동물 모델과 관련된 모든 절차는 지역 기관 동물 관리 위원회와 JoVE 수의학 검토 위원회에서 검토되었습니다.
1. 면역글로불린 및 지질다당류(IVIg+LPS) 정맥 주사를 이용한 생체 내 마우스 도전 및 복막 대식세포 수확
- 각 마우스의 무게를 잰다. 체중 2.5g/kg의 최종 투여량을 제공하는 데 필요한 IVIg(100mg/mL 스톡 농도)의 부피를 계산합니다. 0.2μg/g 체중의 최종 용량을 제공하는 데 필요한 LPS(Iscove의 변형된 Dulbecco's 배지(IMDM)의 100μg/mL 스톡 농도)의 양을 계산합니다.
메모: 예를 들어, 20g 마우스의 경우 500μL의 IVIg 원액과 40μL의 LPS 100μg/mL 용액이 필요합니다.
- 멸균 26게이지 바늘이 장착된 멸균 1mL 주사기에 필요한 양의 IVIg 및 LPS를 뽑습니다. IVIg를 투여받지 않는 대조군 마우스의 경우, 동일한 부피의 IVIg를 멸균 인산염 완충 식염수(PBS) pH 7.4로 교체하십시오.
- 엄지와 검지로 쥐의 목 뒤쪽 피부를 잡고 남은 손가락으로 꼬리와 뒷다리를 잡고 한 손으로 쥐를 긁습니다. 몸을 땅 쪽으로 기울입니다.
- 바늘을 마우스의 복부를 기준으로 30 - 40° 각도로 오른쪽 하단 사분면에 놓고 비스듬하게 한 다음 1.5cm 삽입합니다. IVIg + LPS 또는 PBS + LPS를 복강내로 주입합니다.
- 1시간 후 이산화탄소(CO2) 질식을 이용한 안락사를 시행합니다.
- 마우스를 유도 챔버에 놓습니다. 5% 이소플루란 마취로 마우스를 60 - 90초 동안 움직이지 못하고 호흡이 깊고 느려질 때까지 안락사시킵니다.
- 이소플루란 마취를 끄고 마우스가 호흡을 멈출 때까지 6-8L/min의 CO2를 투여합니다. CO 2를 켠 상태로 마우스를 최소5분 동안 그대로 두십시오. 더 이상 심장 박동이나 호흡이 없는지 확인합니다. 죽음을 보장하기 위해 경추 탈구를 수행합니다.
참고: 8-12주 된 마우스는 가장 높은 대식세포 수율을 제공합니다.
- 팔다리를 벌리고 마우스를 폼 보드에 고정합니다. 부품에 70% 에탄올을 뿌립니다.
메모: 멸균 후드에서 절차를 수행하십시오.
- 복막강이 절단되지 않도록 마우스의 정중선을 따라 가위로 피부(0.2cm)를 얕게 자릅니다. 집게를 사용하여 마우스의 배에서 복부 피부를 당겨 손상되지 않은 복막 벽의 내벽이 보이
도록 합니다.
- 5mL 주사기에 5mL의 멸균 PBS(pH 7.4)를 채웁니다. 바늘의 경사가 위로 향하게 하여 왼쪽 또는 오른쪽에서 마우스 중앙을 향해 캐비티 상단에 25 또는 27 게이지 바늘을 삽입합니다.
메모: PBS를 장기에 주입하지 않고 복막 공간에 주입하도록 바늘을 마우스에 조심스럽게 놓습니다.
- 액체를 복막강으로 밀어 넣습니다. 구멍에서 바늘을 빼내고 복막을 10초 동안 마사지하여 세포를 제거합니다. 구멍 상단에 바늘을 삽입하고 장기를 피하십시오. 회수된 세척액을 모아 15mL 원추형 튜브에 넣고 얼음 위에 놓습니다.
메모: 주입된 유체 5mL당 약 3.75mL가 회수됩니다.
- 주입 및 회복(1.8 - 1.9단계)을 3회 더 반복하여(총 주입량 20mL) 총 15mL의 세척액을 회수합니다. 각 마우스의 세척을 별도의 15mL 원뿔형 튜브에 모읍니다.
메모: 최종 주입 후에는 액체가 축적된 마우스의 맨 왼쪽과 오른쪽에서 액체를 추출하는 것이 더 쉬울 수 있습니다. 장기는 이 위치에서 바늘에 간섭을 덜 일으킵니다.
