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방법 논문

면역조절 화합물 스크리닝을 위해 엔지니어링된 림프구를 사용한 형광 기반 분석

957 조회수

⸱

2025년 7월 8일

이 논문에서

초록

출처: Fouda, A., et al., 저분자의 고처리량 스크리닝에 적합한 형광 기반 림프구 분석. J. Vis. 특급, (2017).

이 동영상은 형광 기반 분석을 통한 면역 조절 화합물의 스크리닝을 보여줍니다. 녹색 형광 단백질 발현 카세트를 가진 형질전환 마우스 유래 T 림프구는 이러한 화합물로 처리됩니다. 향상된 GFP 신호와 감소된 GFP 신호를 통해 화합물의 자극 및 억제 효과를 각각 식별할 수 있습니다.

프로토콜

1. 비장세포 배지 및 유세포 분석 완충액의 제조

  1. 70% 에탄올로 세척된 생물학적 후드 아래에서 모든 단계를 수행하십시오.
  2. 예열된 RPMI(Roswell Park Memorial Institute) 1640 1x 배지 70mL(시판 가능하며 여과된 500ml 용량 멸균 병으로 제공됨)를 제거하고 멸균 튜브에 넣습니다. 제거된 매체는 나중에 프로토콜에서 사용됩니다.
  3. 나머지 RPMI 1640 1x 430mL에 50ml 불활성화 소 태아 혈청(FBS), 5mL 페니실린/스트렙토마이신, 5mL N-2-하이드록시에틸피페라진-N-2-에탄 설폰산(HEPES), 5ml 비필수 아미노산, 5mL 피루브산 나트륨 및 0.05mL 여과(1M) 2-메르캅토에탄올을 추가합니다.
    메모: 열 충격을 주는 세포를 피하기 위해 37ºC로 설정된 수조를 사용하여 비장 세포 배지를 예열합니다. 이것은 세포 자멸사 유도를 피하는 데 중요합니다.
  4. 유세포 분석 완충액을 준비하려면 98ml 인산염 완충 식염수(PBS)에 FBS 2mL를 추가하고 사용할 때까지(바람직하게는 3일 이내) 냉장 보관합니다.

2. Nur7....

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공개 사항

선언된 이해 상충이 없습니다.

재료

이 논문에 사용된 재료 목록
이름회사카탈로그 번호댓글
Nur77GFP 마우스잭슨 연구소마우스 변형 번호 016617우리 동물 시설에 사내 식민지가 설립되었습니다
96웰-U 배양 플레이트, 멸균VWR 국제공항제10062-902마그네틱 비드를 이용한 T-세포 활성화
70μm 세포 여과기, 멸균코닝 Inc.352350비장세포 세포 현탁액의 생성
5ml 폴리스티렌 원형 바닥 튜브, 멸균코닝 Inc.352058비장세포 세포 현탁액의 생성
50ml 폴리프로필렌 원추형 바닥 튜브, 멸균VWR 국제공항89039-656 비장세포 세포 현탁액의 생성
바늘 없는 10ml 주사기, 멸균Becton, 디킨슨 앤 컴퍼니305482비장을 으깨기 위해
멸균 세포 배양 접시 5mlGreiner 바이오 원627 160비장을 으깨기 위해
페니실린- 스트렙토마이신(10,000 U/mL)(주)위센트450-200-엘 비장세포 배지의 구성 요소
RPMI 1600 중탄산나트륨 및 L-글루타민(주)위센트Tel.: 350-002-CL 비장세포 배지의 구성 요소
MEM 비필수 아미노산(주)위센트321-010-엘 비장세포 배지의 구성 요소
HEPES 유리산 1M(주)위센트Tel.: 330-050-EL 비장세포 배지의 구성 요소
나트륨 피루브산 용액 (100mM)(주)위센트600-110-엘 비장세포 배지의 구성 요소
소 태아 세럼(FBS) (주)위센트TEL.080-910 비장세포 배지 및 유세포 분석 완충액의 구성 요소
인산염 완충 식염수(PBS)(주)위센트Tel.: 311-010-CLflow-cytometry buffer의 구성 요소
2-메르캅토에탄올 (55mM)써모 피셔 사이언티픽(Thermo Fisher Scientific21985-023비장세포 배지의 구성 요소
T- 세포 분리 키트스템셀 기술19851T 세포를 분리하기 위해
마우스 T-Activator CD3/CD28 초상자성 비드써모 피셔 사이언티픽(Thermo Fisher Scientific11452DT 세포를 활성화하기 위해
세포 분리 자석스템셀 기술18000T 세포를 분리하고 자성 비드를 제거하기 위해
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