1. 준비
사항
- RBL(RBL-2H3 비만 세포주) 배양 배지 준비
- 저혈당 Dulbecco's modified Eagle's medium(DMEM) 500mL와 소 태아 혈청(FBS) 56mL, 페니실린-스트렙토마이신-니스타틴 용액 5.5mL, L-글루타민 200mM 용액 5.5mL를 혼합합니다. 그 결과 10% FBS, 100μg/mL 스트렙토마이신, 100단위/mL 페니실린, 12단위/mL 니스타틴 및 2mM L-글루타민이 보충된 저혈당 DMEM이 생성됩니다.
- 0.22μm 공극 크기의 상단 진공 필터를 사용하여 매체를 필터링하고 4°C에서 보관합니다.
- RBL 세포의 유지.
- 10cm 접시에서 RBL 세포를 최대 90%의 포화도까지 성장시킵니다. 세포 배양이 건강하다면 세포는 가끔 돌출된 방추체 모양을 가져야 합니다.
- 세포 분할을 위해 배지를 흡인하고 2mL의 트립신/EDTA 용액 B로 교체하여 접시에서 세포를 분리합니다. 37°C에서 5% CO2의 가습된 분위기에서 5-10분 동안 배양합니다.
- 세포가 분리되면 피펫을 사용하여 2mL의 배양 배지를 추가하여 트립신을 중화하고 세포를 1:2 - 1:10 비율로 분할합니다.
- 20x Tyrode의 버퍼 준비
- 이중 증류수(DDW)에서 54mM KCl, 20mM MgCl2, 2.74M NaCl 및 8mM NaH2PO4의 스톡 20x 용액을 준비합니다. 잘 섞어 4 °C에서 보관하십시오.
2. 생세포 현미경 검사를 위한 RBL 세포 배양
- FITC-덱스트란 용액의 제조.
- 배양 배지 1mL당 플루오레세인 이소티오시아네이트(FITC)-덱스트란 분말(150K) 1mg을 혼합합니다(1.1.1 단계 참조). 전체 챔버 커버 글라스의 경우 3mL를 준비합니다.
- 공극 크기가 0.22μm인 셀룰로오스 아세테이트 주사기 필터 장치를 사용하여 용해된 FITC-덱스트란을 여과합니다.
- 마우스 면역글로불린 E(IgE)를 1μg/mL 농도에 첨가합니다.
- 이미징을 위한 RBL 세포 파종
- 이미징 전날, 배양 접시에서 배지를 흡인하고 2mL의 트립신/에틸렌디아민테트라아세트산(EDTA) 용액 B로 교체합니다. 37°C에서 5%CO2의 가습 분위기에서 5 - 10분 동안 배양합니다. 세포가 분리되면 2mL의 배양 배지를 추가하여 트립신을 중화합니다.
- 혈구계를 사용하여 RBL 세포를 계수하고 배양 배지에 따라 부피를 조정하여 7.5 x 105/mL의 세포 농도를 얻습니다.
- 새로운 FITC-dextran 보충 배양 배지로 미리 채워진 챔버 커버 글라스에 세포 현탁액 10μL를 추가합니다(이로 인해 챔버에서 7.5 x 103 세포가 파종됩니다).
- 37°C에서 5% CO2의 완화된 분위기에서 밤새 RBL 세포를 성장시킵니다. 세포는 세포가 분리되어 있고 현미경으로 각 세포를 개별적으로 쉽게 식별할 수 있도록 하위 농도 수준으로 유지되어야 합니다.
- RBL 세포의 transfection - 선택 사항.
- 다른 형광 표지 단백질과 조합하여 외래 이벤트를 이미징하려면 Azouz 등의 RBL 세포에 대한 transfection protocol을 참조하십시오.
