1. 샘플 준비
- 50mg의 마우스 조직을 1.5mL 튜브에 넣습니다. 프로테아제 및 인산가수분해효소 억제제(100mM NaF, 0.1mM 페닐메틸설포닐플루오라이드, 5μg/mL 펩스타틴, 10μg/mL 유펩틴, 5mM EGTA, 1mM EGTA, 1mM MgCl2, 10mM Na2P2O7, 1% Triton X-100, 10% 글리세롤)를 추가합니다. 5 μg/mL 아프로티닌).
- 얼음 위에서 1분 동안 균질화기로 조직을 균질화합니다.
- 4°C에서 8,000 x g에서 10분 동안 원심분리기.
- 상층액을 새 튜브(1.5mL)에 모으고 BCA 키트를 사용하여 단백질 농도 분석을 위해 1μL를 꺼냅니다.
참고: 웨스턴 블롯 분석 및 도트 블롯 분석에 일반적으로 사용되는 모든 용해 버퍼를 QDB 분석에 사용할 수 있습니다.
2. 항체의 특이성 결정
- 웨스턴 블롯 분석을 위해 섹션 1.4, IgG가 없는 BSA(20μg) 및 표준 단백질(600pg)의 샘플 용해물(20μg)을 준비합니다.
참고: IgG가 없는 BSA는 음성 대조군으로 사용되며 표준 단백질은 양성 대조군으로 사용됩니다. 항체의 특이성은 웨스턴 블롯 분석을 사용하여 올바른 크기의 밴드 하나를 보여줌으로써 입증됩니다.
3. QDB 분석의 선형 범위 정의
- 표준 단백질을 ddH2O로 용해시키고 단백질을 1,200pg/μL의 농도로 희석합니다.
- 준비된 샘플에서 농축된 단백질을 섹션 1.4 - 4 μg/μL로 희석합니다.
- BSA를 ddH2O로 용해시킵니다.단백질을 1,200pg/μL 및 4μg/μL의 농도로 희석합니다.
- 표준 단백질 및 준비된 샘플의 일련의 희석액을 표 1 및 표 2의 안내에 따라 준비했습니다.
- 10μL 희석 표준 단백질 또는 희석 준비 샘플과 10μL 2x 로딩 버퍼(120mM Tris-HCl pH 6.8, 20% 글리세롤, 4% SDS, 0.2% 브롬페놀 블루, 200mM DTT)를 함께 혼합합니다.
- 혼합물을 85°C에서 5분 동안 가열합니다.
4. QDB 분석 프로세스
- 샘플 응용 프로그램
- 플레이트 바닥이 테이블 표면에 닿지 않도록 QDB 플레이트를 지지합니다. 예를 들어, 빈 피펫 팁 상자를 지지대로 사용하십시오.
- 최대 2 μL의 샘플을 QDB 플레이트의 개별 장치 하단에 있는 멤브레인 중앙까지 로드합니다.
- 접시 말리기
- 로드된 QDB 플레이트를 실온(RT)에서 1시간 동안 그대로 두거나 대안으로 로드된 플레이트를 환기가 잘 되는 공간에서 37°C에서 15분 동안 그대로 두십시오.
- 플레이트 막기
- QDB 플레이트를 전달 버퍼(0.039M 글리신, 0.048M 트리스, 0.37% SDS, 20% 메틸 알코올)에 담그고 플레이트를 10초 동안 부드럽게 흔듭니다.
- QDB 플레이트를 TBST(Tris-buffered saline, 0.1% Tween 20)로 3회 부드럽게 헹군 다음 TBST에서 지속적으로 흔들면서 5분 동안 플레이트를 세척합니다.
- 지속적인 흔들림으로 1시간 동안 차단 버퍼(TBST(100μL/well)의 5% 무지방 우유)로 QDB 플레이트를 막습니다.
