방법 논문

Phage Display를 사용하여 타겟 단백질에 대한 친화도가 높은 단백질 선택

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

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출처: Zhang, W., et al., Phage Display를 사용하여 E3 리가가스용 유비퀴틴 변형 변조기 개발. J. Vis. 특급 (2021년)

이 비디오에서는 표적 단백질에 대한 친화도가 높은 단백질을 발현하는 사전 엔지니어링된 파지를 분리하는 파지 디스플레이 기술을 보여줍니다.

프로토콜

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1. 파지 라이브러리 준비

  1. 파지 라이브러리를 얼음 위에서 해동하고 PBS의 라이브러리 다양성을 100배로 희석합니다. 예를 들어, 라이브러리 다이버시티가 1 x 1010이고 라이브러리 농도가 1 x 1013인 경우 농도가 1 x 1012가 되도록 라이브러리를 희석합니다. 여기에 사용된 라이브러리의 경우, 라이브러리 1mL와 PBS 9mL를 결합하여 PBS에서 10배 희석합니다.
    메모: 도서관의 다양성은 도서관을 만드는 동안 결정되었어야 하며, 그렇지 않으면 쉽게 평가할 수 없다. 라이브러리 농도는 mid-log 단계(OD600 figure-protocol-1 0.6 - 0.8)에 E. coli 세포를 접종하고 LB/탄수화물에 도금하여 측정할 수 있습니다.
  2. PEG/NaCl 1/5부피를 추가합니다. 예를 들어, 이전에 희석된 라이브러리 10mL의 경우 2mL의 PEG/NaCl을 추가합니다.
  3. 얼음 위에서 30분 동안 배양합니다.
  4. 11,000 x g에서 4°C에서 30분 동안 원심분리기, 상층액을 버리고 2분 동안 다시 원심분리하여 남은 상층액을 끌어내립니다.
    메모: 펠릿을 같은 위치에 유지하기 위해 첫 번째와 두 번째로 같은 방향으로 로터에 튜브를 넣으십시오., 따라서 더 쉽게 볼 수 있도록.
  5. 단백질당 1mL의 PBT에 파지 펠릿을 부드럽게 재현탁합니다. 4개 단백질의 경우 4mL의 PBT.
    에 펠릿을 재현탁합니다. 메모: 펠릿을 만지지 말고 기포를 유입시키지 마십시오.

2. 타겟 단백질에 파지 표시

  1. 선택적 대조군: 100 μL의 파지 라이브러리를 대조 플레이트의 코팅된 각 웰에 추가합니다. 300rpm 궤도 쉐이킹으로 1시간 동안 실온(~20-25°C)에서 배양하고 라이브러리를 제어판에서 타겟 플레이트로 옮깁니다.
  2. 타겟 플레이트에서 PB 버퍼를 제거하고 코팅된 각 웰에 100μL의 파지 라이브러리를 추가합니다.
  3. 실온(~20-25 °C)에서 300rpm 궤도 쉐이킹으로 1시간 동안 배양합니다.

3. 1라운드 파지 용리

  1. 파지 라이브러리를 제거하고 코팅된 웰을 PT 버퍼로 4회 세척합니다. 접시를 뒤집고 종이 타월을 두드려 마지막 방울을 제거합니다.
    메모: 여러 표적 단백질이 하나의 플레이트에 코팅되어 있는 경우 웰 사이의 모든 후속 용액의 흐름을 최소화하십시오.
  2. 코팅된 각 웰에 100μL의 0.1M HCl을 추가하고 300rpm 궤도 쉐이킹으로 실온에서 5분 동안 배양합니다.
  3. 코팅된 각 웰에 12.5μL의 1M Tris-HCl(pH 11)을 추가하여 pH를 중화합니다.
  4. 8개의 웰 모두에서 용리된 파지를 단일 1.5mL 마이크로 원심분리 튜브에 풀링합니다. 이송하는 동안 피펫을 위아래로 움직여 용액을 균일하게 만들고 웰의 모든 액체를 흡인합니다.
  5. 풀링된 용리된 파지에 10% BSA를 첨가하여 최종 농도 1%를 달성합니다. 950 μL의 일반적인 round one 용리 부피의 경우 95 μL의 10% BSA를 첨가합니다. 4 °C에서 보관하십시오. 이것은 라운드 1 출력입니다.

