습니다.

  1. 플레이트 리더가 1,000초의 총 분석 시간 동안 매초 측정되어 calcium green-5N 형광의 동역학 판독을 수행하도록 프로그래밍합니다. 또한 30초, 150초, 300초, 480초 및 690초 시점에서 5μL의 CaCl2 용액을 분주하도록 시약 주입기를 프로그래밍합니다.
    메모: CaCl2 주입 시기는 사용자 정의이며 실험 요구에 따라 조정할 수 있습니다.
  2. 사용할 CaCl2 용액으로 시약 주입기를 프라임합니다.
    메모: CaCl2 용액의 농도는 사용자 정의이며, MPTP 개방을 트리거하는 데 필요한 Ca2+의 양을 적정하기 위해 후속 실행에서 조정할 수 있습니다.
  3. 200μg의 미토콘드리아를 96웰 플레이트의 개별 웰에 추가합니다.
  4. 미토콘드리아와 KCl 완충액의 총 부피가 197μL가 되도록 적절한 부피의 KCl 완충액을 웰에 추가합니다.
  5. 미토콘드리아 혼합물에 1μL의 1M 피루브산과 1μL의 500mM 말레이트를 추가합니다. 피펫을 사용하여 미토콘드리아를 부드럽게 혼합하고 실온에서 2분 동안 기질과 함께 배양하여 미토콘드리아에 에너지가 공급되도록 합니다.
  6. 1mM 칼슘 그린-5N 스톡 1μL를 추가합니다. pipetting.
    로 부드럽게 섞습니다. 메모: calcium green-5N 염료를 첨가한 후 빛으로부터 반응을 보호하십시오.
  7. 사전 프로그래밍된 운동 프로토콜을 시작하고 calcium green-5N 형광을 모니터링합니다.

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Disclosures

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선언된 이해 상충이 없습니다.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Synergy Neo2 멀티모드 마이크로플레이트 리더(인젝터 포함)(주)바이오텍
조직 균질화기킴블886000-0022
96웰 플레이트코 닝3628
칼슘 그린-5N인비트로젠C3737
디엠소인비트로젠D12345
헤페스시그마H3375 (영문
에그타시그마E8145
염화칼륨어부BP366-500
염화마그네슘시그마M2670
나트륨 피루브산시그마P2256
L-말산시그마M1125
염화칼슘시그마C4901
인산칼륨 일염기성시그마P0662
년 ) (영문) (영문)

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Mitochondrial Calcium UptakePlate Reader AssayIsolated MitochondriaCalcium Green 5N FluorescenceMitochondrial Permeability Transition PorePyruvate Malate SubstratesKinetic Fluorescence ReadoutCalcium Overload MeasurementMitochondrial Membrane PotentialFluorescent Dye Binding

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