1. 9일차(오전): 효소 측정을 위한 배양을 시작합니다.
- 분광광도계 플레이트에서 멀티채널 피펫을 사용하여 배양을 다시 현탁하고 125μL를 전송합니다(OD600 측정).
메모: 주의: 기포를 피하기 위해 마지막 한 방울을 분주하지 말고, OD600이 0.3 - 0.6 미만인 경우 판독값에 따라 나머지 세포를 1 - 2시간 더 배양합니다. 이 단계에서 사용된 125μL 배양액은 사용자의 재량에 따라 폐기하거나 원래의 딥 웰 블록으로 다시 옮길 수 있습니다.
- 딥 웰 블록의 나머지 세포를 3000 x g 및 21°C에서 10분 동안 원심분리합니다.반전으로 상층액을 제거합니다.
- 200μL의 Z-버퍼와 vortex.
추가
메모: 표 1의 Z-buffer 레시피를 참조하십시오.
- 3000 x g 및 21 °C에서 5분 동안 원심분리기. 반전으로 상층액을 제거합니다.
- 20μL Z-버퍼와 볼텍스를 추가합니다.
- 동결-해동 주기에 견딜 수 있는 밀봉 호일로 플레이트를 덮습니다. 흄 후드에서 액체 질소를 사용하여 4주기의 동결/해동을 수행한 다음 수조에서 42ºC(각 2분)를 수행합니다.
- 200 μL Z-buffer/beta-mercaptoethanol (β-ME)/Ortho-nitrophenyl-β-galactoside (ONPG) (12 mL, 21 μL, 8.4 mg 각각 20 mL 용액 생성, 항상 신선하게 준비)를 추가합니다.
메모: ONPG가 제대로 용해되는 데 시간이 걸리므로 이 단계에 도달하기 한 시간 전에 솔루션을 준비하십시오. ONPG는 β-갈락토시다아제 활성을 측정하기 위한 기판 역할을 합니다.
- 30 °C에서 최대 17 - 24 시간 동안 배양하십시오 (중간에 확인하십시오. 색이 더 일찍 발현되면 다음 단계로 진행하십시오).
2. 10일차(오전): 반응을 중지하고 측정합니다.
- 110 μL 1M Na2CO3 를 첨가하여 반응을 중지하고 시간을 기록합니다.
- 3000 x g 및 21 °C에서 10분 동안 와류 및 원심분리기.
- 멀티채널을 사용하여 125μL의 상등액을 취하고 OD420.
를 측정합니다.
메모: 주의, 거품을 피하기 위해 마지막 한 방울을 투여하지 마십시오.
표 1: 프로토콜에 사용된 용액의 레시피.이 표는 분석에 사용된 주요 완충액의 원액 및 작동 용액에 대한 레시피를 제공합니다.
.
| TE 버퍼 10X (10ml) | |
| 바람직한 | 재고에서 |
| 1000mM 트리스-Cl (산도 8.0) | 트리스 1M 1mL |
| 10mM EDTA (산도 8.0) | EDTA 0.5M의 200uL |
| 물로 볼륨을 조절하십시오. | |
| TE/LiAc(10ml) | |
| 바람직한 | 재고에서 |
| 1배 | 1mL TE 10X |
| 0.1M 리튬 AC | 1mL 리튬 이온 1M |
| 물로 볼륨을 조절하십시오. | |
| TE/LiAc/PEG(50mL) 50% | |
| 바람직한 | 재고에서 |
| 1배 | 5mL TE 10X |
| 0.1M 리튬 AC | 5mL 리튬 AC 1M |
| 40 mL PEG3350 | |
| Z-버퍼(1L) pH 7.0 | |
| Na2HPO4 16.1g의 헵타하이드레이트 또는 8.52g의 무수 |
| NaH2PO4 수화 5.5g 또는 무수 4g |
| KCl 0.75g |
| MgSO4 0.246g의 수화 또는 0.12g의 무수 |
| HCl로 pH 유지 |
| 모든 솔루션은 사용 전에 sterlized됩니다. |
| 프로토콜에 사용되는 미디어 및 한천 플레이트(YPDA, SD-Ura; SD-Trp-Ura 및 SD-Trp-Ura 한천 플레이트)는 Y1H와 동일한 레시피를 따릅니다 |