- 1차 항체 배양
- 차단 완충액의 1차 항체를 선택한 농도(1:500에서 1:5,000까지)로 희석하고 일반 96-well 플레이트의 각 개별 well에 100μL를 추가합니다. QDB 플레이트를 96웰 플레이트에 삽입하고 결합된 플레이트를 RT에서 2시간 동안 또는 4°C에서 밤새 지속적으로 흔들어 배양합니다.
- 또는 QDB 플레이트를 상자 안에 넣고 전체 플레이트에 동일한 항체가 사용되는 경우 플레이트의 멤브레인 부분 위 2-3mm 위의 차단 버퍼로 상자를 채웁니다. 선택한 농도의 1차 항체를 추가하고 RT에서 2시간 동안 또는 지속적인 진탕 하에 4°C에서 밤새 플레이트를 배양합니다.
- TBST로 플레이트를 세 번 헹구기 전에 TBST로 세 번 씻고 매번 5분 동안 계속 흔듭니다.
- 2차 항체 배양
- 2차 항체를 차단 완충액에 있는 2차 항체를 선택한 농도(1:1,000 - 1:50,000)로 희석하고, 100μL/웰을 96웰 플레이트 또는 섹션 4.4.2에 설명된 대로 상자에 분취한 다음 로드된 96웰 플레이트 또는 상자 내부에서 QDB 플레이트를 일정한 쉐이킹으로 RT에서 1시간 동안 배양합니다.
- TBST로 QDB 플레이트를 3회 부드럽게 헹군 다음 TBST로 각각 5분씩 지속적으로 흔들면서 플레이트를 3회 세척합니다.
- 부량
- 제조업체의 지침에 따라 향상된 화학발광 기질(ECL)을 준비합니다.
- ECL 기질을 96웰 플레이트(100μL/웰)에 분취하고 QDB 플레이트를 96웰 플레이트 내부에 2분 동안 지속적으로 진탕합니다.
- 96웰 플레이트에서 QDB 플레이트를 제거하고 짧게 흔들어 여분의 액체를 제거합니다. 플레이트를 흰색 마이크로타이터 플레이트에 놓습니다.
- 마이크로플레이트 리더를 켜고 사용자 인터페이스에서 "플레이트가 있는 플레이트"를 선택한 후 결합된 플레이트(QDB 플레이트 + 화이트 플레이트 어댑터)를 정량화를 위해 마이크로플레이트 리더 내부에 배치합니다.
알림: 플레이트의 간섭을 방지하기 위해 흰색의 불투명한 마이크로타이터 플레이트를 어댑터로 사용해야 합니다. 결합된 플레이트(QDB 플레이트 + 96웰 플레이트 어댑터)를 마이크로플레이트 리더 내부에 배치할 때 기계가 걸리지 않도록 "덮개가 있는 플레이트"를 선택해야 합니다.
표 1. 표준 단백질 곡선을 위한 희석 계획.
님
년
분
의
의
분
분
년
분
의
의
의
의
의
의
| S1
(0pg/μl) | S2 (33.3pg/μl) | S3
(100pg/μl) | S3
(300pg/μl) | S5
(600pg/μl) | S6
(1200pg/μl) |
| 표준 단백질(1200pg/μl) | 0 | 1.39 | 4.17 | 12.5 | 25 | 50 |
IgG-free BSA
(4pg/μl) | 50 | 48.61 | 45.83 | 37.5 | 25 | 0 |
| 합계 | 50 | 50 | 50 | 50 | 50 | 50 |
표 2. 준비된 샘플에 대한 희석 계획
년
분
분
의
의
년
분
년
분
의
의
의
의
의
의
| X1
(0μg/μl) | X2
(0.25μg/μl) | X3
(0.5μg/μl) | X4
(1μg/μl) | X5
(2μg/μl) | X6
(4 μg/μl) |
| 시료(4μg/μl) | 0 | 3.125 | 6.25 | 12.5 | 25 | 50 |
| IgG가 없는 BSA(4μg/μl) | 50 | 46.875 | 43.75 | 37.5 | 25 | 0 |
| 합계 | 50 | 50 | 50 | 50 | 50 | 50 |