방법 논문

숙주 내피 세포 내 내재화된 혐기성 박테리아의 시각화

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

출처: Wunsch, C. M. et. al., 혐기성 세균과 숙주 세포의 상호 작용을 평가하기 위한 모델 유기체로서의 Porphyromonas gingivalis. J. Vis. 특급. (2015년)

이 비디오에서는 컨포칼 현미경을 사용하여 인간 내피 세포 내에서 혐기성 병원성 박테리아인 내재화된 Porphyromonas gingivalis를 시각화하는 절차를 보여줍니다. 박테리아는 형광 염료로 염색되는 반면 숙주 내피 세포 액틴 세포골격은 다른 형광 염료로 표지됩니다. 내피 세포 내부의 내재화된 Porphyromonas gingivalis는 컨포칼 현미경을 사용하여 시각화됩니다.

프로토콜

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

>1. 박테리아를 숙주 세포로 내재화(형광 현미경

)

참고: P. gingivalis는 2',7'-Bis-(2-Carboxyethyl)-5-(and-6)-Carboxyfluorescein, Acetoxymethyl Ester(BCECF-AM)로 표시됩니다. BCECF-AM은 비형광 멤브레인 투과성 염료입니다. 세포 내 에스테라제의 작용을 통해 플루오레세인 BCECF로의 전환은 세포 생존력을 나타낼 수 있습니다. P. gingivalis는 BCECF-AM 염료로 표지된 다음 진핵 세포를 감염시키는 데 사용됩니다. 감염 후 세포는 DAPI와 TRITC-팔로이딘으로 고정되고 라벨링됩니다. 진핵 세포핵을 염색하는 데 사용되는 DAPI 염색은 박테리아 세포핵도 표지하여 BCECF-AM을 대사적으로 절단할 수 없는 생존 불가능한 박테리아를 식별하기 위한 대책을 제공합니다. 숙주 세포는 빨간색 액틴 염료인 TRITC-phalloidin으로 강조 표시됩니다.