- 4°C에서 5분 동안 300 x g에서 세포를 스핀다운합니다. 회수된 세척액 1mL를 제거하고 제조업체의 지침에 따라 효소 결합 면역흡착 분석법(ELISA)을 통한 인터류킨 또는 IL-10 및 IL-12/23p40 분석에 사용하거나 향후 분석을 위해 -80°C에서 동결합니다.
메모: 세척액 사이토카인 분석을 위한 처리 간의 정확한 비교를 위해 최종 부피 15mL에 대해 복막강을 5mL 플러시 4회 수행합니다. 각 플러시에서 모든 유체가 회수되는 것은 아닙니다.
- 플러시된 마우스 한 마리당 500μL의 도금 배지(IMDM, 10% 소 태아 혈청, FBS 및 100U/mL 페니실린/스트렙토마이신)에 세포를 재현탁합니다. 생존 가능한 대식세포를 세십시오.
메모: 대식세포는 다른 복막 세포보다 약간 큽니다. 일반적인 수율은 야생형 C57BL/6 마우스를 사용하는 마우스당 5 x 105 - 1 x 106 대식세포입니다.
선택적: 세포 펠릿에 많은 수의 적혈구가 존재하는 경우 제조업체의 지침에 따라 적혈구 단계를 수행하여 제거하십시오.
- 1 x 106 대식세포/mL의 도금 배지에 세포를 재현탁하고 96웰 평평한 바닥 조직 배양 처리된 플레이트에서 웰당 100μL를 플레이트화합니다.
메모: 실험을 위해 둘 이상의 마우스에서 세포를 풀링해야 할 수도 있습니다. 예를 들어, 한 마우스에 5 x 105 대식세포가 있는 경우 500μL의 도금 배지가 필요합니다.
- 대식세포가 부착될 수 있도록 37°C, 5% CO2에서 1시간 동안 세포를 배양합니다. 부착 세포는 복막 대식세포(peritoneal macrophage)입니다. 세포 상층액 및 비부착성 세포를 제거합니다. 200μL IMDM(37°C로 예열)으로 웰을 두 번 헹구고 10초 동안 기다린 다음 플레이트를 천천히 기울입니다. 도금 매체를 교체하십시오. 자극 전 30분 동안 37°C, 5% CO2에서 세포를 배양합니다.
- 일단 부착되면 IMDM에서 10ng/mL의 LPS, 30mg/mL의 IVIg 또는 IVIg+LPS로 각각 복제 또는 삼중 웰을 자극합니다. 반응을 최적화하기 위해 LPS 또는 IVIg의 용량을 적정할 수 있습니다. 중복 또는 삼중 우물은 자극되지 않은 대조군으로 둡니다. 24 시간 (37 °C, 5 % CO2) 동안 배양하십시오 .
메모: 재도금된 세포는 1시간 이내에 조직 배양 웰에 부착되어야 합니다. 샘플은 즉시 사용하거나 ELISA에 의한 사이토카인 분석을 위해 -80°C에서 냉동 및 보관할 수 있습니다.
- 각 웰의 세포 상등액을 개별 1.7mL 마이크로 원심분리 튜브에 모으고 10,000 x g에서 5분 동안 회전하여 미립자 물질을 제거합니다.
- 세포 상등액을 제거하고 펠릿을 방해하지 마십시오. 정화된 세포 상등액을 멸균 마이크로 원심분리기 튜브에 넣습니다.
메모: 세포 상등액은 ELISA에 의해 사이토카인, IL-10 및 사이토카인 소단위체, IL-12/23p40에 대해 즉시 분석하거나 -80°C에서 장기간 보관할 수 있습니다. 시중에서 판매되는 키트(Table of Materials)의 ELISA 프로토콜을 따릅니다. IL-6 및 종양괴사인자(TNF)와 같은 다른 전염증성 사이토카인도 LPS만 사용한 자극에 비해 IVIg+LPS 자극과 병용하여 감소하기 때문에 분석할 수 있습니다. 자극 후, 부착 세포는 웨스턴 블로팅(western blotting) 또는 정량적 중합효소 연쇄 반응(Q-PCR)과 같은 기술에 대비할 수 있습니다.