4. 차기 선발 준비

  1. 1.1단계와 같이 다음 선택 라운드를 위해 파지 투입을 배양하기 위한 종자 배양을 준비합니다.
  2. 1.2단계에서와 같이 세 번째 선택 라운드를 위해 아래에 언급된 변경 사항으로 플레이트를 코팅합니다.
    1. 96웰 결합 플레이트에 단백질당 4웰만 코팅합니다. 적절한 라운드에 "round 2/3" 또는 "round 4/5" 튜브 내용물의 절반을 사용하십시오. 단백질이 용액에서 침전되는 것을 방지하기 위해 필요에 따라 이러한 튜브의 내용물을 희석하십시오.
  3. 다음 선택 라운드를 위해 파지 입력을 준비합니다.
    1. round one output의 절반을 사용하여 3mL의 mid-log phase cells를 접종합니다. 일반적인 1라운드 출력의 경우 500μL의 출력을 접종합니다.
    2. 37°C에서 200rpm 궤도 쉐이킹으로 30분 동안 배양합니다.
    3. M13K07 헬퍼 파지를 1 x 1010 PFU/mL의 최종 농도에 첨가합니다.
    4. 37°C에서 200rpm 오비탈 쉐이킹으로 1시간 동안 배양합니다.
    5. 전체 3mL 배양액을 30mL의 2YT/탄수화물/칸으로 옮깁니다. 37°C에서 200rpm 궤도 쉐이킹으로 밤새 성장합니다.

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공개 사항

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선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Axygen 미니 튜브 시스템(0.65mL, 멸균, 96/랙, 10랙/팩)피셔 사이언티픽Tel.: 14-222-198플라스틱 도자기
BD Difco 탈수 배양 매체 : LB 육수, 밀러 (Luria-Bertani)피셔 사이언티픽DF0446-17-3적정을 위한 플레이트 준비
소 혈청 알부민(BSA), 분획 VBioShop 캐나다알b001버퍼 구성 요소
카르베니실린 디소듐 염 89.0-100.5% 무수밀리포어-시그마C1389-5G파지미드에 감염된 세포 배양
소형 디지털 마이크로플레이트 셰이커피셔 사이언티픽11-676-337장치
코닝 Microplate 알루미늄 밀봉 테이프피셔 사이언티픽전화: 07-200-684밀봉 파지 글리세롤 스톡
탈수 한천피셔 사이언티픽DF0140-01-0적정을 위한 플레이트 준비
DS-11 분광 광도계/형광측정기드노빅스DS-11 FX+장치
Greiner Bio-One CellStar 96-well, 비처리, U자형 바닥 마이크로플레이트피셔 사이언티픽7000133플라스틱 도자기
염산피셔 사이언티픽A144-500화학
Invitrogen One Shot OmniMAX 2 T1R 화학적으로 컴피턴트 대장피셔 사이언티픽C854003파지 감염을 위한 박테리아 균주
카나마이신 설페이트피셔 사이언티픽AAJ1792406M13K07 헬퍼 파지 감염 세포 배양
M13KO7 헬퍼 파지뉴잉글랜드 바이오랩스N0315Sphagemid 패킹과 분비를 허용하십시오
MaxQ 4000 벤치탑 오비탈 쉐이커피셔 사이언티픽Tel.: 11-676-076장치
Nunc MaxiSorp 96웰 마이크로플레이트, 평평한 바닥생명 기술Tel.: 44-2404-21플라스틱 도자기
인산염 완충 식염수(PBS) 10X 용액피셔 사이언티픽BP3994완충액 성분/파지 재현탁액
ELISA 및 배양을 위한 폴리에스테르 필름폭스바겐60941-120배양 중 마이크로플레이트를 덮는 것
폴리에틸렌 글리콜 8000 (PEG)피셔 사이언티픽BP233-1파지 침전
소금밀리포어-시그마S3014파지 침전
멸균 플라스틱 배양 튜브: 반투명 폴리프로필렌피셔 사이언티픽14-956-1일파지 입력 배양
테트라사이클린 염산염피셔 사이언티픽BP912-100대장균 OmniMax 세포 배양
트리스 베이스피셔 사이언티픽BP1525중화 용출된 파지 용액
트립톤 파우더피셔 사이언티픽BP1421-2세포 성장 배지 구성 요소
트윈 20피셔 사이언티픽BP337500버퍼 구성 요소
효모 추출물피셔 사이언티픽BP1422-2세포 성장 배지 구성 요소
균 년

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