  1. 오토클레이브 커버슬립. 5 x 104 cells/well에서 내피 세포를 파종하기 전에 12-well plate에 coverslips를 무균으로 추가합니다. (실험 전날 준비)
  2. 위에서 설명한 대로 12웰 플레이트에서 18mm(#1.5 두께) 원형 커버슬립에 내피 세포를 준비합니다.
  3. 중간 로그 단계(OD660 = 0.5-0.7)까지 성장한 혐기성 박테리아를 준비합니다.
  4. 5,000 x g에서 원심분리하고 5-7 x 108 cells/ml에서 PBS의 펠릿을 현탁하여 혐기성 PBS로 박테리아 2x를 세척합니다.
  5. 20μl의 0.2mM BCECF-AM을 2ml의 박테리아 현탁액(5-7 x 10,8 cells/ml)에 2μM의 BCECF-AM의 최종 농도에 추가합니다.
  6. 37 ° C에서 어둠 속에서 30 분 동안 배양하십시오.
  7. 조직 배양 인큐베이터에서 18mm(#1.5 두께)의 원형 커버슬립에 파종된 내피 세포가 있는 플레이트를 혐기성 챔버로 옮깁니다. PBS로 세척하고 혐기성 VEGF 매체로 교환합니다.
    참고: 광학 현미경에서 HUVECs가 정상인지 확인합니다. HUVECS는 ~80% 농도여야 하며 형태는 제조업체와 비슷해야 합니다.
  8. 잔류 BCECF-AM 염료를 제거하기 위해 5,000 x g에서 10분 동안 박테리아 표지를 원심분리기로 표시합니다. 2ml 혐기성 VEGF 매체에 현탁합니다.
  9. MOI 100:1(박테리아: 숙주)로 표지된 박테리아로 숙주 세포를 감염시킵니다.
  10. 37°C의 혐기성 챔버에서 30분 동안 배양합니다.
  11. 감염 후 PBS로 세포를 세 번 세척하고 갓 준비한 4.0% 파라포름알데히드로 10분 동안 고정합니다.
    메모: 세포를 고정한 후 혐기성 챔버 외부에서 실험을 수행할 수 있습니다.
  12. PBS로 커버슬립을 세 번 세탁하십시오.
  13. 0.2% 트리톤 X-100 1ml를 10분 동안 첨가합니다.
  14. PBS로 커버슬립을 세 번 세탁하십시오.
  15. 50μl의 TRITC 팔로이딘(50μg/ml)을 커버슬립에 45분 동안 추가합니다.
  16. 커버슬립을 세 번 세척하고 12웰 플레이트에서 제거한 다음 DAPI가 포함된 소프트 세트 장착 매체가 있는 슬라이드에 놓습니다. 매니큐어로 측면을 밀봉하십시오 .
    메모: 슬라이드는 어두운 곳에서 몇 달 동안 보관할 수 있습니다. 광표백을 방지하기 위해 빛 노출을 피하십시오.
  17. 컨포칼 현미경을 사용하여 슬라이드를 봅니다.
    1. 여기에서는 전동 XY 스테이지가 있는 AxioObserver(반전) 스탠드 주변에 구성된 34채널 스펙트럼 시스템(32채널 어레이 검출기 및 2면 PMT 검출기, 투과광 검출기)을 사용합니다. 이 시스템에는 청색 다이오드(405nm), 다중 라인 아르곤(458, 488, 514nm), 녹색 다이오드(561nm), 적색 HeNe(633nm) 및 440nm 펄스 레이저의 5가지 레이저가 있습니다. 형광 수명 이미징 시스템에 2개의 하이브리드 GaAsP 검출기(FRET-FLIM용)를 장착합니다.
    2. 여기 파장이 340-380nm 및 540-560nm인 이중 대역 필터와 각각 435-485nm 및 570-590nm의 방출 필터를 사용하여 단일 채널에서 DAPI 및 TRITC의 형광을 검출합니다. 여기 파장이 440-500nm인 필터와 510-590nm의 방출 필터를 사용하여 BCECF-AM에서 형광을 검출합니다.
      메모: BCECF-AM에 대한 통제는 생존 가능한 박테리아의 적절한 라벨링을 보장하기 위해 연구 중인 모든 박테리아 균주에 대해 수행되어야 합니다. 먼저 생존 불가능한 박테리아가 DAPI 양성 및 BCECF 음성인지 확인합니다. 둘째, 살아있는 박테리아가 BCECF-AM을 플루오레세인 BCECF로 대사할 수 있는지 확인합니다. 최적의 라벨링을 위해 박테리아 또는 BCECF-AM 염료의 다양한 농도를 테스트해야 할 수 있습니다.

액세스가 제한되었습니다. 이 콘텐츠를 보려면 로그인하거나 체험판을 시작하세요.

공개 사항

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
비닐 혐기성 챔버 - 타입 BCoy 실험실 제품모델 2000 인큐베이터
TSA II 트립티카제 소이 한천 w/5% 양 피BBL221261
인간 배꼽 정맥 내피 세포 10 기증자 풀LifeLine 기술FC-0044
VascuLife VEGF 미디엄 컴플리트 키트LifeLine 기술LL-0003
트립킷(TrypKit)수명선LL-0013
BCECF-오전라이프테크놀러지나1150
TRITC 팔로이딘시그마-알드리치P1951
18mm 원형 커버슬립전자 현미경 과학72222-01
DAPI를 사용한 VectaShield 마운팅 매체벡터 연구소H-1200
(영문) 년

재인쇄 및 허가

이 JoVE 논문의 텍스트 또는 그림 재사용 허가 요청

허가 요청

태그

Porphyromonas gingivalisConfocal MicroscopyBacterial InternalizationFluorescent StainingActin CytoskeletonBCECF AMPhalloidinDAPI

관련 논문