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1. 식물 수집 및 가공
- 식물 샘플을 채취한 후 집게로 식물 재료를 액체 질소에 담가 샘플을 급속 동결하고 -80°C에서 보관합니다. 수집된 식물 샘플이 너무 커서 급속 동결할 수 없는 경우 드라이 아이스를 사용하여 샘플을 빠르게 냉각하고 가능한 한 빨리 -80°C 냉동고로 옮깁니다. 식물 재료의 다량 영양소 함량은 조직이 식물에서 분리된 후 변할 수 있으므로 채취 후 가능한 한 빨리 식물 샘플을 동결하는 것이 중요합니다.
주의: 액체 질소는 피부와 접촉할 때 심한 동상을 유발할 수 있습니다. 액체 질소를 승인된 용기에 담아 운송하고 취급 중에는 냉동 장갑, 안대 고글, 안면 보호대, 앞치마, 실험복을 포함한 적절한 PPE를 착용하십시오.
- 동결 건조기를 사용하여 식물 재료를 동결 건조하여 물이 제거되는 동안 조직이 대사적으로 비활성화되도록 합니다. 샘플의 질량이 안정화되어 모든 물이 제거되었는지 확인할 때까지 건조시킵니다.
- 샘플이 건조되면 그라인더나 밀을 사용하여 미세한 분말로 분쇄합니다. 분석할 때까지 샘플을 건조 캐비닛에 보관하십시오.
2. 소화성 탄수화물 분석
- 시료 전처리
- 각 조직의 복제 샘플(각각 약 20mg)을 고무 안감 나사 캡(길이 100mm)이 있는 유리 15mL 튜브에 넣습니다. 이러한 샘플은 이후에 미지 샘플이라고 합니다. 방수 마커 또는 뚜껑에 라벨링 테이프로 튜브에 라벨을 붙이고 각 샘플의 정확한 질량을 기록하십시오.amp이 정보는 알려지지 않은 각 샘플의 % 탄수화물을 계산하는 데 필요하므로 기록하십시오.
- 알려지지 않은 각 샘플에서 소화 가능한 탄수화물을 추출합니다.
- 각 튜브에 0.1 M H2SO4 1 mL를 추가하고 튜브에 캡을 단단히 조입니다. 끓는 물에 1시간 동안 담가둡니다.
주의: 황산은 부식성이 매우 강합니다. H2SO4를 취급할 때는 장갑, 고글, 앞치마를 착용하고 흄 후드에서 이 단계를 수행하십시오.
- 미지근한 수조에서 튜브를 식히십시오. 라벨이 붙은 1.5mL 마이크로 원심분리기 튜브에 튜브 내용물을 붓습니다(유리관에 일부 식물 물질이 남아 있어도 걱정하지 마십시오).
- 15,000 x g의 원심분리기 튜브에서 10분간 작동. 마이크로 피펫터로 상층액을 제거하고 라벨이 붙은 새 1.5mL 마이크로 원심분리 튜브에 넣습니다. 이 시점에서 튜브는 밤새 냉장 보관할 수 있습니다. 분석을 계속하는 경우 2.3.2단계를 참조하십시오.
- 표준 용액을 혼합하고 미지 샘플의 총 소화 가능한 탄수화물 함량을 정량화합니다.
- 표 1에 나열된 농도로 D(+) 포도당 표준 용액을 준비합니다. 각 표준물질 용액 400μL가 포함된 6개의 유리 시험관을 준비합니다.
- 각 미지 시료를 자체 시험관에 15μL씩 피펫팅하고 각 시료에 385μL의 증류수를 추가하여 각 시험관에 총 400μL를 주입합니다. 흄 후드에서 각 표준 및 미지 시료 시험관에 400μL의 5% 페놀을 첨가한 다음 농축된 H2SO4 2mL를 각 튜브에 빠르게 피펫팅합니다. 피펫 팁으로 시험관 내용물을 만지지 말고 용액 표면에 추가하기만 하면 됩니다(이 경우 리피터 피펫이 가장 적합함).
- 튜브를 10분 동안 배양한 다음 튜브를 조심스럽게 소용돌이쳐 내용물을 혼합합니다. 추가로 30분 동안 배양합니다.
주의: 페놀과 황산은 부식성 자극제입니다. 피부, 눈 및 흡입에 대한 노출을 방지하기 위해 이 단계는 안면 보호대 또는 고글, 고무 장갑, 실험실 앞치마 및 부츠를 포함하는 적절한 PPE를 사용하여 화학 흄 후드에서 수행해야 합니다. 페놀과 황산을 혼합하면 발열 반응이 일어나 튜브가 뜨거워집니다.
- 각 튜브의 시료 800μL를 폴리스티렌 1.5mL 세미 마이크로 큐벳 3개에 각각 피펫팅합니다(시료당 기술 반복 3회). 분광 광도계가 490nm에서 읽히도록 설정합니다. 표준물질 또는 알 수 없는 샘플을 판독하기 전에 증류수가 들어 있는 빈 큐벳으로 보정하고, 샘플 판독 전반에 걸쳐 간헐적으로 보정합니다. 분광 광도계를 통해 각 큐벳을 실행하고 흡광도를 기록합니다. 알 수 없는 각 샘플에 대한 기술적 반복실험의 평균입니다.
메모: 경우에 따라 샘플이 상한 흡광도 임계값을 초과할 수 있습니다. 그렇다면 1.3.1단계에서 샘플을 희석해야 합니다. 희석량은 후속 계산에서도 고려해야 합니다.
- 각 표준의 평균 흡광도를 계산합니다.
메모: 표준 곡선을 사용하여 알려지지 않은 각 샘플에 존재하는 총 소화 가능한 탄수화물의 양을 계산하려면 각 표준물질에 존재하는 D(+)포도당의 마이크로그램에 대해 각 표준물질의 평균 흡광도를 회귀 분석하는 것이 가장 쉽지만, 원하는 경우 각 표준물질의 D(+)포도당 농도(μg/μL)를 그래프로 나타낼 수도 있습니다. 그러나 다음 계산은 농도(μg/μL)가 아닌 마이크로그램을 기반으로 하는 표준 곡선을 참조합니다.
- 각 표준 용액의 D(+)포도당(μg) 총량에 대한 평균 흡광도를 표시하여 표준 곡선을 계산합니다. 이러한 데이터에 선형 회귀선을 맞춘 후 다음 방정식을 사용하여 각 미지 샘플의 총 탄수화물(μg)을 계산합니다.
Mc = (((Ax – b)/m)/(15))*1000
Mc = 샘플의 탄수화물 μg
Ax = 미지 샘플의 평균 흡광도
B = Y절편(표준 회귀선)
m = 경사(표준 회귀선)
이 선의 상관 계수는 0.98보다 커야 하고 일반적으로 0.99에 가까워야 합니다. 그런 다음 다음 방정식을 사용하여 각 샘플의 탄수화물 비율을 결정합니다.
Pc = ((Mc/1000)/(Mi))*100
Pc = % 탄수화물
Mi = 샘플의 초기 질량(mg)
표 1. 소화 가능한 탄수화물 분석을 위한 표준 곡선 계산. 각 표준물질의 포도당 양은 각 표준물질의 농도에 각 시험관의 표준용액의 양(400 μL)을 곱하여 계산합니다
호
분
분
아까이서
의
아까
의
년
의
| D(+)포도당 농도(ug/uL) | 표준 샘플의 D(+)포도당(ug) |
| 0.0000 | 0 |
| 0.0375 | 15 |
| 0.0750 | 30 |
| 0.1125 | 45 |
| 0.1500 | 60 |
| 0.1875 | 75 |