3. Exocytosis의 라이브 셀 현미경 검사
- 솔루션 준비 :
- DDW의 원액을 1:20 희석으로 희석하여 최종 Tyrode's 완충 용액을 준비하고 20mM Hepes pH 7, 1.8mM CaCl2, 1mg/mL 소 혈청 알부민(BSA) 및 5.6mM 포도당을 보충합니다.
- Tyrode의 완충액[본 사례의 경우 인간 혈청 알부민(DNP-HAS (Ag))에 접합된 1μg/mL 디니트로페닐, 50ng/mL 1x 농도]에 20x secretagogue 시약을 새로 준비합니다.
- Tyrode의 완충액에 분말을 용해하여 400mM 염화암모늄 용액을 준비합니다.
- 세포의 준비.
- 챔버에서 매체를 흡인하고 37°C로 예열된 300μL의 Tyrode 완충액으로 다시 채워 챔버 커버 유리를 3회 세척합니다. 마지막으로, 37°C로 예열된 300μL의 Tyrode 완충액을 챔버에 보충합니다.
- 챔버가 있는 커버 유리를 현미경의 인큐베이터 챔버에 놓습니다. 챔버가 안정적인지 확인하십시오.
- 현미경 설정
- 추적할 관심 영역을 선택하려면 형광등(전통적으로 수은 램프)을 켜고 적절한 형광 필터를 선택합니다(FITC-dextran을 보기 위해 녹색 형광단에 대한 필터 선택). 관심 영역에 초점이 맞춰지고 시야의 중앙에 있으면 광표백 및 독성을 방지하기 위해 광원을 끕니다.
참고: 세포에 통합된 일부 FITC-dextran은 형광을 유지할 수 있습니다. 이는 FITC-dextran이 엔도솜과 같은 비-리소좀 compartment로 분류될 수도 있기 때문입니다.
- FITC 가진에 적합한 조명을 켭니다. 레이저 기반 현미경을 사용하는 경우 488nm 레이저를 켭니다. 방출은 약 500 - 550 nm에서 수집되어야 합니다(FITC 방출은 510 - 520 nm에서 최고조에 달함).
- 컨포칼 현미경을 사용할 때는 핀홀을 최대로 엽니다. 이를 통해 더 낮은 레이저 출력을 사용하여 표백 및 독성을 방지할 수 있으며 세포의 모든 평면에서 exocytosis 이벤트를 캡처할 수 있습니다.
- 이미지 획득 사이의 시간 간격을 보정합니다.
- 다른 세포는 조절된 외세포작용의 동역학이 다를 수 있습니다. 복합 엑소사이토시스의 특정 이미징을 위해서는 최소 5초의 시간 간격을 권장합니다. 그러나 일반적으로 빠른 이미징을 허용하려면 단일 프레임의 획득 시간이 빠르지 않은지 확인하십시오.
- 레이저 스캐닝 컨포칼 현미경을 사용하는 경우 스캔 방향을 양방향으로 설정하고 평균화를 허용하지 않으며 해상도를 512 x 512로 설정합니다(권장, 후자의 두 조항은 표백 및 독성을 최소화하는 데도 도움이 됨).
- exocytosis의 이미징.
- 세포 또는 분비물의 유형에 따라 원하는 기간 동안 이미지를 촬영할 수 있습니다. IgE/Ag로 촉발된 RBL 세포에서 대부분의 외래 현상은 활성화 후 15-20분 이내에 발생합니다.
- 세포 활성화를 위해 20x secretagogue 용액의 16μL를 챔버에 추가합니다.
- 세포 내 FITC-dextran 존재 확인.
- SG에 대한 FITC-dextran의 존재 및 국소화를 확인하기 위해 16μL의 염화암모늄 용액(초점을 잃지 않도록 챔버를 움직이지 않도록 주의)을 챔버에 부드럽게 추가합니다(이렇게 하면 최종 농도가 20mM가 됩니다). 이는 SG의 알칼리화를 유도하고 FITC 형광을 디퀜칭(dequenching)하여 몇 초 내에 발생합니다.